转录组学和蛋白质组学关联分析揭示隐睾牦牛附睾精子成熟障碍的分子机制

Transcriptomics and proteomics association analysis demystify the molecular mechanisms underlying epididymal sperm maturation disorders in yaks with cryptorchidism.

作者信息Dapeng Yang, Ligang Yuan, Yumei Qi, Haijun Li, Qinghai Ren, Yubao Li
PMID41217791
发布时间2025-01-04
DOI10.1093/jas/skaf397

实验完整度

高

包含组织病理学、透射电镜、转录组学、蛋白质组学、qRT-PCR、Western blot和免疫荧光等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

隐睾牦牛附睾组织 正常牦牛附睾组织(对照)

重点核对

样本来源:青海大通牧区,3-4岁成年雄性牦牛,隐睾组10头(均为单侧隐睾),对照组10头 样本处理:附睾组织分为3份,分别用于4%多聚甲醛固定、2.5%戊二醛固定和液氮速冻;4份用于RNA和蛋白质提取,3份用于测序 转录组筛选标准:|log2FC|>1,FDR校正P<0.05 蛋白质组筛选标准:|log2FoldChange|>1.2,FDR校正P<0.05 qRT-PCR验证:至少三次重复,以β-actin为内参

摘要

隐睾是雄性哺乳动物中常见的生殖系统疾病。牦牛作为适应高海拔的独特物种,其隐睾发生率高于低海拔地区的牛,严重制约了其繁殖效率。本研究通过组织学、转录组学和蛋白质组学相结合的方法,对隐睾牦牛附睾组织的病理特征和分子调控机制进行了全面分析。病理分析显示,隐睾牦牛附睾壁明显萎缩,管腔狭窄,精子数量减少,并伴有弹性纤维和胶原纤维异常沉积、网状纤维降解等结构重塑。此外,电镜观察显示隐睾牦牛附睾细胞核膜折叠,染色质凝集、边缘化,线粒体肿胀。转录组学筛选出287个差异表达基因(|log2FC|>1, FDR-adjusted P < 0.05)。这些DEGs主要富集于细胞外基质重塑、信号受体结合和类固醇合成等GO条目。此外,KEGG分析显示,Wnt、PI3K-Akt、紧密连接和钙离子信号通路在隐睾附睾中显著下调。蛋白质组学鉴定出114个差异蛋白,其中Wnt通路关键蛋白(如SYNPO和LMCD1)和紧密连接蛋白(TJP2和ZO-1)表达下调,溶酶体功能相关蛋白显著激活。多组学关联分析显示,只有少数基因在mRNA和蛋白质水平上表达一致,表明翻译后修饰在隐睾病理中发挥重要作用。qRT-PCR和Western blot(WB)实验进一步证实,差异基因与蛋白的表达趋势和亚细胞定位高度一致。本研究不仅为高海拔地区隐睾症的治疗提供了潜在靶点,也为理解附睾功能调控和男性不育机制积累了重要数据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
隐睾牦牛附睾组织存在哪些病理变化及其分子调控机制?
核心机制
Wnt/紧密连接通路失衡与溶酶体过度激活的协同作用导致附睾精子成熟障碍。
主要证据
组织学显示附睾壁萎缩、管腔狭窄、精子减少,弹性/胶原纤维异常沉积,网状纤维降解;电镜显示核膜皱褶、染色质边缘化、线粒体肿胀;转录组和蛋白质组分别鉴定出287个DEGs和114个DEPs,Wnt通路蛋白(SYNPO、LMCD1)和紧密连接蛋白(TJP2、ZO-1)下调,溶酶体相关蛋白上调;qRT-PCR和WB验证了表达趋势。
研究意义
填补隐睾动物附睾研究的空白,为高海拔地区隐睾症治疗提供潜在靶点,并为理解附睾功能调控和男性不育机制提供数据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

病理组织学分析

观察隐睾牦牛附睾的组织病理变化和超微结构异常。

通过H&E染色、特殊染色(弹性纤维、胶原纤维、网状纤维)和透射电镜观察附睾组织的结构变化。

2

转录组学分析

筛选隐睾牦牛附睾中的差异表达基因并富集相关通路。

提取总RNA,进行Illumina HiSeq双端测序,通过DESeq2筛选DEGs,并进行GO、KEGG和GSEA分析。

3

蛋白质组学分析

鉴定隐睾牦牛附睾中的差异表达蛋白并分析其功能。

使用TMT标记定量技术进行LC-MS/MS分析,筛选DEPs并进行GO和KEGG分析。

4

多组学关联分析

评估转录组和蛋白质组数据的一致性,揭示翻译后修饰的作用。

对DEGs和DEPs进行Venn图分析,并比较富集通路的一致性。

5

qRT-PCR验证

验证RNA-seq结果的可靠性。

随机选取10个DEGs进行qRT-PCR检测。

6

Western blot验证

验证蛋白质组学结果的可靠性。

检测6个DEPs的蛋白表达水平。

7

免疫荧光定位

观察关键通路蛋白在附睾组织中的亚细胞定位和表达水平。

对Wnt通路和紧密连接通路蛋白进行免疫荧光染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
弹性纤维染色试剂盒SolarbioG1597
胶原纤维染色试剂盒SolarbioG1473
网状纤维染色试剂盒SolarbioG3535
JEM-100CX透射电子显微镜NEC--
Trizol试剂SolarbioR1100
NanoDrop分光光度计Thermo Fisher--
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
超微量核酸蛋白定量仪上海奥然科贸有限公司--
反转录试剂盒TransGen BiotechAT311-02
Light Cycler 480实时荧光定量PCR仪Roche--
蛋白酶抑制剂----
裂解液SolarbioR0010
BCA蛋白定量试剂盒SolarbioPC0020
PVDF膜SolarbioYA1701
ECL化学发光试剂SolarbioPE0010
山羊抗兔IgG (H+L) Alexa Fluor 488Abcamab150077
山羊抗兔IgG (H+L) Alexa Fluor 647Abcamab150115
DAPIAbcamab104139

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本采集
物种:牦牛;年龄:3-4岁;性别:雄性;数量:隐睾组10头(单侧隐睾),对照组10头;采集地点:青海省大通牧区(海拔约3100m);采集时间:繁殖季节(8-9月)
阅读提示:见Materials and Methods: Experimental animals and sample collection
组织学分析
固定液:4%多聚甲醛和2.5%戊二醛;染色试剂盒型号;电镜型号
阅读提示:见Materials and Methods: Histological sample preparation and observation
转录组测序
RNA提取试剂:Trizol;测序平台:Illumina HiSeq;DEG筛选标准:|Log2FC|>1,FDR<0.05
阅读提示:见Materials and Methods: RNA extraction and transcriptomics
蛋白质组学
TMT标记定量;质谱仪:Orbitrap Fusion Lumos;DEP筛选标准:|log2FoldChange|>1.2,FDR<0.05
阅读提示:见Materials and Methods: Liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS)
qRT-PCR验证
内参基因:β-actin;反应条件:95°C 30s,45个循环(95°C 5s,50-60°C 15s,72°C 10s);至少三次重复
阅读提示:见Materials and Methods: RT-qPCR validation
Western blot验证
一抗信息:见表2;二抗稀释比:1:3000;检测蛋白:ME1, PLOD3, RBMY, TMEM134, PUS7L, SYNPO
阅读提示:见Materials and Methods: Verification using WB
免疫荧光
一抗信息:见表2;二抗:Alexa Fluor 488和647 (1:1000);DAPI染色
阅读提示:见Materials and Methods: Immunofluorescence