临床样本分析
评估缺血性卒中患者FKBP5表达水平及NET形成标志物,并分析其与疾病严重程度和结局的相关性。
收集40名缺血性卒中患者和40名健康供者的外周血,以及10名脑梗死患者和5名车祸死亡者的脑组织,检测FKBP5、H3cit、MPO-DNA和dsDNA水平,并进行Spearman相关性分析。
FKBP5-CCL5 interaction promotes neuroinflammation and neuronal apoptosis in ischemic stroke by regulating the MAPK pathway and enhancing NET formation.
包含临床样本分析、tMCAO动物模型、原代神经元体外实验及BV2细胞转染等功能验证,并涉及机制研究(MAPK通路),属于多层级证据。
缺血性卒中患者外周血及脑组织样本 tMCAO小鼠模型(C57BL/6小鼠) 原代神经元(小鼠脑组织) BV2小胶质细胞系
缺血性卒中患者与健康供者的纳入排除标准 tMCAO模型:闭塞时间60分钟,CI-amidine给药剂量(50 mg/kg,腹腔注射,每日一次,连续3天)及分组(n=15/组) BV2细胞转染分组:Oe-NC, Oe-FKBP5, si-NC, si-FKBP5 MAPK通路抑制剂AZD6244的使用浓度(10 μM) FKBP5与CCL5的相互作用验证(Co-IP实验)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估缺血性卒中患者FKBP5表达水平及NET形成标志物,并分析其与疾病严重程度和结局的相关性。
收集40名缺血性卒中患者和40名健康供者的外周血,以及10名脑梗死患者和5名车祸死亡者的脑组织,检测FKBP5、H3cit、MPO-DNA和dsDNA水平,并进行Spearman相关性分析。
验证NET在缺血性卒中脑损伤中的作用,并评估NET抑制剂CI-amidine的治疗效果。
建立tMCAO小鼠模型,随机分为sham组、模型组和CI-amidine治疗组,术后给予CI-amidine(50 mg/kg,腹腔注射,连续3天),通过TTC染色、脑含水量测定、HE染色、免疫组化和免疫荧光评估脑损伤和NET形成。
评估NETs对神经元凋亡的影响。
从小鼠脑组织中分离原代神经元,使用流式细胞术和TUNEL染色检测不同处理组的神经元凋亡率。
探究FKBP5对小胶质细胞极化和NET形成的影响。
使用FKBP5过表达和敲低载体转染BV2小胶质细胞,通过ELISA检测M1/M2标志物,并与中性粒细胞共培养检测NET标志物。
验证FKBP5与CCL5之间的物理和功能性相互作用。
通过分子模拟对接、免疫荧光共定位、Co-IP实验以及检测FKBP5对CCL5表达的调控,验证两者的相互作用。
验证FKBP5-CCL5通过MAPK通路介导小胶质细胞极化和NET形成的机制。
Western blot检测FKBP5对MAPK通路蛋白(p-p38, p-JNK, p-ERK)的影响,并通过si-CCL5或MAPK抑制剂AZD6244处理,检测下游炎症因子和NET标志物的变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| ELISA(H3cit检测) | 瓜氨酸化组蛋白H3 ELISA试剂盒 | mlbio | YJ701102 |
| ELISA(MPO-DNA检测) | MPO-DNA ELISA试剂盒 | mlbio | YJ360097 |
| 血浆DNA定量 | Quant-iT PicoGreen dsDNA检测试剂盒 | Yeasen | 12641ES01 |
| 动物实验(NET抑制) | CI-amidine | MCE | 1373232-26-8 |
| 免疫组化 | H3cit抗体 | Bioss | bsm-33042 |
| 免疫组化/免疫荧光 | MPO抗体 | Abcam | ab208670 |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Sigma Aldrich | -- |
| DAPI | -- | -- | |
| 流式细胞术 | Annexin V-FITC和碘化丙啶试剂 | Beyotime | -- |
| 流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| TUNEL染色 | TUNEL试剂盒 | Beyotime | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000 | Invitrogen | -- |
| 原代神经元培养 | Neurobasal培养基 | -- | -- |
| B-27添加剂 | -- | -- | |
| 多聚-D-赖氨酸 | -- | -- | |
| 小胶质细胞分选 | CD11b磁珠(超纯级) | Miltenyi Biotec | -- |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| PrimeScript RT试剂盒 | Takara Bio | -- | |
| SYBR Green PCR预混液 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| FKBP5抗体 | Proteintech | 14155-1-AP | |
| CCL5抗体 | Affinity | AF5151 | |
| ERK抗体 | Affinity | BF8004 | |
| p-ERK抗体 | Affinity | AF1015 | |
| P38抗体 | Proteintech | 14064-1-AP | |
| p-P38抗体 | Proteintech | 28796-1-AP | |
| p-JNK抗体 | Proteintech | 60666-1-Ig | |
| JNK抗体 | Proteintech | 66210-1-IG | |
| CD206抗体 | Proteintech | 60143-1-IG | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| ELISA(细胞因子检测) | IL-1β ELISA试剂盒 | Neobioscience | ml098416 |
| IL-10 ELISA试剂盒 | Neobioscience | mIC50274-1 | |
| TNFα ELISA试剂盒 | Neobioscience | mIC50536-1 | |
| iNOS ELISA试剂盒 | Neobioscience | mlswE3080 | |
| 中性粒细胞分离 | Percoll分离液 | GE Healthcare | -- |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 信号通路抑制 | AZD6244 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本收集 | 患者纳入标准(年龄、症状发作时间、NIHSS评分)、排除标准(出血、大范围梗死等)、样本类型(外周血、脑组织)及处理方式(低转速离心、-80℃保存) 阅读提示:Methods部分:Ischemic stroke patients and samples |
| tMCAO动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6,雄性,6-8周龄)、线栓规格(Doccol Corp.)、闭塞时间(60分钟)、麻醉方案(5%异氟烷诱导,2%维持)、术后镇痛(丁丙诺啡) 阅读提示:Methods部分:tMCAO model |
| CI-amidine干预 | 给药剂量(50 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(术后1小时首次给药,每日一次)、疗程(连续3天) 阅读提示:Methods部分:Animal experimental design |
| BV2细胞转染 | 细胞系(BV2)、培养基(DMEM+10%FBS+1%青霉素-链霉素)、转染试剂(Lipofectamine 2000)、分组(Oe-NC, Oe-FKBP5, si-NC, si-FKBP5) 阅读提示:Methods部分:Cell culture and transfection |
| MAPK通路抑制剂处理 | AZD6244浓度(10 μM) 阅读提示:Results部分:The effect of FKBP5-CCL5 on BV2 cell polarization and neutrophil NETs formation via the MAPK signaling pathway |
| 原代神经元凋亡检测 | 细胞来源(6-8周龄C57BL/6小鼠脑组织)、培养条件(Neurobasal培养基+B-27)、凋亡检测方法(流式细胞术、TUNEL染色) 阅读提示:Methods部分:Neurons isolation, Flow cytometry analysis, TUNEL staining |
| FKBP5与CCL5相互作用验证 | Co-IP抗体(FKBP5或CCL5抗体)、免疫沉淀孵育条件(4℃, 24小时)、Dynabeads处理 阅读提示:Methods部分:Co-immunoprecipitation |