HOXD8通过上调SHMT1表达抑制肾细胞癌生长

HOXD8 suppresses renal cell carcinoma growth by upregulating SHMT1 expression.

作者信息Yang Yang, Minghui Zhang, Yaxuan Zhao, Tingzhi Deng, Xiang Zhou, Hanxu Qian, Mengxuan Wang, Chuanchuan Zhang, Zhengjin Huo, Zijun Mao, Zhufeng Shao, Mengxue Liu, Chunhua Yang, Chunhua Lin, Fuyi Xu, Geng Tian, Yin Zhang
PMID37752684
发布时间2023-12
DOI10.1111/cas.15982

实验完整度

包含体外细胞功能实验、体内异种移植瘤模型、临床样本分析及ChIP等机制验证,证据层级多样。

主要模型

OSRC-2和ACHN肾细胞癌细胞系 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 BXD小鼠肾组织表达数据集 13例RCC患者肿瘤组织样本

重点核对

SHMT1在RCC组织中的表达水平及与患者预后的相关性 SHMT1过表达对RCC细胞增殖、迁移及细胞周期的影响 SHMT1过表达对裸鼠皮下移植瘤生长的影响 HOXD8对SHMT1表达的调控及其结合位点的验证

摘要

氨基酸合成的增强据报道可促进肿瘤发生。丝氨酸/甘氨酸生物合成途径是由细胞质丝氨酸羟甲基转移酶(SHMT)1和线粒体SHMT2催化的丝氨酸和甘氨酸的可逆转化;然而,SHMT1在肾细胞癌(RCC)中的作用仍不清楚。我们发现SHMT1低表达与RCC患者较差的总生存期相关。体外研究表明,SHMT1过表达抑制了RCC的增殖和迁移。在小鼠肿瘤模型中,SHMT1显著延缓了RCC肿瘤的生长。此外,通过基因网络分析,我们发现了几个SHMT1相关基因,其中同源盒D8 (HOXD8)被确定为SHMT1的调节因子。敲低HOXD8降低了SHMT1的表达,导致RCC生长加快,并挽救了SHMT1过表达诱导的细胞迁移缺陷。此外,ChIP实验发现HOXD8与SHMT1启动子的结合位点位于-456~-254 bp区域。总之,SHMT1在RCC中作为肿瘤抑制因子发挥作用。转录因子HOXD8可以促进SHMT1的表达并抑制RCC细胞的增殖和迁移,这提供了SHMT1在RCC肿瘤生长中的新机制,并可能作为临床治疗的潜在治疗靶点候选。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SHMT1在肾细胞癌中的表达和功能及其上游调控机制尚不清楚,本研究旨在探讨SHMT1在RCC中的作用及其调控因子。
核心机制
转录因子HOXD8结合SHMT1启动子区域(-456~-254 bp)上调SHMT1表达,SHMT1通过诱导G2/M期阻滞和DNA损伤抑制RCC细胞增殖和迁移。
主要证据
通过GEPIA2数据库和临床样本分析发现SHMT1低表达与不良预后相关;体外过表达SHMT1抑制RCC细胞增殖和迁移,敲低则促进;小鼠异种移植瘤模型证实SHMT1抑制肿瘤生长;ChIP和荧光素酶报告实验证实HOXD8直接结合并激活SHMT1启动子。
研究意义
研究揭示了SHMT1在RCC中的肿瘤抑制作用及其调控机制,提示HOXD8-SHMT1轴可能成为RCC治疗的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本SHMT1表达分析

评估SHMT1表达与RCC分期及患者预后的关系

利用GEPIA2数据库分析258例KIRC患者SHMT1表达与分期和生存的关系;Western blot检测6对RCC及癌旁组织;IHC染色检测13对RCC及癌旁组织。

2

体外细胞功能实验

验证SHMT1对RCC细胞增殖、迁移和细胞周期的影响

在OSRC-2和ACHN细胞中过表达或敲低SHMT1,通过CCK8、Transwell、划痕实验、流式细胞术和Western blot检测细胞增殖、迁移、细胞周期和相关蛋白。

3

体内异种移植瘤实验

验证SHMT1对RCC肿瘤生长的抑制作用

将稳定过表达SHMT1的OSRC-2细胞皮下注射至裸鼠,测量肿瘤体积和重量,并进行IHC染色检测增殖和凋亡标志物。

4

BXD小鼠eQTL分析

寻找调控SHMT1表达的上游基因

利用GeneNetwork数据库的BXD小鼠肾组织表达数据,进行eQTL定位和基因关联分析,筛选SHMT1的潜在调控因子。

5

HOXD8调控SHMT1验证

验证HOXD8能否通过结合SHMT1启动子调控其表达

在OSRC-2和ACHN细胞中过表达或敲低HOXD8,检测SHMT1蛋白水平;通过荧光素酶报告实验和ChIP实验验证HOXD8对SHMT1启动子的结合和激活作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
OSRC-2Procell Life Science & TechnologyCL-0177
ACHNProcell Life Science & TechnologyCL-0021
JetPRIME转染试剂Polyplus--
细胞计数试剂盒-8BimakeB34304
Transwell小室Corning3244
TRIzol试剂Invitrogen15596026
逆转录酶VazymeR323-010
SYBR qPCR预混液VazymeQ711-02
细胞裂解液BeyotimeP0013
PVDF膜Millipore--
抗SHMT1抗体CSTD3B3J
抗cyclinB抗体CST4138S
抗CDC20抗体CST4823S
抗β-actin抗体GenScriptA00702
抗HOXD8抗体SantaCruzsc-515357
抗p21抗体ABclonalA1483
抗γ-H2AX抗体CUSABIOCSB-PA010097OA139phHU
抗磷酸化CDK1抗体CUSABIOCSB-PA000492
抗磷酸化CHK1抗体CUSABIOCSB-PA006769
抗磷酸化CDC25抗体CUSABIOCSB-PA080107
抗cyclinE抗体SANTAsc-377100
抗cyclinD抗体WanleiBioWL01435a
ECL检测试剂盒Wanleibio--
抗SHMT1抗体(IHC)CST80715
抗Ki67抗体CST9449
抗cleaved caspase-3抗体CST9661L
抗p21抗体(IHC)Proteintech10355-1-AP
免疫组织化学试剂盒Gene TechGK600510
荧光素酶报告实验底物试剂盒BeyotimeRG005
染色质免疫沉淀试剂盒Cell Signaling Technology9003
定点突变试剂盒Yeasen11003ES10
凝胶回收试剂盒Omega Bio-Tek--
Hieff Clone一步克隆试剂盒Yeasen10911ES08
彗星实验试剂盒ELK BiotechnologyCA001
DS18561882MCEHY-130251
RPMI-1640培养基----
最低必需培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本SHMT1表达分析
SHMT1表达与RCC分期及生存的关系,样本量259例KIRC患者,6例RCC及癌旁组织(Western blot),13例RCC及癌旁组织(IHC)
阅读提示:见Results 3.1节及Figure 1
细胞培养与转染
细胞系(OSRC-2和ACHN)的来源及培养条件;转染试剂JetPRIME;细胞转染后48-72小时收获
阅读提示:见Materials and Methods 2.2节
细胞增殖实验(CCK8)
2000细胞/孔接种于96孔板;CCK8浓度10%,孵育1小时;检测波长450 nm;记录4-5天
阅读提示:见Materials and Methods 2.3节
细胞迁移实验(Transwell和划痕)
Transwell小室孔径8μm;细胞数5×10^4;孵育24或48小时;划痕实验用200μL枪头划痕,培养48小时
阅读提示:见Materials and Methods 2.4和2.5节
体内异种移植瘤模型
BALB/c裸鼠年龄6-8周;细胞注射量1×10^7;肿瘤体积测量频率每2天;处死标准肿瘤体积达1000 mm^3
阅读提示:见Materials and Methods 2.8节
HOXD8调控机制验证
ChIP结合区域-456~-254 bp;荧光素酶报告实验转染条件(HEK293T细胞2.0×10^5)
阅读提示:见Materials and Methods 2.10-2.11节及Results 3.6节