临床样本中TINCR表达分析
评估TINCR在HCC组织和癌旁组织中的表达水平及其与临床病理特征及预后的关系。
使用qRT-PCR检测54对新鲜HCC组织及配对癌旁组织中的TINCR表达;用ISH检测89例石蜡包埋HCC组织中的TINCR表达,并分析TINCR表达与临床病理参数及预后的关联。
The long noncoding RNA TINCR promotes self-renewal of human liver cancer stem cells through autophagy activation.
包含临床样本分析、细胞体外功能实验(敲低/过表达)、体内移植瘤模型,并进行了机制验证(RNA pull-down、RIP、mRNA稳定性)和功能回复实验。
HCCLM3和MHCC97L肝癌细胞系 CD133+CD13+肝癌干细胞亚群 BALB/c裸鼠皮下及原位移植瘤模型 HCC患者组织样本(54对新鲜组织和89例石蜡包埋组织)
TINCR敲低和过表达效率:使用shRNA和过表达载体,需验证敲低和过表达效果。 LCSC自我更新检测:通过成球实验评估原代和继代成球效率。 裸鼠移植瘤实验:细胞稀释浓度、注射数量、肿瘤体积测量时间点(每三天测量)。 自噬检测:Western blot检测LC3和p62,mRFP-GFP-LC3荧光,透射电镜观察自噬体。 ATG5和PTBP1的干预:使用Baf-A1(75 nM)和ATG5 siRNA,PTBP1过表达或敲低,需确认处理时间。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估TINCR在HCC组织和癌旁组织中的表达水平及其与临床病理特征及预后的关系。
使用qRT-PCR检测54对新鲜HCC组织及配对癌旁组织中的TINCR表达;用ISH检测89例石蜡包埋HCC组织中的TINCR表达,并分析TINCR表达与临床病理参数及预后的关联。
从肝癌细胞系和原代细胞中分选CD133+CD13+ LCSCs,验证TINCR在LCSCs中的表达。
通过流式分选获得CD133+CD13+亚群,进行成球培养,随后用qRT-PCR检测TINCR在LCSCs和非LCSCs中的表达。
探究敲低TINCR对LCSCs自我更新和体内肿瘤形成能力的影响。
使用慢病毒介导的shRNA敲低TINCR,检测干性因子表达、CD13+CD133+亚群比例、成球能力及体内肿瘤形成能力。
探究TINCR过表达对LCSCs自我更新和肿瘤发生的影响。
构建TINCR稳定过表达的细胞系,检测成球能力、干性因子表达、体内肿瘤形成和肺转移。
明确自噬是否参与TINCR调控的LCSCs自我更新。
通过Western blot检测自噬标志物LC3和p62,mRFP-GFP-LC3荧光检测自噬流,TEM观察自噬体;敲低ATG5或使用自噬抑制剂Baf-A1观察成球能力变化。
阐明TINCR通过PTBP1稳定ATG5 mRNA的分子机制。
通过细胞分级和RNA-ISH确定TINCR亚细胞定位;通过catRAPID预测、RNA pull-down和RIP验证TINCR与PTBP1结合;使用放线菌素D处理评估ATG5 mRNA稳定性;检测PTBP1过表达或敲低对ATG5表达的影响。
验证PTBP1过表达能否逆转TINCR敲低导致的LCSCs表型变化。
在TINCR敲低的LCSCs中过表达PTBP1,检测自噬相关蛋白、成球能力、干性因子表达和体内肿瘤形成能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | GIBCO | -- | |
| 细胞培养(成球实验) | DMEM/F12培养基 | Invitrogen | -- |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 表皮生长因子 | -- | -- | |
| 成纤维细胞生长因子-2 | -- | -- | |
| B27添加剂 | Invitrogen | -- | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| LC3抗体 | CST | 12741 | |
| P62抗体 | Abcam | ab109012 | |
| ATG5抗体 | Abcam | ab108327 | |
| PTBP1抗体 | Abcam | ab133734 | |
| CD133抗体 | Abcam | ab222782 | |
| SOX2抗体 | Abcam | ab171380 | |
| TOM20抗体 | CST | 42406S | |
| Notch1抗体 | CST | 3608S | |
| β-连环蛋白抗体 | CST | 8480S | |
| SHH抗体 | CST | 2207S | |
| β-肌动蛋白抗体 | CST | 8457S | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 细胞转染 | TINCR shRNA慢病毒 | GeneChem | -- |
| 聚凝胺 | GeneChem | -- | |
| pcDNA3.1载体 | -- | -- | |
| 透射电镜 | 透射电子显微镜 | -- | JEM-1230 |
| 自噬流分析 | mRFP-GFP-LC3腺病毒 | HanBio Co. LTD | -- |
| RNA免疫沉淀 | RNA免疫沉淀试剂盒 | Millipore | -- |
| 流式细胞术 | FACS Calibur流式细胞仪 | BD Bioscience | -- |
| 流式细胞分选 | FACS Aria III流式分选仪 | BD Bioscience | -- |
| 药物处理 | 巴佛洛霉素A1 | -- | -- |
| Mdivi-1 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | HCC组织和癌旁组织的配对关系、样本量(54对新鲜组织,89例石蜡组织)、TINCR表达检测方法(qRT-PCR和ISH)、临床分期(TNM分期)、静脉浸润情况。 阅读提示:见Materials and methods中的Patient samples and tissue specimens of HCC及Results部分。 |
| LCSC分选与培养 | 用于分选的细胞系(HCCLM3和MHCC97L)和原代细胞来源;CD133和CD13抗体克隆号及荧光标记;分选后LCSCs的培养基成分(DMEM/F12,EGF 20ng/ml,FGF2 10ng/ml,B27等);成球培养时间。 阅读提示:见Materials and methods中的Flow cytometry and cell sorting和Sphere formation assay。 |
| TINCR敲低和过表达 | shRNA靶序列(详见补充表S2)和转染MOI(20 TU/mL);TINCR过表达载体(pcDNA3.1)的构建;转染后验证效率(qRT-PCR)。 阅读提示:见Materials and methods中的Cell transfection。 |
| 自噬检测 | 自噬相关蛋白抗体(LC3、p62、ATG5等)的稀释比例和品牌货号;mRFP-GFP-LC3腺病毒的使用;Baf-A1浓度(75nM)和处理时间;TEM样品制备步骤。 阅读提示:见Materials and methods中的Western blotting、Analysis of autophagic flux、Transmission electron microscopy。 |
| 体内移植瘤模型 | 小鼠品系(BALB/c裸鼠)、性别(雄性)、年龄(4-6周);细胞接种数量(文中提及稀释,具体数量需参阅补充材料);肿瘤体积计算公式;监测间隔(每三天)。 阅读提示:见Materials and methods中的Xenograft growth in nude mice。 |