α-乳清蛋白mRNA-LNP联合手术在三阴性乳腺癌中发挥抗肿瘤作用

α-Lactalbumin mRNA-LNP Evokes an Anti-Tumor Effect Combined with Surgery in Triple-Negative Breast Cancer.

作者信息Yun-Ru He, Heng Xia, Peng Yun, Yuandong Xu, Winson M J Ma, Ze-Xiu Xiao, Gao-Feng Zha
PMID39065637
发布时间2024-07-14
DOI10.3390/pharmaceutics16070940

实验完整度

包含体外表征(粒径、包封率、转染表达)、体内免疫原性与安全性、预防模型、手术联合治疗模型及免疫分析等多个证据层级,并进行了功能验证。

主要模型

4T1小鼠三阴性乳腺癌移植瘤模型 BALB/c小鼠 HEK293T细胞系

重点核对

α-LNP的粒径、PDI、包封效率 mRNA纯度与完整性 体内免疫评价的时间点 手术切除比例(9/10) 给药剂量(预防:3 μg,治疗:5 μg)

摘要

三阴性乳腺癌(TNBC)因其侵袭性进展和高频转移而被认为是巨大的临床未满足需求。mRNA疗法为肿瘤治疗提供了一种潜在且多功能的免疫治疗策略。在此,我们开发了α-乳清蛋白mRNA-脂质纳米颗粒(α-LNP)作为TNBC的潜在治疗策略。α-LNP在体内诱导了特异性IgG抗体并激活了分泌IFN-γ的T细胞。此外,α-LNP的安全性也已在体内得到证实。在肿瘤植入前接种,α-LNP通过激活记忆免疫反应对4T1肿瘤生长显示出预防作用,并延长了肿瘤模型的生存期。此外,α-LNP给药与手术切除肿瘤联合有效地抑制了TNBC模型的进展和转移。综上所述,我们的结果表明α-LNP疫苗是TNBC治疗和预防的一种有前景的新型治疗方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
针对三阴性乳腺癌,α-乳清蛋白mRNA-LNP疫苗是否具有预防和治疗效果,及其安全性如何?
核心机制
α-LNP通过诱导特异性IgG抗体和IFN-γ分泌T细胞,激活体液和细胞免疫,促进记忆T细胞和树突状细胞成熟迁移,抑制肿瘤生长和转移。
主要证据
在4T1模型中,预防性接种α-LNP抑制肿瘤生长并延长生存期;与手术联合显著抑制肿瘤进展和肺转移,流式和免疫荧光显示CD8+ T细胞浸润和IFN-γ表达增加。
研究意义
研究表明α-LNP作为mRNA疫苗在TNBC治疗和预防中具有潜在应用价值,为TNBC提供了新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

mRNA-LNP的制备与表征

制备编码α-乳清蛋白的mRNA-LNP并评估其物理化学性质,确保疫苗质量。

合成修饰mRNA(m1Ψ替代UTP),包裹入脂质纳米颗粒,检测粒径、PDI、包封率,用冷冻电镜观察形貌,并转染HEK293T细胞验证蛋白表达。

2

体内免疫原性与安全性评价

评估α-LNP在体内诱导的免疫反应及其安全性。

肌肉注射免疫小鼠三次,检测血清IgG滴度,ELISpot检测脾细胞IFN-γ分泌,同时监测生化指标和组织病理。

3

预防性抗肿瘤效果验证

评估α-LNP在肿瘤植入前接种是否能抑制4T1肿瘤生长并延长生存。

提前免疫小鼠三次,然后皮下植入4T1细胞,监测肿瘤体积和生存率,并用流式分析记忆T细胞和DC活化。

4

联合手术的治疗效果验证

评估α-LNP与手术切除联合对已建立的TNBC模型的治疗效果。

植入4T1细胞后,手术切除9/10肿瘤,次日开始免疫α-LNP共5次,监测肿瘤生长、生存率,并通过HE染色观察肺转移。

5

免疫机制分析

探讨α-LNP介导抗肿瘤免疫的机制。

通过流式细胞术分析脾脏和淋巴结中DC、B细胞、T细胞亚群,免疫荧光检测肿瘤组织中CD8+ T细胞和IFN-γ表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco151401-22
pUC57质粒GenScript1176
无缝克隆试剂盒BeyotimeD7010M
质粒提取试剂盒AxygenUE-MD-P-25
BsaI限制性内切酶NovoproteinRE036
T7 RNA聚合酶试剂盒NovoproteinE121
1-甲基假尿苷-5'-三磷酸TriLink--
牛痘加帽酶NovoproteinM072
2'-O-甲基转移酶NovoproteinM062
RNA磁珠纯化VazymeN412
NanoDrop One分光光度计Thermo--
Agilent 5200片段分析仪Agilent Technologies--
二硬脂酰磷脂酰胆碱Avanti Polar Lipids--
胆固醇Avanti--
DMG-PEG 2000Avanti--
微流控装置MicroNano--
PBS缓冲液MerckUFC9100
Zetasizer Nano粒度仪Malvern Instruments--
脂质体转染试剂YEASEN40802ES03
3 KD超滤膜MilliporeUFC500396
碳酸钠溶液----
牛血清白蛋白Sigma-Aldrich--
兔抗小鼠α-乳清蛋白抗体NOVUSNBP3-03561
TMB底物BeyotimeP0209
2×SDS上样缓冲液SolarbioP1018
HRP标记的抗兔IgG抗体CST7076
BALB/c小鼠GemPharmatech--
α-乳清蛋白Cloud-Clone Corp--
HRP标记的抗小鼠IgG抗体CST--
IFN-γ、TNF-α、IL-12P70 ELISA试剂盒Biolegend--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子Peprotech--
白细胞介素-4Peprotech--
小鼠IFN-γ预包被ELISPOT试剂盒Biolegend2210005
抗小鼠CD16/32抗体Biolegend--
PE偶联抗小鼠CD45抗体Biolegend--
APC偶联抗小鼠CD3抗体Biolegend--
BV610偶联抗小鼠CD4抗体Biolegend--
FITC偶联抗小鼠CD8α抗体Biolegend--
BV421偶联抗小鼠CD44抗体Biolegend--
Per-CY5.5偶联抗小鼠CD62L抗体Biolegend--
PECY7偶联抗小鼠GL7抗体Biolegend--
BV421偶联抗小鼠B220抗体Biolegend--
PE偶联抗小鼠CD138抗体Biolegend--
BV610偶联抗小鼠CD11b抗体Biolegend--
PE偶联抗小鼠CD11c抗体Biolegend--
BV421偶联抗小鼠CCR7抗体Biolegend--
BV610偶联抗小鼠CD80抗体Biolegend--
BV421偶联抗小鼠MHCII抗体Biolegend--
PE偶联抗小鼠CD206抗体Biolegend--
PECY7偶联活死染料Biolegend--
FACS Caliber流式细胞仪BD Biosciences--
抗CD8抗体CST9718
含DAPI的Vectashield抗淬灭封片剂VectorlabsH-1200
伊红Beyotime--
Pannoramic MIDI扫描仪3D HISTECH--
Microsoft Excel LTSC 2021Microsoft--
Prism 9.0GraphPad--
Vitrobot Mark IVThermo Fisher--
透射电子显微镜 (Kiros G4, Einstein)Kiros G4--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
mRNA制备与LNP合成
mRNA修饰(m1Ψ替代UTP)、N/P比5:1、脂质摩尔比44.2:9.9:44.2:1.7
阅读提示:Methods: Design and Production of mRNAs, Synthesis and Characterization of mRNA-LNPs
转染与表达验证
转染试剂、细胞密度(2.5×10^5/孔)、mRNA量(0.5 μg/孔)
阅读提示:Methods: mRNA-LNPs Transfection and Expression
预防性免疫
每次3 μg α-LNP,免疫3次间隔7天,4T1细胞植入量2×10^5
阅读提示:Methods: Animal Experiments, Figure 3A
治疗性免疫联合手术
手术切除9/10肿瘤,免疫剂量5 μg α-LNP,共5次间隔7天
阅读提示:Methods: Animal Experiments, Figure 4A
免疫分析
流式抗体组合、ELISpot板、IF定量视野数
阅读提示:Methods: Flow Cytometry, BMDC Activation and ELISPOT, Immunofluorescence