不同极化状态的肿瘤相关中性粒细胞释放中性粒细胞胞外诱捕网对晚期非小细胞肺癌免疫治疗的预后价值

Prognostic value of tumour-associated neutrophils in different polarization status releasing neutrophil extracellular traps in the immunotherapy of advanced non-small cell lung cancer.

作者信息Weiwei Hong, Xin Ye, Lin Chen, Xiangzhi Chai, Yan Yin, Zhaoqing Li, Chen Fang, Xiaoying Qian, Biao Yu, Guizhen Qin, Xinyuan Yao, Bingbiao Zhou, Chuanhong Luo, Chengsi Shu, Dengying Chen, Yong Li, Yong Wang
PMID41573639
发布时间2026-01-07
DOI10.3389/fonc.2025.1705716

实验完整度

回顾性临床队列研究,结合多重免疫荧光、免疫组化、生存分析与多因素Cox回归,包含患者样本、功能验证(免疫细胞浸润相关性)和机制探讨。

主要模型

晚期非小细胞肺癌患者肿瘤组织样本

重点核对

115例接受一线免疫治疗的晚期NSCLC患者 多重免疫荧光染色评估TANs极化(MPO+CD11b+CD206-为N1,MPO+CD11b+CD206+为N2) NETs定义为MPO和citH3共染色 NETs、N1、N2、N1+、N2+的最佳截断值经X-tile软件确定 CD8+ T细胞和Treg细胞浸润通过免疫组化评估

摘要

目的:本研究分析了释放中性粒细胞胞外诱捕网(NETs)的肿瘤相关中性粒细胞(TANs)的极化类型,以及中性粒细胞极化对非小细胞肺癌(NSCLC)免疫治疗疗效的影响。方法:本研究回顾性收集了115例接受一线免疫治疗的晚期NSCLC患者的临床数据和病理样本。使用多重免疫荧光染色评估TANs极化状态和NETs表达。结果:我们发现NETs的存在与肿瘤相关N1中性粒细胞呈负相关(P < 0.001),但与肿瘤相关N2中性粒细胞呈正相关(P < 0.001)。进一步分析显示,与NETs-high组相比,NETs-low组接受一线免疫治疗的无进展生存期(PFS)延长(15.0 vs 9.9个月,P = 0.045),总生存期(OS)延长(40.5 vs 22.0个月,P = 0.002)。我们还发现,在肿瘤相关N1中性粒细胞中,NETs-low和NETs-high组之间的免疫治疗疗效没有显著差异。然而,与NETs-high表达相比,NETs-low表达的肿瘤相关N2中性粒细胞患者的PFS(17.3 vs 9.2个月,P = 0.008)和OS(40.5 vs 18.3个月,P < 0.001)均有改善。我们还发现,表达NETs的肿瘤相关N2中性粒细胞与CD8+ T细胞浸润呈负相关,但与Treg细胞浸润呈正相关。结论:NSCLC组织中的肿瘤相关N2中性粒细胞是释放NETs的主要细胞,高表达NETs的肿瘤相关N2中性粒细胞与免疫抑制性肿瘤微环境相关,这将影响NSCLC患者一线免疫治疗的疗效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
不同极化状态的肿瘤相关中性粒细胞释放的NETs对晚期NSCLC患者一线免疫治疗疗效的预后价值及其潜在机制。
核心机制
高表达NETs的肿瘤相关N2中性粒细胞可能通过促进免疫抑制性肿瘤微环境(减少CD8+ T细胞浸润、增加Treg细胞浸润)来影响免疫治疗疗效,但具体机制仍需进一步验证。
主要证据
基于115例晚期NSCLC患者肿瘤组织的多重免疫荧光和免疫组化分析,发现NETs与N2中性粒细胞数量正相关,N2+中性粒细胞高表达与较差的PFS和OS相关,且N2+中性粒细胞与CD8+ T细胞浸润负相关、与Treg细胞浸润正相关。
研究意义
研究提示肿瘤相关N2中性粒细胞及其释放的NETs可能作为预测免疫治疗疗效的潜在生物标志物,调节NETs表达可能增加肿瘤对免疫检查点抑制剂的敏感性,为优化免疫治疗策略提供参考。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者队列建立与临床病理特征收集

明确研究对象并确保组间可比性

回顾性收集2019年5月至2021年5月在南昌大学第一附属医院接受一线免疫治疗的115例晚期NSCLC患者的临床数据和治疗前组织样本。

2

多重免疫荧光染色评估TANs极化与NETs表达

量化肿瘤组织中N1、N2中性粒细胞数量及NETs表达水平

对FFPE样本进行多重免疫荧光染色,使用CD11b、CD206、MPO和citH3抗体,共定位定义中性粒细胞和NETs,并通过显微镜成像和病理学家评估。

3

免疫组化染色评估CD8+ T细胞和Treg细胞浸润

评估肿瘤微环境中免疫细胞浸润情况

使用CD8和Foxp3抗体对FFPE样本进行免疫组化染色,评估CD8+ T细胞和Treg细胞浸润密度。

4

疗效评估与生存分析

评估NETs和TANs极化状态与免疫治疗疗效及预后的关系

根据RECIST v1.1评估客观缓解率(ORR)和疾病控制率(DCR),并随访计算PFS和OS,进行Kaplan-Meier生存分析和Cox回归分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
CD11b抗体Abcamab133357
CD206抗体Abcamab64693
MPO抗体Abcamab208670
citH3抗体Novus BiologicalsNB100-57135
CD8抗体MaximRMA-0514
Foxp3抗体BiossBS-0269R
HRP偶联二抗Akoya Biosciences--
DAPI----
宽场显微镜Nikon Eclipse E100--
共聚焦显微镜Nikon Eclipse C1--
X-tile软件Yale University--
SPSS 24.0----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者队列
纳入标准:病理/细胞学确诊的晚期NSCLC,完成≥2周期ICI治疗,至少一个可测量病灶(RECIST v1.1);排除标准:文中未明确说明;治疗前组织样本
阅读提示:Materials and methods, Section 2.1 Study population
多重免疫荧光染色
抗体类型和稀释度(CD11b、CD206、MPO、citH3);染色步骤(一抗孵育1小时室温,HRP二抗,DAPI 20分钟);细胞定义(MPO+CD11b+为中性粒细胞,CD206区分N1/N2,DNA+MPO+citH3为NETs);评估方法(两名病理学家,×400 HPF,三视野平均值,X-tile确定截断值)
阅读提示:Materials and methods, Section 2.3 Multiplex immunofluorescence staining; Results Section 3.2
免疫组化染色
抗体(CD8 RMA-0514; Maxim, Foxp3 BS-0269R; Bioss);切片厚度4μm;抗原修复(微波100°C 20分钟);封闭(3% H2O2, 5% BSA);一抗孵育(4°C过夜);评估(两名病理学家,三视野平均值,X-tile确定截断值)
阅读提示:Materials and methods, Section 2.2 Immunohistochemical staining; Results Section 3.5
疗效评估与生存分析
RECIST v1.1标准评估ORR和DCR;PFS定义为治疗开始至进展或死亡;OS定义为首次ICI剂量至死亡或末次随访;统计方法(SPSS 24.0,Kaplan-Meier,log-rank,Cox回归)
阅读提示:Materials and methods, Section 2.4 Survival follow-up and Section 2.5 Statistical analysis; Results Section 3.4