缺氧诱导的P4HA1过表达通过下调FBP1增强内皮糖酵解促进缺血后血管生成

Hypoxia-induced P4HA1 overexpression promotes post-ischemic angiogenesis by enhancing endothelial glycolysis through downregulating FBP1.

作者信息Yating Xu, Di Xia, Kai Huang, Minglu Liang
PMID38238754
发布时间2024-01-18
DOI10.1186/s12967-024-04872-x

实验完整度

包含体外细胞实验(EdU、迁移、管形成)、体内HLI模型及血管密度检测、糖酵解功能测定(Seahorse、葡萄糖摄取、乳酸)、RNA-seq及机制验证(ChIP、双荧光素酶)。

主要模型

人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 后肢缺血(HLI)小鼠模型 内皮细胞-周细胞球体共移植模型 人微血管周细胞(PCs)

重点核对

细胞类型:HUVECs和PCs,培养条件(ECM培养基,37°C,5% CO2) 缺氧条件:1% O2,5% CO2,处理时间(3, 6, 12小时) 腺病毒感染:Ad-P4HA1、Ad-shP4HA1、Ad-NC、Ad-shNC,感染时间24小时 2-DG处理浓度:5 mM,处理时间24小时 octyl-α-KG处理浓度:1 mM,处理时间24小时

摘要

背景:血管生成对于缺血性疾病中的组织修复至关重要,其依赖于糖酵解作为主要能量来源。脯氨酰4-羟化酶亚基α1(P4HA1)是胶原脯氨酰4-羟化酶的催化亚基,在多种癌症中是糖酵解相关基因。然而,其在糖酵解诱导的血管生成中的作用仍不清楚。方法:使用腺病毒调节P4HA1表达。通过5-乙炔基-2'-脱氧尿苷掺入、Transwell迁移和管形成实验在体外评估内皮血管生成。在体内实验中,测量后肢缺血(HLI)模型中的血流和毛细血管密度。采用糖酵解应激测定、葡萄糖摄取、乳酸产生和定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)评估糖酵解能力。通过蛋白质印迹和RT-PCR验证的转录组测序用于确定潜在机制。结果:在缺氧条件下及HLI模型中,内皮细胞中P4HA1表达上调。P4HA1过表达在体外和体内促进血管生成,而其敲低则产生相反效果。P4HA1过表达通过在胶原羟基化过程中消耗α-酮戊二酸(α-KG)降低细胞α-KG水平。α-KG下调降低了DNA双加氧酶、ten-eleven translocation 2(TET2)的蛋白水平及其在果糖-1,6-二磷酸酶(FBP1)启动子上的募集,导致FBP1表达降低。FBP1的降低增强了糖酵解代谢,从而促进内皮血管生成。结论:缺氧诱导的内皮P4HA1过表达通过P4HA1/α-KG/TET2/FBP1通路促进糖酵解代谢重编程,从而增强血管生成。该研究结果强调了P4HA1在缺血后血管生成中的重要性,提示其在缺血后组织修复中的治疗潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
P4HA1在缺血后血管生成中的作用及其机制是否通过调控内皮糖酵解实现?
核心机制
缺氧诱导内皮P4HA1过表达,通过消耗α-KG降低TET2蛋白水平及其在FBP1启动子上的募集,导致FBP1表达下调,从而增强糖酵解代谢,促进血管生成。
主要证据
体外HUVECs中P4HA1过表达促进增殖、迁移和管形成,敲低则抑制;体内HLI模型中P4HA1过表达改善血流恢复和血管密度,敲低则相反;Seahorse实验显示P4HA1过表达提高糖酵解和糖酵解能力。
研究意义
该研究首次建立P4HA1与TET2-FBP1通路通过α-KG的联系,提出P4HA1/α-KG/TET2/FBP1通路,为缺血性疾病(如外周动脉疾病、中风、心肌梗死)的治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

观察P4HA1在缺氧和HLI模型中的表达

确定P4HA1在缺血条件下的表达变化及其在EC中的定位。

在HUVECs中通过Western blot检测缺氧(3、6、12小时)下P4HA1蛋白水平;在HLI小鼠模型中对腓肠肌组织进行Western blot和免疫荧光染色,检测P4HA1与CD31共定位。

2

评估P4HA1过表达对血管生成的影响

验证P4HA1过表达是否在体外和体内促进血管生成。

体外:HUVECs感染Ad-P4HA1后,进行EdU掺入、Transwell迁移和管形成实验。体内:HLI小鼠腓肠肌注射Ad-P4HA1,通过激光多普勒检测血流恢复,免疫荧光检测CD31阳性血管密度。

3

评估P4HA1敲低对血管生成的影响

验证P4HA1敲低是否抑制血管生成。

体外:HUVECs感染Ad-shP4HA1后,进行增殖、迁移和管形成实验。体内:HLI小鼠注射Ad-shP4HA1,评估血流恢复和血管密度。

4

检测P4HA1对糖酵解的影响

验证P4HA1是否通过调节糖酵解促进血管生成。

通过RNA-seq分析P4HA1过表达组的GSVA和GSEA富集,RT-PCR检测糖酵解酶mRNA水平,测量葡萄糖摄取和乳酸产生,Seahorse分析ECAR。

5

糖酵解抑制对P4HA1介导血管生成的逆转作用

确认P4HA1通过糖酵解促进血管生成。

P4HA1过表达HUVECs用2-DG处理,检测增殖、迁移和管形成变化。

6

鉴定FBP1在P4HA1调控糖酵解中的作用

确定P4HA1通过下调FBP1增强糖酵解。

RNA-seq显示FBP1下调;RT-PCR和Western blot验证P4HA1过表达/敲低对FBP1的影响;过表达FBP1观察能否逆转P4HA1介导的糖酵解增强。

7

验证TET2介导P4HA1对FBP1的调控

阐明P4HA1通过TET2下调FBP1的机制。

双荧光素酶报告基因实验定位FBP1启动子关键区域;ChIP检测TET2结合;Western blot检测TET2和HNF4α蛋白水平;过表达TET2观察能否逆转P4HA1介导的FBP1下调及血管生成。

8

验证α-KG在P4HA1调控TET2中的作用

证明P4HA1通过消耗α-KG降低TET2水平。

测量细胞内α-KG水平;使用octyl-α-KG处理观察能否恢复TET2和FBP1表达及逆转P4HA1诱导的血管生成。

9

体内验证TET2-FBP1通路介导P4HA1的促血管生成效应

确认在体内P4HA1过表达通过下调内皮TET2-FBP1通路促进血管生成。

在HLI模型中分离EC和非EC组分,检测TET2和FBP1蛋白水平;进行球体基于血管生成测定,比较P4HA1过表达及同时过表达FBP1或TET2的血管密度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
内皮细胞培养基 (1001, ScienCell)ScienCell1001
周细胞培养基 (CM-H169)ProcellCM-H169
培养箱 (3131, Thermo Scientific)Thermo Scientific3131
CD31偶联磁珠Thermo Scientific11061D
甲基纤维素MCEHY-125,861
基质胶BD Biosciences354234
纤维蛋白原Sigma341576
凝血酶Sigma10602400001
RIPA裂解液ServicebioG2002
BCA蛋白定量试剂盒ServicebioG2026
PVDF膜MilliporeIPVH00010
化学发光试剂ServicebioG2014
Clinx成像系统----
抗P4HA1抗体Proteintech12658-1-AP
抗β-肌动蛋白抗体Proteintech20536-1-AP
抗TET2抗体AbClonalA5682
抗FBP1抗体AbClonalA11664
抗P4HA2抗体AbClonalA22150
抗P4HA3抗体AbClonalA13767
抗P4HB抗体AbClonalA19239
抗HIF-1α抗体Gene TexGTX127309
抗Flag抗体Thermo ScientificMA1-91878
驴血清ServicebioG1217
DAPIServicebioGDP1024
抗NG2抗体Abcamab275024
抗肌球蛋白抗体Abcamab37484
抗CD31抗体Abcamab182981
Gateway LR Clonase II酶Thermo Fisher Scientific11791020
PacI限制酶Thermo Fisher ScientificFD2204
EdU细胞增殖试剂盒BeyotimeC0075L
TRIzol试剂Takara9108
Nanodrop分光光度计Thermo Fisher ScientificND-LITE
PrimeScript™反转录试剂盒TakaraRR037A
SYBR Green预混液VazymeQ121-02/03
葡萄糖检测试剂盒SolarbioBC2505
乳酸检测试剂盒Nanjing JianchengA019-2
α-酮戊二酸含量检测试剂盒Sigma-AldrichMAK054
ATP检测试剂盒BeyotimeS0026
Seahorse XF96细胞外通量分析仪Seahorse Bioscience--
谷氨酰胺MCEHY-N0390
葡萄糖MCEHY-B0389
寡霉素MCEHY-N6782
2-脱氧葡萄糖MCEHY-13966
ChIP试剂盒Millipore--
抗TET2抗体 (MABE 462)MilliporeMABE 462
pGL3荧光素酶报告载体Promega--
pRL-TK内参质粒MiaolingP0372
双荧光素酶报告基因检测试剂盒BeyotimeRG027
GraphPad Prism软件GraphPad Software--
激光多普勒系统Perimed--
CD31偶联磁珠Thermo Scientific11061D

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与缺氧处理
HUVECs分离方法、ECM培养基成分、缺氧条件(1% O2,5% CO2)及处理时间(3、6、12小时)
阅读提示:Methods中Cell culture and adenovirus infection部分,以及Figure 1A图注
P4HA1过表达和敲低
腺病毒构建方法(Gateway系统)、感染复数(MOI)或感染剂量、感染时间(24小时)
阅读提示:Methods中Recombinant adenovirus construction和Cell culture and adenovirus infection部分
体外血管生成实验
EdU浓度(0.1%)、处理时间(12小时);Transwell上室细胞数、下室FBS浓度(5%);Matrigel包被浓度、HUVECs接种数(2×10^4)及管形成观察时间(4小时)
阅读提示:Methods中5-Ethynyl-2′-deoxyuridine (EdU) incorporation assay, Transwell migration assay, 和Tube formation assay部分,以及Figure 2图注
体内HLI模型
小鼠品系(C57BL/6J)、性别(雄性)、年龄(6周)、麻醉剂量(50 mg/kg戊巴比妥钠)、手术方法(股动脉结扎并切除)、腺病毒注射剂量(100 μL,1×10^9 PFU)及时间点(术后第1、7天)
阅读提示:Methods中Murine model of hindlimb ischemia部分,以及Figure 2E-G图注
糖酵解功能检测
葡萄糖摄取、乳酸产生、ATP和α-KG检测试剂盒及操作步骤;Seahorse实验细胞数(2.5×10^4)、谷氨酰胺浓度(2 mM)、葡萄糖(20 mM)、寡霉素(2 μM)、2-DG(50 mM)注射顺序
阅读提示:Methods中Measurement of glucose uptake, lactate production, cellular ATP, and cellular α-KG levels和Glycolysis stress assay部分,以及Figure 4E-J图注
机制研究(TET2和FBP1)
双荧光素酶报告基因质粒构建(pGL3-FBP1截短体,-200至-1000)、ChIP实验中TET2抗体(MABE 462)及FBP1引物序列、ChIP DNA检测方法;octyl-α-KG处理浓度(1 mM)
阅读提示:Methods中Dual-luciferase reporter assay和Chromatin immunoprecipitation assay部分,以及Figure 7和8图注