PBLD通过IRF3介导的I型干扰素反应和凋亡抑制病毒复制

PBLD promotes IRF3 mediated the type I interferon (IFN-I) response and apoptosis to inhibit viral replication.

作者信息Hongchao Zhu, Peili Hou, Fengyun Chu, Xingyu Li, Wenjia Zhang, Xiaonan Sun, Yu Liu, Guimin Zhao, Yuwei Gao, Daniel Chang He, Hongmei Wang, Hongbin He
PMID39362857
发布时间2024-10-03
DOI10.1038/s41419-024-07083-w

实验完整度

包含细胞实验(HeLa、293T)、基因敲除细胞系、原代巨噬细胞和小鼠模型,验证了功能(IFN-I、凋亡)和机制(IRF3磷酸化、Puma招募),但缺乏类器官等其他证据层级,主要基于体外细胞和体内小鼠。

主要模型

HeLa细胞 IRF3敲除HeLa细胞 Puma敲除HeLa细胞 Pbld基因敲除小鼠 骨髓来源巨噬细胞 腹腔巨噬细胞

重点核对

PBLD过表达或敲低后BPIV3(MOI=1)感染HeLa细胞,检测IFN-I和ISGs表达 IRF3敲低或敲除对PBLD促进IFN-I反应和抗病毒作用的影响 IRF3 S385/386A和K313/315N突变对PBLD介导的IFN-I和凋亡的影响 Pbld−/−小鼠(C57BL/6背景)经SeV(108PFU/只)感染后的存活率、病毒载量和肺组织病理 Cedrelone(1μM)处理对SeV复制和IFN-I反应的影响

摘要

最近的研究表明,含吩嗪生物合成样结构域的蛋白(PBLD)在多种癌症的发生和发展中发挥负调控作用。然而,其在病毒感染中的功能尚不清楚。在本研究中,我们发现PBLD在多种病毒感染中发挥重要作用,包括BPIV3、SeV、VSV和HSV-1。我们的研究表明,PBLD通过干扰素调节因子3(IRF3)增强I型干扰素(IFN-I)和ISGs的表达。进一步研究表明,PBLD促进IRF3(S385/386)的转录磷酸化,从而促进病毒诱导的IFN-I产生。有趣的是,PBLD通过其依赖于IRF3(K313/315)介导病毒触发的线粒体凋亡。机制上,PBLD通过IRF3将Puma蛋白招募至线粒体,从而促进病毒诱导的凋亡。此外,我们对IRF3进行了突变分析,表明其转录或凋亡功能的缺失均显著增加病毒复制。此外,病毒感染的PBLD缺陷巨噬细胞表现出IFN-I和ISGs表达降低,加剧病毒感染。重要的是,PBLD缺陷小鼠表现出病毒复制增加和对SeV感染的易感性增加,导致存活率降低。值得注意的是,Cedrelone是一种PBLD的化学激活剂,能够减少SeV复制。总之,我们首次发现了PBLD在病毒感染中的新功能,拓宽了我们对潜在治疗靶点的理解,并为抗病毒药物开发提供了新见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PBLD是否在病毒感染中发挥调控作用,其具体机制是什么?
核心机制
PBLD通过上调IRF3表达并促进IRF3 S385/386磷酸化增强IFN-I反应;同时通过IRF3 K313/315位点招募Puma至线粒体,诱导线粒体凋亡,从而抑制病毒复制。
主要证据
在HeLa细胞、IRF3或Puma敲除细胞、PBLD缺陷巨噬细胞和小鼠模型中,PBLD过表达或缺失影响IFN-I/ISGs表达、凋亡和病毒复制;IRF3突变分析表明转录和凋亡功能对PBLD抗病毒作用均至关重要。
研究意义
首次揭示PBLD在病毒感染中的功能,为抗病毒药物开发提供潜在治疗靶点,并证明PBLD化学激活剂Cedrelone可减少SeV复制。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证PBLD对IFN-I信号的调控

探究PBLD是否影响病毒诱导的IFN-I和ISGs表达。

过表达或敲低PBLD的HeLa细胞感染BPIV3或SeV,检测Ifnα4、Ifnβ、ISGs(Isg15、Mx1、Ifitm3)的mRNA和蛋白水平。

2

鉴定PBLD通过IRF3促进IFN-I信号

确定IRF3是否介导PBLD对IFN-I信号的促进作用。

在PBLD稳定过表达细胞中敲低IRF3,感染BPIV3、VSV、HSV-1,检测IFN/ISGs表达;在IRF3敲除细胞中回补IRF3及其突变体,检测PBLD对IFN-I的影响。

3

验证PBLD对IRF3磷酸化的影响

确认PBLD是否通过IRF3特定位点(S385/386)磷酸化增强IFN-I反应。

在IRF3敲除HeLa细胞中转染IRF3野生型或突变体(S385/386A、S396A),并表达PBLD,感染病毒后检测IFN/ISGs表达。

4

验证PBLD促进病毒诱导的凋亡

探究PBLD是否影响病毒诱导的细胞凋亡。

在PBLD过表达或敲低细胞中感染BPIV3或SeV,检测凋亡标志物(cleaved caspase-3、PARP)、流式细胞术和TUNEL染色。

5

验证PBLD通过IRF3介导线粒体凋亡

确认IRF3是否介导PBLD诱导的线粒体凋亡并鉴定关键位点。

检测凋亡相关蛋白(Bax、Bcl2、cyto C、cleaved caspase-9/3)在IRF3敲低或过表达中的变化;敲低IRF3后观察对PBLD诱导凋亡的影响;检测IRF3的线粒体转位;使用IRF3泛素化突变体(K193N、K313/315N)评估PBLD诱导的凋亡。

6

验证PBLD通过IRF3招募Puma诱导线粒体凋亡

确定PBLD是否通过IRF3与Puma相互作用并促进其线粒体定位。

免疫共沉淀检测IRF3与Puma的相互作用;检测PBLD对IRF3-Puma相互作用的影响;在Puma敲除细胞中检测PBLD诱导的凋亡和线粒体定位。

7

验证PBLD的抗病毒作用依赖IRF3和凋亡

评估PBLD对病毒复制的影响,并确定其是否依赖IRF3和凋亡。

过表达PBLD或IRF3,或敲低PBLD,检测病毒滴度(TCID50)和病毒mRNA/蛋白表达;使用凋亡诱导剂CCCP或抑制剂Z-VAD-FMK处理,检测对病毒复制的影响;在Puma敲除或IRF3敲除细胞中检测PBLD对病毒复制的影响。

8

评估PBLD在巨噬细胞和小鼠中的抗病毒作用

在生理相关模型中验证PBLD对IFN-I反应和病毒感染的影响。

从Pbld+/+和Pbld−/−小鼠分离BMDMs和PMs,感染BPIV3或SeV,检测IFN-I和ISGs表达及病毒载量;用SeV感染小鼠,监测体重、存活率、肺部病毒载量、IFN-β血清水平和组织病理。

9

验证Cedrelone对PBLD的激活及抗病毒作用

评估PBLD化学激活剂Cedrelone是否抑制SeV复制并增强IFN-I反应。

用不同浓度Cedrelone处理HeLa细胞,检测细胞活力、PBLD表达、SeV复制(病毒滴度、NP蛋白、基因拷贝数)和IFN/ISGs表达;分子对接分析Cedrelone与PBLD的相互作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基VivaCellC3110-0500
胎牛血清TransGen BiotechFS301-02
青霉素-链霉素ProcellPB180120
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子NovoproteinCJ46
淀粉溶液Sigma Aldrich232-679-6
牛副流感病毒3型----
水疱性口炎病毒----
仙台病毒----
1型单纯疱疹病毒----
CedreloneTargetMOI1254-85-9
二甲基亚砜Sigma-Aldrich67-68-5
Z-VAD-FMK(泛caspase抑制剂)Med Chem ExpressHY-16658B
Attractene转染试剂Qiagen301007
Annexin V-PE/7-AAD凋亡检测试剂盒VazymeA213-02
TUNEL检测试剂盒Boster Biological TechnologyMK1016
DAPI染液BeyotimeC1005
总RNA提取试剂盒FOREGENERE-03111
SuperScript III第一链合成试剂盒AccurateAG11706
SYBR Green PCR预混液AccurateAG11739
罗氏480检测系统Roche--
非变性裂解缓冲液SolarbioR0030
Halt蛋白酶抑制剂混合物New Cell and Molecular BiotechP002
SDS-PAGE凝胶EpizymePG113
PVDF膜MilliporeIPVH00010
脱脂奶粉BioFroxx1172
TBST缓冲液Epizyme BiotechPS103
ECL化学发光检测试剂Shandong Sparkjade BiotechnologyED0015-C
赛默飞线粒体分离试剂盒Thermo Scientific89874
小鼠IFN-β ELISA试剂盒Multisciences (Lianke) BiotechEK2236
H&E染色试剂盒Yeasen60524ES60
嘌呤霉素SolarbioP8230
TRIzol试剂----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和病毒感染
HeLa细胞(ATCC CCL-2)培养条件(DMEM+10%FBS+100IU/ml青霉素+100μg/ml链霉素,37°C,5%CO2);BPIV3、VSV、SeV、HSV-1感染剂量(MOI=1或100HAU/mL)和感染时间(0-36h)
阅读提示:Methods 'Cell culture'、'Viruses';图1-3图注
过表达和敲低
PBLD过表达质粒(Flag-PBLD)和siRNA序列(siPBLD No.1,序列CCGACAGACAACUUUGCACAA);转染试剂(Attractene)和转染时间(24h);IRF3 siRNA(AGGCCUACCUGCAGGACUUTT)
阅读提示:Methods 'Plasmids construction and small interfering RNAs' 表2
IRF3功能验证
IRF3敲除HeLa细胞系的构建(CRISPR/Cas9,sgRNA序列见表2);IRF3突变体(S385/386A, S396A, K313/315N)共转染后病毒感染
阅读提示:Methods 'Generation of IRF3 or Puma knockout HeLa cell lines' 表2;图3、图5
凋亡检测
凋亡诱导剂CCCP(5μM)和抑制剂Z-VAD-FMK(10μM)处理;凋亡标志物(cleaved caspase-3、PARP)、流式细胞术(Annexin V-PE/7-AAD)和TUNEL染色
阅读提示:Methods 'Flow cytometry'、'TUNEL assay';图4、图7
动物实验
Pbld+/+和Pbld−/−小鼠(C57BL/6背景,7-8周龄,雄性);SeV感染剂量(108PFU/只)和途径(鼻内或静脉);每组6-8只;观察体重、生存率和肺组织病毒载量
阅读提示:Methods 'Mice';图9图注
Cedrelone处理
Cedrelone浓度(1μM用于抗病毒实验,细胞活力测试0-2μM);处理时间(12h)
阅读提示:图10图注;Methods 'Antibodies and reagents'