M1巨噬细胞中白细胞介素-1β极化介导糖尿病心肌纤维化

Interleukin-1β polarization in M1 macrophage mediates myocardial fibrosis in diabetes.

作者信息Wenli Guo, Chen Yang, Jiawei Zou, Tingting Yu, Mingde Li, Ruilin He, Keyang Chen, Rafaela C R Hell, Eric R Gross, Xin Zou, Yao Lu
PMID38492336
发布时间2024-04
DOI10.1016/j.intimp.2024.111858

实验完整度

研究包含体内动物模型(db/db小鼠)、体外细胞共培养、单细胞RNA测序、流式细胞术、免疫荧光、ELISA等多个独立实验层级,并进行功能验证(IL-1β抑制实验)和机制验证(配体-受体互作分析)。

主要模型

db/db小鼠(8周、12周、20周) RAW264.7巨噬细胞 原代心脏成纤维细胞

重点核对

小鼠分组:8周(G1)、12周(G2)、20周(G3) 高糖刺激浓度:25 mmol/L和35 mmol/L葡萄糖处理巨噬细胞48小时 IL-1β抑制剂:Diacerein处理 共培养体系:RAW264.7细胞与成纤维细胞Transwell共培养48小时 M1/M2极化检测:流式细胞术、免疫荧光(CD86/CD206、iNOS/CD206)

摘要

背景:糖尿病是一个全球性的健康问题,其常见并发症之一是糖尿病心肌病,以心肌慢性炎症为特征。巨噬细胞是静息心脏中发现的主要白细胞。因此,我们研究了巨噬细胞在糖尿病心肌纤维化中的潜在机制。方法:本文采用超声心动图评估心功能,Masson三色染色评估心肌纤维化程度,随后进行单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析db/db小鼠不同糖尿病阶段心脏中免疫细胞、内皮细胞(ECs)和成纤维细胞(FBs)的表型、功能、发育轨迹和相互作用。同时共培养巨噬细胞和心脏成纤维细胞,以研究巨噬细胞与成纤维细胞之间的信号传导。结果:我们发现随着糖尿病的发展,出现心肌肥大和纤维化,并伴有心功能障碍。通过RNA测序鉴定出相当比例的免疫细胞、内皮细胞和成纤维细胞。观察到最显著的变化是巨噬细胞,它们经历M1极化,对氧化应激和细胞外基质(ECM)形成至关重要。我们进一步发现M1巨噬细胞分泌白细胞介素-1β(IL-1β),与成纤维细胞表面的受体相互作用,导致心肌纤维化。此外,M1巨噬细胞与内皮细胞之间的相互作用也通过IL-1β及其相应受体在纤维化和免疫应答调节中发挥关键作用。结论:M1巨噬细胞通过白细胞介素-1β与成纤维细胞的相互作用介导糖尿病心肌纤维化。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
巨噬细胞在糖尿病心肌纤维化中的潜在机制是什么?
核心机制
高糖环境促进巨噬细胞M1极化,分泌IL-1β,与成纤维细胞表面的IL1r1和IL1rap受体结合,激活成纤维细胞,导致心肌纤维化。
主要证据
scRNA-seq显示糖尿病心肌中M1巨噬细胞比例增加;体外共培养实验证实高糖诱导的M1巨噬细胞分泌IL-1β,上调成纤维细胞α-SMA表达,而IL-1β抑制剂Diacerein可抑制成纤维细胞活化。
研究意义
靶向巨噬细胞M1极化或抑制IL-1β表达可能成为治疗糖尿病心肌损伤的有前景的策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内模型建立与表型分析

观察不同糖尿病阶段小鼠的心脏结构和功能变化,建立糖尿病心肌病模型。

选用8周(G1)、12周(G2)、20周(G3)的db/db小鼠,检测血糖和体重,行超声心动图评估心功能,并进行心脏组织学染色。

2

单细胞转录组分析

解析糖尿病心脏中细胞组成、巨噬细胞亚群及其动态变化。

对各阶段小鼠心脏进行scRNA-seq,鉴定细胞类型,分析巨噬细胞亚群(M1、M2)及轨迹,并分析细胞间通信。

3

体外巨噬细胞极化与IL-1β表达验证

验证高糖环境诱导巨噬细胞M1极化并增加IL-1β分泌。

使用不同浓度葡萄糖处理RAW264.7细胞,通过免疫荧光、流式细胞术和ELISA检测M1极化标志物(iNOS)和IL-1β表达。

4

巨噬细胞-成纤维细胞共培养实验

探究M1巨噬细胞通过IL-1β激活成纤维细胞的机制。

将RAW264.7细胞与心脏成纤维细胞共培养,在高糖或高糖加Diacerein环境下,检测成纤维细胞活化标志物α-SMA和IL-1β水平。

5

内皮细胞与巨噬细胞相互作用分析

分析糖尿病心脏中内皮细胞的变化及其与巨噬细胞的相互作用。

通过scRNA-seq分析内皮细胞亚群,并结合NicheNet和CellChat分析巨噬细胞与内皮细胞间的配体-受体相互作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基文中未明确说明--
胎牛血清文中未明确说明--
青霉素文中未明确说明--
链霉素文中未明确说明--
D-甘露醇Sigma-Aldrich--
双醋瑞因----
CD45抗体(APC-CY7标记)BD Pharmingen#557659
F4/80抗体(BV421标记)BD Pharmingen#565411
CD11b抗体(FITC标记)BD Pharmingen#557396
CD86抗体(PE标记)BD Pharmingen#561963
CD206抗体(APC标记)BD Pharmingen#565250
iNOS抗体BioLegend#696802
F4/80抗体Proteintech--
CD80抗体Proteintech--
CD206抗体Proteintech--
Alexa Fluor标记的山羊抗小鼠二抗Abcam--
Alexa Fluor标记的山羊抗兔二抗Abcam--
小鼠ELISA试剂盒文中未明确说明CSB-E8054
异氟烷----
胶原酶II----
分散酶II----
Triton X-100----
Chromium控制器10x Genomics--
CytoFLEX SRT流式细胞仪Beckman--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、周龄、分组、饲养条件、血糖和体重检测
阅读提示:Materials and methods, 2.1
细胞培养与处理
巨噬细胞系(RAW264.7)、培养基成分、葡萄糖浓度(5.5/25/35 mmol/L)和处理时间(48h)、渗透压对照(D-甘露醇)、共培养时间和条件
阅读提示:Materials and methods, 2.2
单细胞测序
组织消化步骤、酶浓度、细胞活力标准、10x Genomics文库制备流程
阅读提示:Materials and methods, 2.3, 2.4
流式细胞术
抗体克隆号和荧光标记、染色步骤、仪器设置
阅读提示:Materials and methods, 2.12
免疫荧光
抗体来源、稀释比例、抗原修复条件、封闭液组成
阅读提示:Materials and methods, 2.14
ELISA
检测试剂盒货号(CSB-E8054)、样本类型和稀释
阅读提示:Materials and methods, 2.15