外泌体提取与鉴定
验证从 PSC 培养上清中分离的外泌体形态和标志物。
使用总外泌体分离试剂盒从 PSC 培养上清中提取外泌体,通过透射电子显微镜(TEM)观察形态,并通过 Western blot 检测外泌体标志物 CD9、ALIX、HSP70。
Pancreatic stellate cell-derived exosomal tRF-19-PNR8YPJZ promotes proliferation and mobility of pancreatic cancer through AXIN2.
文献包含体外细胞实验(CCK-8、克隆形成、伤口愈合、Transwell)、体内动物模型(皮下成瘤和肺转移)、临床样本分析(80例配对组织)及分子机制验证(RNA-seq、双荧光素酶报告基因、Western blot),层级完整。
PANC-1 细胞 AsPC-1 细胞 皮下移植瘤模型(裸鼠) 肺转移模型(裸鼠)
PSC 外泌体处理浓度:1 μg/mL 细胞接种密度:CCK-8 为 4×10^3 细胞/孔,克隆形成为 400 细胞/孔 Transwell 上室细胞悬液:300 μL,1×10^5 细胞/mL 皮下成瘤模型细胞注射量:1×10^6 细胞 动物实验伦理批准号:2200187
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证从 PSC 培养上清中分离的外泌体形态和标志物。
使用总外泌体分离试剂盒从 PSC 培养上清中提取外泌体,通过透射电子显微镜(TEM)观察形态,并通过 Western blot 检测外泌体标志物 CD9、ALIX、HSP70。
检测 PSC 外泌体对胰腺癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
用浓度为 1 μg/mL 的 PSC 外泌体处理 PANC-1 和 AsPC-1 细胞,通过 CCK-8、克隆形成、伤口愈合和 Transwell 实验检测细胞增殖、迁移和侵袭能力。
鉴定 PSC 外泌体中差异表达的 tRNA 衍生小 RNA(tDRs)。
对经 PSC 外泌体处理的 PANC-1 细胞进行小 RNA 测序,分析差异表达的 tDRs,并通过 qRT-PCR 验证显著变化的 tDRs,筛选出 tRF-19-PNR8YPJZ。
评估 tRF-19-PNR8YPJZ 在胰腺癌组织中的表达水平及其与临床病理特征和预后的关系。
通过 ISH 和 qRT-PCR 检测 80 对 PC 组织和邻近非癌组织中 tRF-19-PNR8YPJZ 的表达,分析其与临床病理特征的相关性,并通过 Kaplan-Meier 和 ROC 分析评估其预后和诊断价值。
确定外泌体 tRF-19-PNR8YPJZ 对 PC 细胞增殖、迁移和侵袭的作用。
用慢病毒构建 tRF-19-PNR8YPJZ 敲低和过表达的稳定 PC 细胞系,然后用 PSC 外泌体处理,通过 CCK-8、克隆形成、伤口愈合和 Transwell 实验检测细胞功能变化。
验证外泌体 tRF-19-PNR8YPJZ 在体内对 PC 细胞增殖和转移的影响。
将敲低 tRF-19-PNR8YPJZ 或对照的 PANC-1 细胞与 PSC 外泌体预处理后,皮下注射或尾静脉注射至裸鼠,建立皮下成瘤模型和肺转移模型,评估肿瘤生长和转移灶。
识别并验证 tRF-19-PNR8YPJZ 的直接靶基因。
对敲低 tRF-19-PNR8YPJZ 的 PANC-1 细胞进行 RNA 测序,筛选差异表达基因,并与生物信息学预测的靶基因取交集,得到 AXIN2 等;通过双荧光素酶报告实验验证 tRF-19-PNR8YPJZ 与 AXIN2 3'UTR 的直接结合。
验证 AXIN2 是否介导 tRF-19-PNR8YPJZ 对 PC 细胞的作用。
用 siRNA 敲低 AXIN2,同时敲低 tRF-19-PNR8YPJZ 并加入 PSC 外泌体处理,通过 CCK-8、克隆形成、伤口愈合和 Transwell 实验检测细胞功能变化,观察 AXIN2 敲低是否逆转 tRF-19-PNR8YPJZ 敲低的抑制效应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | PSCs 细胞系 | Procell | CP-H024 |
| AsPc-1 细胞系 | Procell | CL-0027 | |
| PANC-1 细胞系 | Procell | CL-0184 | |
| DMEM/F12 培养基 | HyClone | -- | |
| 高糖 DMEM 培养基 | HyClone | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 聚凝胺 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 嘌呤霉素 | Biomedicine Biotech | -- | |
| Lipo2000 转染试剂 | Invitrogen | -- | |
| 外泌体分离 | 总外泌体分离试剂盒 | ThermoFisher | -- |
| 外泌体RNA提取 | 外泌体 RNA 提取试剂盒 | YEASEN | -- |
| 透射电镜 | 铜网 | Servicebio | -- |
| 透射电子显微镜 | Electronics Co. LTD | -- | |
| 小RNA测序 | NEXTflex 小RNA测序试剂盒 v3 | -- | -- |
| 双荧光素酶报告实验 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Promega | -- |
| RNA提取 | TRIzol 试剂 | Invitrogen | -- |
| 反转录 | RiboSCRIPTTM 反转录试剂盒 | Ruibo | -- |
| RT-qPCR | SYBR Green 试剂 | Ruibo | -- |
| 酶标仪 | BioTek | Epoch | |
| Western blotting | PVDF 膜 | Merck | -- |
| CD9 抗体 | Proteintech | 20597-1-AP | |
| TSG101 抗体 | Proteintech | 28283-1-AP | |
| ALIX 抗体 | Proteintech | 12422-1-AP | |
| β-catenin 抗体 | Proteintech | 51067-2-AP | |
| AXIN2 抗体 | Proteintech | 20540-1-AP | |
| TCF4 抗体 | Proteintech | 22337-1-AP | |
| LEF1 抗体 | Proteintech | 14972-1-AP | |
| β-actin 抗体 | Proteintech | 20536-1-AP | |
| 增强化学发光试剂 | Boster | -- | |
| 细胞功能实验 | 基质胶 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 结晶紫 | Solarbio | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 外泌体提取与鉴定 | 外泌体分离试剂盒型号、细胞培养上清体积、沉淀试剂用量 阅读提示:参见 Methods 2.7 和 2.8 |
| 细胞培养 | 细胞系来源(Procell)和培养基(DMEM/F12 或高糖 DMEM + 10% FBS) 阅读提示:参见 Methods 2.2 |
| 体外功能实验 | 外泌体处理浓度(1 μg/mL)、细胞接种密度(CCK-8:4×10^3/孔;克隆形成:400/孔)、Transwell 基质胶浓度(8%) 阅读提示:参见 Methods 2.3-2.6 |
| 体内实验 | 细胞预处理(1 μg/mL 外泌体,7天)、皮下注射细胞量(1×10^6)、肺转移模型注射途径(尾静脉) 阅读提示:参见 Methods 2.13 和结果 3.5 |
| 靶基因验证 | 双荧光素酶报告质粒构建(GeneChem)、野生型和突变型序列 阅读提示:参见 Methods 2.10 和结果 3.6 |
| 临床样本分析 | 样本数量(80对)、cut-off值(中位数) 阅读提示:参见 Methods 2.1 和结果 3.3 |