建立肌肉HO模型并评估去神经的影响
建立小鼠肌肉HO模型,模拟周围神经损伤,评估去神经对HO进展的影响。
通过CTX和BMP-2诱导腓肠肌HO,部分小鼠切断坐骨神经,4周后通过微CT、H&E染色和RT-qPCR检测HO程度和成骨基因表达。
Denervation‑induced NRG3 aggravates muscle heterotopic ossification via the ErbB4/PI3K/Akt signaling pathway.
采用小鼠模型、细胞实验、RNA-seq、Western blot和组织芯片等多层级验证,包含体内外功能验证和机制研究。
小鼠腓肠肌HO模型(CTX/BMP-2诱导) 坐骨神经切断去神经模型 原代FAPs细胞
CTX剂量:50 µl 10 µmol/l BMP-2剂量:每盘0.5 µg重组BMP-2 dacomitinib剂量:10 mg/kg(体内),1 µM(体外) 成骨诱导时间:14天 组别设置:CTX组、CTX-DeN组、CTX-DeN+dacomitinib组
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立小鼠肌肉HO模型,模拟周围神经损伤,评估去神经对HO进展的影响。
通过CTX和BMP-2诱导腓肠肌HO,部分小鼠切断坐骨神经,4周后通过微CT、H&E染色和RT-qPCR检测HO程度和成骨基因表达。
寻找去神经后肌肉组织中变化的细胞因子,并预测NRG3的受体。
收集肌肉组织,通过肌肉组织芯片检测15种细胞因子水平,利用STRING数据库构建NRG3蛋白互作网络,RT-qPCR检测ErbB4 mRNA表达。
分析去神经后肌肉组织基因表达变化,验证FAPs成骨分化能力。
进行RNA-seq,分析差异表达基因和GO富集;分离FAPs,成骨诱导14天,进行茜素红S染色。
确定NRG3是否通过ErbB4/PI3K/Akt通路调节FAPs成骨分化。
体外培养FAPs,分为四组处理,茜素红S染色、RT-qPCR检测RUNX2、Western blot检测PI3K/Akt通路蛋白。
验证抑制PI3K/Akt通路能否缓解去神经加重的肌肉HO。
在HO模型基础上给予dacomitinib,微CT检测BMD。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 心脏毒素 | MilliporeSigma | C9759 |
| 重组骨形态发生蛋白-2 | GenScript | Z02913 | |
| 明胶海绵 | JinLing Pharmaceutical | 20153141505 | |
| 药物处理 | 达克替尼 | -- | -- |
| 细胞分离 | II型胶原酶 | Worthington Biochemical Corporation | LS004176 |
| 100 µm细胞滤网 | BD Biosciences | 431752 | |
| 40 µm细胞滤网 | BD Biosciences | 431750 | |
| 红细胞裂解液 | BD Bioscience | C3702 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | SH30243.01B |
| 胎牛血清 | HyClone | SH30406.05 | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Invitrogen | PHG0021 | |
| Matrigel包被培养板 | Corning | CLS430639 | |
| 成骨诱导培养基 | Cyagen Biosciences | HUXMX-90021 | |
| 成骨诱导 | 重组NRG3蛋白 | Abcam | ab276716 |
| 成像 | 显微CT (Skyscan 1276) | Bruker | -- |
| 测序 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| Optimal Dual-mode mRNA文库制备试剂盒 | BGI | LR00R96 | |
| MGISEQ-2000RS高通量测序套装 | MGI | 1000006138 | |
| RT-qPCR | RevertAid第一链cDNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K1622 |
| SYBR试剂盒 | Takara Bio | RR4420L | |
| ABI 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013P |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0010 | |
| SDS-PAGE凝胶 | Bio-Rad Laboratories | 1620177 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 牛血清白蛋白 | Biosharp | BS114 | |
| 抗PI3K抗体 | BIOSS | bs-5570R | |
| 抗磷酸化PI3K抗体 | BIOSS | bs-5538P | |
| 抗AKT抗体 | Proteintech | 10176-2-AP | |
| 抗磷酸化AKT抗体 | Proteintech | 66444-1-Ig | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Proteintech | SA00001-2 | |
| ECL化学发光试剂盒 | Millipore | WBULS0500 | |
| Bio-Rad ChemiDoc MP成像系统 | Bio-Rad Laboratories | 170-8280 | |
| 组织芯片 | 肌肉组织芯片 (AAM-BLG-308) | Raybiotech | AAM-BLG-308 |
| Agilent SureScan Dx微阵列扫描仪 | Agilent | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、年龄、性别、体重;CTX剂量、BMP-2剂量、手术方式。 阅读提示:Materials and methods: Study design, Surgical procedure |
| 细胞分离与成骨分化 | FAPs分选标志物、培养条件、成骨诱导时间。 阅读提示:Materials and methods: Cell isolation and fluorescence-activated cell sorting, Cell culture |
| 药物处理 | dacomitinib的剂量、给药方式、时间点。 阅读提示:Materials and methods: Study design, Cell culture; Figure 4 legend |
| 检测方法 | 微CT参数、BMD测量;RT-qPCR引物;Western blot抗体浓度。 阅读提示:Materials and methods: Micro-CT, RT-qPCR, Western blotting |