ABCG2通过抑制STAT1和mTOR的ISGylation来抵御癫痫,缓解氧化应激和凋亡

ABCG2 shields against epilepsy, relieves oxidative stress and apoptosis via inhibiting the ISGylation of STAT1 and mTOR.

作者信息Chang Li, Yi Cai, Yongmin Chen, Jingyi Tong, Youbin Li, Dong Liu, Yun Wang, Zhiping Li, Yan Wang, Qifu Li
PMID38981367
发布时间2024-09
DOI10.1016/j.redox.2024.103262

实验完整度

包含体外细胞实验、动物模型、蛋白质组学及机制验证(COIP、ISGylation)等至少两个独立证据层级,并明确功能与机制验证。

主要模型

HT22小鼠海马神经元细胞系 BV2小鼠小胶质细胞系 PTZ或KA诱导的癫痫大鼠和小鼠模型 ABCG2基因敲除(ABCG2−/−)小鼠

重点核对

PTZ诱导急性癫痫剂量:60 mg/kg腹腔注射;慢性癫痫剂量:35 mg/kg腹腔注射,持续28天 KA诱导癫痫剂量:小鼠15 mg/kg腹腔注射;体外KA处理浓度150 μM ABCG2抑制剂Ko143浓度:500 nM ABCG2过表达质粒转染:2 μg,使用Lipofectamine 3000 mTOR抑制剂雷帕霉素处理及检测p-mTOR、STAT1水平

摘要

转运蛋白ABC亚家族G成员2(ABCG2)与癫痫有关;然而,其具体作用仍不清楚。在本研究中,我们在体外和体内评估了ABCG2表达的变化及其在癫痫中的作用。我们观察到癫痫动物和细胞中ABCG2表达瞬时增加。此外,ABCG2过表达显著抑制了谷氨酸、红藻氨酸(KA)和脂多糖(LPS)诱导的神经元和小胶质细胞的氧化应激和凋亡。此外,抑制ABCG2活性抵消了这种保护作用。ABCG2缺陷小鼠(ABCG2−/−)在给予戊四氮(PTZ)时表现出更短的生存时间和更低的生存率。我们还注意到ABCG2−/−小鼠中信号转导与转录激活因子1(STAT1)的积累和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白激酶(mTOR)磷酸化的减少,以及ISGylation的增加。ABCG2过表达直接与STAT1和mTOR相互作用,导致它们的ISGylation减少。我们的研究结果表明,ABCG2表达的快速增加在癫痫发生中起到保护作用,表明ABCG2可能作为癫痫治疗的潜在靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ABCG2在癫痫发生中的表达变化及其具体作用机制尚不清楚,本研究旨在探究ABCG2在体外和体内癫痫模型中的角色及其分子机制。
核心机制
ABCG2过表达直接与STAT1和mTOR结合,减少其ISGylation,从而促进STAT1磷酸化和mTOR磷酸化,抑制氧化应激和凋亡;ABCG2缺陷则导致STAT1和mTOR的ISGylation增加,使STAT1积累、mTOR磷酸化降低,加剧神经元凋亡。
主要证据
体外实验显示ABCG2过表达抑制谷氨酸、KA和LPS诱导的神经元和小胶质细胞氧化应激和凋亡,而Ko143抑制ABCG2后保护作用消失;体内实验显示ABCG2−/−小鼠在PTZ处理后生存时间缩短、生存率降低,且STAT1和mTOR的ISGylation增加。
研究意义
本研究表明ABCG2在癫痫发生中起到保护作用,可能成为治疗癫痫的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测癫痫模型中ABCG2的表达

确认ABCG2在体内和体外癫痫模型中的表达变化。

通过PTZ和KA诱导大鼠和小鼠癫痫模型,检测海马和皮层中ABCG2的mRNA和蛋白表达;体外用谷氨酸、KA和LPS处理HT22和BV2细胞,检测ABCG2表达。

2

验证ABCG2过表达对神经元和小胶质细胞的保护作用

评估ABCG2过表达是否能减轻谷氨酸、KA和LPS诱导的氧化应激和凋亡。

在HT22和BV2细胞中转染ABCG2过表达质粒,然后用谷氨酸或KA处理,检测LDH释放、ROS含量、凋亡(Annexin V)和铁离子含量。

3

验证ABCG2抑制剂Ko143消除保护作用

确认ABCG2活性是保护作用所必需的。

在ABCG2过表达的HT22和BV2细胞中加入ABCG2抑制剂Ko143,再检测ROS、凋亡和铁离子含量。

4

评估ABCG2敲除小鼠对急性癫痫的易感性

确定ABCG2缺失对癫痫发作和生存的影响。

对ABCG2−/−小鼠和野生型小鼠腹腔注射90 mg/kg PTZ,观察潜伏期、发作次数、生存时间和生存率。

5

蛋白质组学分析揭示ABCG2缺失相关差异蛋白和通路

探索ABCG2缺失影响癫痫的分子机制。

对PTZ处理后的ABCG2−/−和WT小鼠海马进行DIA蛋白质组学分析,鉴定差异表达蛋白,并进行GO和KEGG富集分析及蛋白互作网络分析。

6

验证STAT1和mTOR通路在ABCG2保护中的独立作用

确定STAT1和mTOR是否参与ABCG2的保护机制,且是否独立于JAK1和AKT。

检测ABCG2−/−和WT小鼠海马中STAT1、JAK1、AKT、mTOR及CHOP的表达和磷酸化水平;在ABCG2过表达HT22细胞中检测mTOR和CHOP,并用雷帕霉素处理。

7

验证ABCG2与STAT1和mTOR的直接相互作用

确认ABCG2是否直接结合STAT1和mTOR。

在HT22细胞中通过COIP实验检测ABCG2与STAT1、mTOR的结合,并通过免疫荧光观察共定位。

8

验证ABCG2缺失诱导STAT1和mTOR的ISGylation

探究ABCG2缺失是否导致STAT1和mTOR的ISGylation增加,从而影响其功能。

检测ABCG2−/−和WT小鼠海马中ISG15表达和总ISGylation水平,并通过COIP检测STAT1和mTOR的ISGylation。

9

探究HIF-1α对ABCG2表达的调控

研究HIF-1α是否参与癫痫诱导的ABCG2表达上调。

检测HT22和BV2细胞中HIF-1α的表达,并通过shRNA敲低HIF-1α后检测ABCG2表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
戊四氮Roche--
红藻氨酸Sigma--
高糖DMEM培养基Gibco--
胎牛血清CLARK--
青霉素-链霉素Biosharp--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
CCK-8试剂盒Dojindo--
谷氨酸Sigma--
脂多糖Beyotime--
红藻氨酸MedChemExpress--
2',7'-二氯荧光素二乙酸酯Sigma--
Annexin VBeyotime--
FerroOrange荧光探针GLPBIO--
Hoechst 33342染色液Beyotime--
QuickBlock封闭液BeyotimeP0256
兔抗ABCG2抗体Abcamab207732
兔抗STAT1抗体Proteintech10144-2-AP
小鼠抗p-STAT1抗体SANTAsc-136229
小鼠抗p-mTOR抗体Proteintech67778-1-Ig
兔抗HIF-1α抗体Abcamab179483
兔抗mTOR抗体Abcamab2732
兔抗ISG15抗体Proteintech15981-1-AP
兔抗CHOP抗体Proteintech15204-1-AP
兔抗GAPDH抗体Proteintech10494-1-AP
DAPI染色液Boster--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
胰蛋白酶文中未明确说明--
NanoElute超高效液相色谱系统Bruker Daltonics--
飞行时间质谱仪Bruker--
NovoCyte流式细胞仪Agilent--
Spectra MAX 190酶标仪Molecular Devices--
Zeiss X-Cite荧光显微镜Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
动物品系、性别、年龄、PTZ和KA的给药剂量及途径
阅读提示:Methods 2.1-2.2
细胞培养与处理
细胞系、培养条件、刺激物浓度和时间(谷氨酸5 mM、KA 150 μM、LPS 1 μg/mL)
阅读提示:Methods 2.4
细胞转染
质粒浓度(2 μg)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、转染时间(24小时)
阅读提示:Methods 2.4
体外功能检测
CCK-8、LDH、ROS、凋亡、铁离子检测的试剂、浓度、孵育时间和检测波长
阅读提示:Methods 2.5-2.8
Western blot
抗体来源、稀释比例、封闭液
阅读提示:Methods 2.10, Table 2
COIP
使用的抗体、磁珠、裂解液和孵育条件
阅读提示:Methods 2.11
蛋白质组学
样本处理、酶解条件、质谱参数、数据分析参数
阅读提示:Methods 2.13
统计分析
数据分布检验、统计方法(t检验、ANOVA、Kruskal-Wallis)、显著性水平(P<0.05)
阅读提示:Methods 2.14