生物信息学分析
探索GBP1在宫颈癌中的表达、与免疫浸润及预后的关系
整合TCGA和GTEx数据库分析GBP1表达,使用HPA数据库验证蛋白表达,单细胞测序数据分析表达细胞类型;进行PPI、基因相关性、药物敏感性、TME相关性、富集分析。
Function and mechanism of GBP1 in the development and progression of cervical cancer.
包含体外细胞功能实验(敲低/过表达、CCK8、Transwell、凋亡检测)、体内动物模型、多色免疫荧光组织验证、RNA-seq可变剪接分析、iRIP-seq及CoIP-MS机制验证,多个独立证据层级。
Caski宫颈癌细胞系 雌性裸鼠皮下移植瘤模型 104例宫颈癌组织样本
宫颈癌组织芯片(HUteS120Su01)及104例样本的mIF结果 Caski细胞中siRNA敲低和慢病毒过表达的效率(qPCR及Western blot验证) CCK8增殖检测、Transwell侵袭实验和凋亡流式检测的具体条件 体内实验中每组5只裸鼠,皮下注射4×10^6细胞,观察17天 RNA-seq及iRIP-seq、CoIP-MS的样本处理与数据分析方法
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探索GBP1在宫颈癌中的表达、与免疫浸润及预后的关系
整合TCGA和GTEx数据库分析GBP1表达,使用HPA数据库验证蛋白表达,单细胞测序数据分析表达细胞类型;进行PPI、基因相关性、药物敏感性、TME相关性、富集分析。
验证GBP1在宫颈癌组织中的表达及其与免疫标志物PD-1/PD-L1和预后的关系
购买宫颈癌组织芯片,进行mIF染色检测GBP1、CD3、PD-1、PD-L1、CK,并进行生存分析。
验证GBP1对宫颈癌细胞增殖、侵袭和凋亡的影响
在Caski细胞中通过siRNA敲低和慢病毒过表达GBP1,通过qRT-PCR和Western blot验证效率,通过CCK8、Transwell和流式凋亡检测功能。
验证GBP1过表达对宫颈癌移植瘤生长的影响
以Caski-OE-NC和Caski-OE-GBP1细胞皮下注射裸鼠,测量肿瘤体积和重量。
探索GBP1调控的可变剪接事件
对GBP1过表达和敲低的Caski细胞进行RNA-seq,鉴定可变剪接事件,并进行富集分析。
验证GBP1是否为经典RNA结合蛋白和剪接因子
使用改良的RNA免疫沉淀测序检测GBP1结合的转录本,发现GBP1直接结合的转录本很少,证明其非经典RBP。
鉴定与GBP1相互作用的剪接因子
通过CoIP-MS实验鉴定GBP1相互作用蛋白,进行生信分析,发现8个剪接因子。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 多色免疫荧光 | 多克隆兔抗GBP1抗体 | Proteintech | 15303-1-AP |
| qRT-PCR | TRIZOL试剂 | Ambion | 15596-018 |
| Hieff™ qPCR SYBR®Green Master Mix | YEASEN | 11202ES08 | |
| NanoPhotometer N50分光光度计 | IMPLEN | -- | |
| ABI QuantStudio5实时荧光定量PCR仪 | -- | -- | |
| Western blot | 抗Flag抗体 | Sigma | F1804 |
| 抗GBP1抗体 | ABclonal | A3879 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-IG | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG | Proteintech | SA00001-1 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG | Proteintech | SA00001-2 | |
| 增强化学发光试剂 | Bio-Rad | 170506 | |
| CCK8检测 | 细胞计数试剂盒-8 | MCE | HY-K0301 |
| Transwell侵袭实验 | Transwell小室 | Corning | 3422 |
| 基质胶 | BD Biosciences | 356234 | |
| 胎牛血清 | Gibco | 10091148 | |
| 0.1%结晶紫 | Beyotime | C0121 | |
| 倒置显微镜 | Mshot | MF52-N | |
| 细胞凋亡检测 | Fluor647标记的Annexin V和PI | 4A Biotech | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Procell | PM150210 |
| siRNA转染 | Liopfectamine RNAiMAX转染试剂 | Invitrogen | 13778150 |
| RNA-seq | KAPA链特异性mRNA测序试剂盒 | KAPA | KK8544 |
| VAHTS mRNA捕获磁珠 | -- | N401-01 | |
| Roche接头 | Roche | KK8726 | |
| smartspec plus分光光度计 | Bio-Rad | -- | |
| iRIP-seq | RNA酶抑制剂 | Takara | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Bimake | -- | |
| Flag抗体 | Sigma | F7425 | |
| IgG抗体 | -- | AC005 | |
| 蛋白A/G Dynabeads磁珠 | Thermo Scientific | -- | |
| 蛋白酶K | Sangon Biotech | -- | |
| KAPA RNA Hyper Prep试剂盒 | KAPA | -- | |
| CoIP-MS | 抗Flag抗体 | Sigma | F1804 |
| 小鼠IgG | Millipore | 12-371 | |
| 蛋白A/G磁珠 | -- | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 | |
| GAPDH抗体 | ATA | ATPA00013Rb |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 多色免疫荧光实验 | 组织芯片来源(上海芯超生物科技有限公司),组织芯片型号HUteS120Su01,GBP1抗体稀释度及孵育时间,各指标染色顺序,光谱扫描仪器型号,104例样本临床数据 阅读提示:Methods中的Multiplex immunofluorescence,Figure legends 7 |
| 细胞培养与转染 | Caski细胞系培养条件(37°C、5% CO2、10% FBS、1%青霉素/链霉素),siRNA序列及转染试剂(RNAiMAX),过表达慢病毒MOI=100,嘌呤霉素筛选浓度未明确说明 阅读提示:Methods中的Cell culture、siRNA transfection、Lentivirus vector infection |
| 体外功能实验 | CCK8检测的细胞数(104个/孔)、复孔数(3个),Transwell实验中细胞数(5×10^5)、Matrigel浓度(1:8)、培养时间(48h),凋亡检测的Annexin V/PI染色步骤,重复次数(每组3/6个复孔) 阅读提示:Methods中的CCK8 assay, transwell invasion assay and cell apoptosis assay,Figure legends 9和10 |
| 动物实验 | 裸鼠品系(雌性、6-8周龄),每组5只,皮下注射细胞数(4×10^6),观察时间(17天),肿瘤体积测量公式,肿瘤重量测量 阅读提示:Methods中的Animal model,Figure legends 11 |
| RNA-seq和剪接分析 | RNA-seq文库制备试剂盒(KAPA),测序平台(Illumina Novaseq6000),比对软件TopHat2,可变剪接分析工具,差异剪接事件的统计显著性阈值(p<0.05) 阅读提示:Methods中的RNA sequencing and alternative splicing analysis,Figure legends 12 |
| iRIP-seq | UV交联剂量(400 mJ/cm2),RNase抑制剂浓度(400 U/mL),DNase I浓度(0.1 U/μl),抗体(Flag和IgG),peak calling方法(ABLIRC和Piranha),统计显著性(p<0.05) 阅读提示:Methods中的Improved RNA immunoprecipitation sequencing (iRIP-seq),Figure legends 13 |
| CoIP-MS | 抗体(anti-Flag, F1804, 10μg;Mouse IgG, 12-371, 5μg),磁珠用量(20 μl),洗液成分,银染步骤,质谱分析平台,蛋白质鉴定筛选标准 阅读提示:Methods中的Co-immunoprecipitation (CoIP)-mass spectroscopy (MS),Figure legends 14和15 |