验证C. acnes诱导皮肤FGF21表达上调
探究C. acnes感染时皮肤中FGF21的表达变化及其定位。
向小鼠耳廓皮内注射活C. acnes,24小时后通过Western blot和免疫组化检测FGF21、FGFR1和KLB的表达和分布。
Suppression of Cutibacterium acnes-Mediated Inflammatory Reactions by Fibroblast Growth Factor 21 in Skin.
包含体外细胞实验(HaCaT、原代角质形成细胞和成纤维细胞共培养)和小鼠体内模型,通过Western blot、qPCR、免疫荧光、IHC等验证功能,并明确机制通路。
HaCaT细胞 正常人原代表皮角质形成细胞(NHEK)和真皮成纤维细胞(NHDF)共培养模型 C57BL/6J小鼠耳部炎症模型
C. acnes菌株(ATCC6919)及热灭活处理(80°C 30分钟) 细胞刺激浓度(1.0×10^7 CFU/mL)和FGF21浓度(20 ng/mL) 小鼠模型中C. acnes注射量(1.0×10^7 CFU/20μL)和FGF21浓度(50 μg/mL) 体内外实验中TLR2/NF-κB/MAPK通路蛋白磷酸化检测 FGFR1和KLB siRNA敲低实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究C. acnes感染时皮肤中FGF21的表达变化及其定位。
向小鼠耳廓皮内注射活C. acnes,24小时后通过Western blot和免疫组化检测FGF21、FGFR1和KLB的表达和分布。
确定FGF21是否由成纤维细胞分泌并作用于角质形成细胞。
分离NHEK和NHDF,分别用热灭活C. acnes刺激,检测FGF21、FGFR1和KLB表达;建立共培养体系,加入FGF21中和抗体验证作用。
在HaCaT细胞中验证FGF21对C. acnes诱导炎症的抑制作用及其依赖于FGFR1/KLB。
用FGF21处理C. acnes刺激的HaCaT细胞,检测炎症因子表达;敲低FGFR1或KLB后检测炎症因子变化。
揭示FGF21抑制C. acnes诱导炎症的分子机制。
检测FGF21对C. acnes刺激的HaCaT细胞中TLR2表达、p65和IκBα磷酸化、NF-κB核转位、JNK和p38磷酸化的影响。
在活体小鼠模型中验证FGF21对C. acnes诱导的炎症的抑制作用。
小鼠耳廓皮内注射C. acnes和FGF21,24小时后观察耳部红肿、厚度、组织学变化和炎症因子表达。
在体内验证FGF21抑制C. acnes诱导的TLR2/NF-κB/MAPK通路激活。
检测小鼠耳组织中TLR2表达、p65和IκBα磷酸化、p65核转位、JNK和p38磷酸化,以及TLR2和CD11b的荧光强度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | 脑心浸液肉汤 | -- | -- |
| 细胞培养 | MEM培养基 | Procell | PM150410 |
| DMEM培养基 | Gibco | 11054020 | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞处理 | 成纤维细胞生长因子21 | Wenzhou Medical University Gene Engineering Laboratory | -- |
| BAY11-7082 | MCE | -- | |
| SP600125 | Selleck | -- | |
| SB203580 | MCE | -- | |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Beyotime Biotechnology | PF313 |
| 原代细胞分离 | 分散酶II | Sigma Aldrich | D4693-1G |
| 胰蛋白酶 | Gibco | 25200072 | |
| 细胞培养 | 生长因子减少的基质胶 | Corning | 354234 |
| 无血清角质形成细胞培养基 | Sigma Aldrich | 133-500 | |
| 共培养 | Transwell小室 | Corning | 3413 |
| FGF21中和抗体 | R&D Systems | MAB25373 | |
| 对照山羊IgG | R&D Systems | AB108-C | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Abcam | -- | |
| Pierce NE-PER核和胞质提取试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 脱脂牛奶 | BD Biosciences | -- | |
| ECL底物 | Millipore | -- | |
| Amersham Image 600成像系统 | GE Healthcare Life Sciences | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| SYBR Green PCR预混液 | Vazyme | -- | |
| RNA干扰 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Opti-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 组织学 | H&E染色试剂盒 | Solarbio | -- |
| 免疫组化 | DAB辣根过氧化物酶显色试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫荧光 | DAPI | -- | -- |
| FGF21抗体 | Abcam | AB171941 | |
| FGFR1抗体 | CST | 9740S | |
| β-Klotho抗体 | Abcam | AB33416 | |
| p65抗体 | Proteintech | 66535-1-IG | |
| 免疫组织化学 | MPO抗体 | Santa Cruz | SC-390109 |
| CD68抗体 | ABclonal | A13286 | |
| 免疫荧光 | TLR2抗体 | ABclonal | A19125 |
| CD11b抗体 | ABclonal | A1581 | |
| 显微镜 | Nikon ECLIPSE Ni显微镜 | Nikon | -- |
| 共聚焦显微镜 | Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细菌培养 | C. acnes菌株(ATCC6919),培养条件(37°C,厌氧,BHI培养基),灭活条件(80°C,30分钟) 阅读提示:Materials and Methods 4.1 |
| 细胞培养 | HaCaT细胞来源(Procell, CL-0090),培养基(MEM,10%FBS,1%P/S),刺激浓度(1.0×10^7 CFU/mL),FGF21浓度(20 ng/mL) 阅读提示:Materials and Methods 4.2 |
| 原代细胞分离和共培养 | NHEK/NHDF分离方法(dispase II,trypsin),共培养体系(Transwell),中和抗体浓度(4 μg/mL) 阅读提示:Materials and Methods 4.3, 4.4 |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6J),周龄(6-8周),C. acnes注射剂量(1.0×10^7 CFU/20μL),FGF21浓度(50 μg/mL),处理时间(24小时) 阅读提示:Materials and Methods 4.5 |
| 蛋白检测 | 抗体列表,蛋白上样量(30 μg),核质分离试剂盒 阅读提示:Materials and Methods 4.6, 补充表S1 |
| mRNA检测 | 引物序列,内参GAPDH,SYBR Green试剂盒 阅读提示:Materials and Methods 4.7, 补充表S2 |
| RNA干扰 | siRNA序列(FGFR1/KLB),转染试剂(Lipofectamine 2000) 阅读提示:Materials and Methods 4.8 |
| 组织学分析 | 切片厚度(7 μm),H&E染色,IHC/IF染色条件(一抗稀释比例) 阅读提示:Materials and Methods 4.9 |