靶向热休克转录因子4增强卡博替尼和免疫检查点抑制剂在肾细胞癌中的疗效

Targeting Heat Shock Transcription Factor 4 Enhances the Efficacy of Cabozantinib and Immune Checkpoint Inhibitors in Renal Cell Carcinoma.

作者信息Saeki Saito, Hirofumi Yoshino, Seiya Yokoyama, Mitsuhiko Tominaga, Gang Li, Junya Arima, Ichiro Kawahara, Ikumi Fukuda, Akihiko Mitsuke, Takashi Sakaguchi, Satoru Inoguchi, Ryosuke Matsushita, Yasutoshi Yamada, Shuichi Tatarano, Akihide Tanimoto, Hideki Enokida
PMID40004241
发布时间2025-02-19
DOI10.3390/ijms26041776

实验完整度

包含TCGA数据分析、体外细胞功能实验(增殖、迁移、侵袭、球体形成、凋亡)、RNA测序、耐药细胞模型、体内异种移植模型及免疫组化验证。

主要模型

A498人肾细胞癌细胞系 Caki2人肾细胞癌细胞系 耐舒尼替尼的A498(SUR-A498)细胞 小鼠肾细胞癌Renca细胞移植瘤模型

重点核对

HSF4表达水平:通过TCGA数据分析比较肿瘤与正常组织,以及细胞系中的表达水平。 HSF4敲低验证:使用siRNA(50 nM)和shRNA(TRCN0000086281)敲低HSF4,通过RT-qPCR和Western blot确认敲低效率。 MET表达变化:在HSF4敲低和耐舒尼替尼细胞中检测MET的表达水平。 药物浓度:卡博替尼处理浓度基于SUR-A498的IC50确定。 体内实验分组:每组3只BALB/c小鼠,注射Renca细胞后,给予PBS或ICI(5 mg/kg)腹腔注射,每周两次,持续两周。

摘要

近年来,免疫检查点抑制剂(ICIs)和酪氨酸激酶抑制剂(TKI)卡博替尼已被用于治疗肾细胞癌(RCC);这些药物的联合已成为RCC的标准治疗。TKI通常靶向血管内皮生长因子。然而,卡博替尼的特点是靶向MET。因此,卡博替尼可用于TKI耐药的RCC的后期治疗。根据癌症基因组图谱(TCGA)的数据,热休克转录因子4(HSF4)在RCC组织中的表达高于正常肾组织。HSF4与结直肠癌中的MET启动子结合,增强MET表达并促进肿瘤进展。然而,HSF4在RCC中的功能作用尚不清楚。我们进行了HSF4的功能缺失实验,结果表明,在RCC细胞中敲低HSF4显著降低了细胞功能。此外,MET表达在HSF4敲低细胞中降低,但在耐舒尼替尼的RCC细胞中升高。卡博替尼和HSF4敲低的组合比单独使用任一疗法更能降低耐舒尼替尼细胞的增殖。此外,HSF4敲低联合ICI在体内显示出对肿瘤生长的协同抑制。总的来说,我们的HSF4敲低策略可能增强现有疗法(如卡博替尼和ICIs)的疗效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
筛选肾细胞癌中的新治疗靶基因,并探讨其与现有治疗(卡博替尼和免疫检查点抑制剂)的联合效应。
核心机制
HSF4通过调节MET表达促进肾细胞癌的增殖、迁移和侵袭,且抑制HSF4可增强卡博替尼和ICI的抗肿瘤作用,可能与MET抑制导致的免疫抑制环境改善有关。
主要证据
通过TCGA数据挖掘发现HSF4与不良预后相关;体外敲低HSF4抑制细胞增殖、迁移、侵袭并诱导凋亡,MET表达下降;在耐舒尼替尼细胞中,HSF4敲低联合卡博替尼协同抑制增殖;体内实验中,HSF4敲低联合ICI协同抑制肿瘤生长。
研究意义
本研究首次揭示HSF4在肾细胞癌中的作用,提出HSF4敲低联合卡博替尼和ICIs可能是一种有前景的治疗策略,为开发HSF4抑制剂和RNAi治疗提供了基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

筛选靶基因

利用TCGA数据分析肾透明细胞癌中高表达且与不良预后相关的基因,寻找新治疗靶点。

分析TCGA KIRC队列,识别高表达及与总生存相关的基因,筛选出未在肾脏中报道过的HSF4。

2

验证HSF4在肾癌细胞系中的表达

确认HSF4在人肾癌细胞系中的表达水平是否高于正常肾组织。

通过RT-qPCR检测正常肾组织总RNA和786-O、A498、Caki1、Caki2细胞系中HSF4的mRNA表达。

3

HSF4敲低的功能验证

评估敲低HSF4对肾癌细胞增殖、迁移、侵袭和肿瘤形成的影响。

使用siRNA敲低HSF4后,进行XTT实验、伤口愈合实验、Matrigel侵袭实验和肿瘤球形成实验。

4

RNA测序和凋亡检测

分析HSF4敲低对基因表达和凋亡通路的影响。

从HSF4敲低和亲本细胞提取总RNA进行RNA测序,使用BioPlanet数据集进行基因集分析;用流式细胞术检测凋亡细胞比例,并用Western blot检测cleaved caspase 3表达。

5

HSF4-MET通路验证

验证HSF4是否调节MET表达,并评估HSF4敲低联合卡博替尼在耐舒尼替尼细胞中的作用。

通过Western blot检测HSF4敲低细胞和耐舒尼替尼细胞中MET的表达;在耐舒尼替尼细胞中,单独或联合HSF4敲低和卡博替尼处理,检测细胞增殖和MET表达。

6

体内实验验证

评估HSF4敲低联合ICI在体内对肿瘤生长的抑制作用。

用shRNA敲低Renca细胞中的HSF4,建立小鼠异种移植模型,分为四组:亲本细胞+PBS、亲本细胞+ICI、HSF4敲低+PBS、HSF4敲低+ICI,比较肿瘤体积和Ki67表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基----
胎牛血清----
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher Scientific--
OptiMEM培养基Thermo Fisher Scientific--
Silencer siRNA(检测ID:45985)Thermo Fisher Scientific45985
Stealth siRNA(检测ID:HSS105061)Thermo Fisher ScientificHSS105061
Stealth siRNA(检测ID:HSS105061)Thermo Fisher ScientificHSS105061
siRNA阴性对照(D-001810-10)DharmaconD-001810-10
shRNA质粒(TRCN0000086281)Sigma-AldrichTRCN0000086281
NucleoSpin质粒DNA纯化试剂盒MACHEREY-NAGEL--
psPAX2包装质粒Polysciences--
pMD2.G包膜质粒Polysciences--
PEI(聚乙烯亚胺Max)Polysciences--
嘌呤霉素----
SYBR Green定量PCR----
NuPAGE 4–12% Bis-Tris凝胶Thermo Fisher Scientific--
聚偏二氟乙烯膜----
Western blot转印系统Invitrogen--
抗HSF4抗体(货号18797-1-AP)Proteintech18797-1-AP
抗cleaved caspase 3抗体(货号ab2302)Abcamab2302
抗MET抗体(货号8198)Cell Signaling Technology8198
抗β-肌动蛋白抗体(货号bs-0061R)Biossbs-0061R
过氧化物酶偶联的抗兔IgG(货号7074S)Cell Signaling Technology7074S
XTT试剂盒Roche Diagnostics--
CellTiter-Glo 3D细胞活力检测试剂盒Promega--
TriStar LB941仪器Berthold Technologies--
Matrigel膜滤器BD Biosciences--
Cell-able 96孔板TOYO GOSEI--
ISOGEN RNA提取试剂Nippon Gene--
NovaSeq 6000测序平台Illumina--
FITC-Annexin V凋亡检测试剂盒BD Biosciences--
CytoFLEX分析仪Beckman Coulter--
卡博替尼Chem Scene--
二甲基亚砜----
CellTiter-Glo 2D试剂Promega--
InVivoMab抗小鼠PD-1抗体(5 mg/kg)Bio X Cell--
BALB/c小鼠CLEA Japan--
UltraVision检测系统Thermo Fisher Scientific--
抗Ki67抗体(货号12202)Cell Signaling Technology12202
生物素化山羊抗兔IgG抗体(H+L)(货号BA-1000)Vector LaboratoriesBA-1000

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系:786-O、A498、Caki1、Caki2、Renca;SUR-A498(耐舒尼替尼)。培养条件:RPMI 1640培养基添加10%胎牛血清,37°C和5% CO2。
阅读提示:见Materials and Methods 4.1
基因敲低
siRNA序列(Silencer 45985和Stealth HSS105061)和浓度(50 nM),shRNA序列(TRCN0000086281);转染试剂Lipofectamine RNAiMAX;shRNA病毒包装使用psPAX2、pMD2.G和PEI;筛选使用0.5 μg/mL嘌呤霉素。
阅读提示:见Materials and Methods 4.3
功能实验
XTT实验:细胞密度1.0×10^3 cells/well,96小时后加XTT试剂,孵育1.5小时后测450 nm;伤口愈合实验:细胞密度1×10^5 cells/well,刮伤后0h和18h测量;侵袭实验:使用8 μm孔径的Matrigel膜,24小时计数;球体形成实验:细胞密度3×10^4 cells/well,96小时后用CellTiter-Glo 3D检测。
阅读提示:见Materials and Methods 4.6
RNA测序
转染siRNA(si-Ctr 和 si-HSF4-1/2)后72小时提取RNA;RNA测序由Riken Genesis执行。
阅读提示:见Materials and Methods 4.7
凋亡检测
转染siRNA后72小时收集细胞,使用FITC-Annexin V和PI双染,流式细胞仪分析。
阅读提示:见Materials and Methods 4.8
药物处理
SUR-A498细胞中卡博替尼的IC50需用IC50计算器确定;处理时间96小时。
阅读提示:见Materials and Methods 4.9
体内实验
小鼠品系:BALB/c,6-8周龄;每组3只;每组注射亲本或HSF4敲低Renca细胞(皮下),之后腹腔注射PBS或ICI(5 mg/kg,每周两次),持续2周。
阅读提示:见Materials and Methods 4.10
统计分析
两组间比较用Mann-Whitney U检验,多组间比较用Bonferroni/Dunn方法。
阅读提示:见Materials and Methods 4.12