患者队列建立与临床病理特征收集
明确研究对象并确保组间可比性
回顾性收集2019年5月至2021年5月在南昌大学第一附属医院接受一线免疫治疗的115例晚期NSCLC患者的临床数据和治疗前组织样本。
Prognostic value of tumour-associated neutrophils in different polarization status releasing neutrophil extracellular traps in the immunotherapy of advanced non-small cell lung cancer.
回顾性临床队列研究,结合多重免疫荧光、免疫组化、生存分析与多因素Cox回归,包含患者样本、功能验证(免疫细胞浸润相关性)和机制探讨。
晚期非小细胞肺癌患者肿瘤组织样本
115例接受一线免疫治疗的晚期NSCLC患者 多重免疫荧光染色评估TANs极化(MPO+CD11b+CD206-为N1,MPO+CD11b+CD206+为N2) NETs定义为MPO和citH3共染色 NETs、N1、N2、N1+、N2+的最佳截断值经X-tile软件确定 CD8+ T细胞和Treg细胞浸润通过免疫组化评估
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确研究对象并确保组间可比性
回顾性收集2019年5月至2021年5月在南昌大学第一附属医院接受一线免疫治疗的115例晚期NSCLC患者的临床数据和治疗前组织样本。
量化肿瘤组织中N1、N2中性粒细胞数量及NETs表达水平
对FFPE样本进行多重免疫荧光染色,使用CD11b、CD206、MPO和citH3抗体,共定位定义中性粒细胞和NETs,并通过显微镜成像和病理学家评估。
评估肿瘤微环境中免疫细胞浸润情况
使用CD8和Foxp3抗体对FFPE样本进行免疫组化染色,评估CD8+ T细胞和Treg细胞浸润密度。
评估NETs和TANs极化状态与免疫治疗疗效及预后的关系
根据RECIST v1.1评估客观缓解率(ORR)和疾病控制率(DCR),并随访计算PFS和OS,进行Kaplan-Meier生存分析和Cox回归分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者队列 | 纳入标准:病理/细胞学确诊的晚期NSCLC,完成≥2周期ICI治疗,至少一个可测量病灶(RECIST v1.1);排除标准:文中未明确说明;治疗前组织样本 阅读提示:Materials and methods, Section 2.1 Study population |
| 多重免疫荧光染色 | 抗体类型和稀释度(CD11b、CD206、MPO、citH3);染色步骤(一抗孵育1小时室温,HRP二抗,DAPI 20分钟);细胞定义(MPO+CD11b+为中性粒细胞,CD206区分N1/N2,DNA+MPO+citH3为NETs);评估方法(两名病理学家,×400 HPF,三视野平均值,X-tile确定截断值) 阅读提示:Materials and methods, Section 2.3 Multiplex immunofluorescence staining; Results Section 3.2 |
| 免疫组化染色 | 抗体(CD8 RMA-0514; Maxim, Foxp3 BS-0269R; Bioss);切片厚度4μm;抗原修复(微波100°C 20分钟);封闭(3% H2O2, 5% BSA);一抗孵育(4°C过夜);评估(两名病理学家,三视野平均值,X-tile确定截断值) 阅读提示:Materials and methods, Section 2.2 Immunohistochemical staining; Results Section 3.5 |
| 疗效评估与生存分析 | RECIST v1.1标准评估ORR和DCR;PFS定义为治疗开始至进展或死亡;OS定义为首次ICI剂量至死亡或末次随访;统计方法(SPSS 24.0,Kaplan-Meier,log-rank,Cox回归) 阅读提示:Materials and methods, Section 2.4 Survival follow-up and Section 2.5 Statistical analysis; Results Section 3.4 |