建立EHS大鼠模型并验证横纹肌溶解
建立运动性热射病大鼠模型,并确认其导致横纹肌溶解。
将雄性SD大鼠在高温高湿环境中进行跑步运动,直至核心体温达43°C,随后在6小时收集血清和腓肠肌样本,检测CK、MB水平,进行H&E染色和电镜观察。
Oncosis is the predominant type of cell death in rhabdomyolysis following exertional heat stroke.
包含体内大鼠模型(EHS模型)和体外HSKMC细胞模型两个独立证据层级,并进行了病理学、超微结构、分子表达、功能验证(JC-1、ATP、ROS)及流式细胞术检测。
SD大鼠运动性热射病横纹肌溶解模型 HSKMC人骨骼肌细胞热应激模型
大鼠EHS模型:环境温度39.5±0.5°C,相对湿度50-60%,跑步速度15 m/min,直至核心体温≥43°C,每组6只 HSKMC细胞热应激模型:43°C水浴热休克4小时,随后37°C、5% CO2恢复24小时 关键检测指标:porimin+/PI+双阳性细胞比例(流式)、线粒体膜电位(JC-1)、ATP水平、ROS水平 主要分子标志物:porimin、CytC、Bax、Bcl-2、caspase-1、caspase-3蛋白及mRNA表达 统计学分析:两组比较采用非配对双尾t检验,显著性水平P<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立运动性热射病大鼠模型,并确认其导致横纹肌溶解。
将雄性SD大鼠在高温高湿环境中进行跑步运动,直至核心体温达43°C,随后在6小时收集血清和腓肠肌样本,检测CK、MB水平,进行H&E染色和电镜观察。
建立HSKMC细胞热应激模型,观察细胞死亡形态。
HSKMC细胞在43°C水浴中热休克4小时,随后恢复24小时,通过光学显微镜和电镜观察细胞形态,CCK8检测细胞活力。
比较瘤亡与凋亡在ehsRM细胞死亡中的参与程度。
通过Western blot、RT-qPCR检测porimin、caspase-3、Bax、Bcl-2等表达;流式细胞术检测porimin+/PI+和Annexin V+/PI+双阳性细胞比例。
验证线粒体损伤和ATP耗竭在瘤亡中的作用。
通过JC-1染色检测线粒体膜电位,使用ATP检测试剂盒测定ATP水平,电镜观察线粒体超微结构。
评估氧化应激在瘤亡中的作用。
使用DCFH-DA荧光探针检测大鼠腓肠肌和HSKMC细胞中ROS水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | SD大鼠 | SPF Biotechnology Co., LTD. | -- |
| 跑步机 | -- | -- | |
| 血清生化检测 | 全自动生化分析仪XR220 Plus | -- | XR220 Plus |
| 肌酸激酶ELISA试剂盒 | Jianglaibio | -- | |
| 血清分离 | 离心机3-30K | Sigma | 3-30K |
| 酶标仪 | 酶标仪Nanodrop lite | Thermo | Nanodrop lite |
| 组织病理 | 显微镜Leica DM3000 | Leica | DM3000 |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 一抗porimin (bs-7674R) | Bioss | bs-7674R | |
| 一抗细胞色素C (ab133504) | Abcam | ab133504 | |
| 一抗caspase-3 (bs-0081) | Bioss | bs-0081 | |
| 一抗caspase-1-p10 (22915-1-AP) | Wuhan Sanying | 22915-1-AP | |
| 一抗NLRP3 (bs-6655R) | Bioss | bs-6655R | |
| 一抗Bax (50599-2-Ig) | Wuhan Sanying | 50599-2-Ig | |
| 一抗Bcl-2 (26593-1-AP) | Wuhan Sanying | 26593-1-AP | |
| 一抗β-actin (MD6553) | MDL | MD6553 | |
| 二抗 (MD91256) | MDL | MD91256 | |
| 凝胶成像系统GelDoc-It310 | UVP | GelDoc-It310 | |
| 图像分析 | Image J软件 | -- | -- |
| Image-Pro Plus软件 | CLINX | ChemiScope6100 | |
| 透射电镜 | JEM-1400Flash透射电镜 | Olympus | -- |
| JC-1荧光染色 | JC-1线粒体膜电位检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Invitrogen | MDL91201 |
| RT-qPCR | Superscript III逆转录酶 | ABI-invitrogen | 11752050 |
| 实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | StepOne Software | |
| 流式细胞术 | porimin-FITC/PI检测试剂盒 | Bioss | -- |
| Annexin V-FITC/PI检测试剂盒 | Keygen Biotech | -- | |
| FACSCalibur流式细胞仪 | T etrazhengbai Biological | FXP018 | |
| 统计分析 | GraphPad Prism软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 大鼠品系、性别、周龄、体重;环境温度、湿度;运动方案(速度、时间);EHS判定标准(核心体温、力竭表现);组别设置及样本量 阅读提示:见Materials and methods 2.1和2.2节 |
| 细胞模型建立 | 细胞系名称;热应激温度、时间和恢复时间;对照组条件 阅读提示:见Materials and methods 2.3节 |
| 分子表达检测 | 抗体信息(品牌、货号);蛋白上样量;一抗、二抗浓度及孵育时间;PCR引物序列;内参基因 阅读提示:见Materials and methods 2.7、2.8和2.11节 |
| 线粒体功能检测 | JC-1染色步骤;ATP检测试剂盒及步骤;样本处理方式 阅读提示:见Materials and methods 2.10节 |
| 流式细胞术 | 检测试剂盒信息;染色步骤;双阳性细胞门控策略 阅读提示:见Materials and methods 2.12节 |
| 统计分析 | 统计方法;软件版本;显著性水平 阅读提示:见Materials and methods 2.13节 |