基于失巢凋亡相关基因的预后模型预测胃肠道癌症的预后及免疫治疗反应

An anoikis-related signature predicts prognosis and immunotherapy response in gastrointestinal cancers.

作者信息Ruyi Liu, Yuchen Liu, Weicheng Huang, Pengxiang Chen, Yufeng Cheng
PMID39981252
发布时间2025-02-06
DOI10.3389/fimmu.2025.1477913

实验完整度

涵盖生物信息学分析(聚类、预后模型、免疫浸润)及体外功能验证(细胞增殖、迁移、凋亡),但缺乏动物体内实验,机制验证不深入。

主要模型

食管癌细胞系KYSE-150 胃癌细胞系HGC-27 结直肠癌细胞系Caco-2 TCGA/GEO胃肠道癌症患者队列

重点核对

S100A11敲低和TLR3过表达后,细胞悬浮培养24小时促进凋亡(caspase-3/7活性、PARP剪切、Bax/Bcl-2比例) 细胞增殖检测:CCK-8实验,细胞接种密度3×10^3细胞/孔,检测24、48、72、96小时 细胞迁移实验:Transwell小室,细胞接种密度1×10^5细胞/孔,迁移时间文中未明确说明 克隆形成实验:1000细胞/孔接种6孔板,培养10天 Anoscore作为独立预后因素(HR 1.45, 95% CI 1.35–1.56)

摘要

背景:胃肠道癌症具有高发病率和死亡率。失巢凋亡是一种特殊的细胞凋亡类型,失巢凋亡抵抗已被报道与肿瘤恶性程度相关。我们旨在探索失巢凋亡相关基因在胃肠道癌症预后中的作用。方法:我们从癌症基因组图谱和基因表达汇编数据库中提取了食管癌、胃癌、结肠癌和直肠癌患者的RNA测序和临床数据,并从GeneCards和Harmonizome中识别了失巢凋亡相关基因。通过无监督聚类分析识别了失巢凋亡相关的模式。我们通过单变量、LASSO和多变量Cox回归分析构建了基于预后相关失巢凋亡基因的预后特征(Anoscore)。该模型通过Kaplan-Meier分析、受试者工作特征曲线、单变量Cox回归分析、多变量Cox回归分析、列线图和校准曲线进行了验证和评估。我们还通过TISCH2对候选基因进行了单细胞测序分析。在胃肠道癌症中进行了Anoscore、肿瘤微环境和药物敏感性之间的相关性分析。一些候选基因的表达和功能在体外得到了验证。结果:在预后相关失巢凋亡基因方面,我们识别了两种失巢凋亡相关模式,即ARG簇A和B。ARG簇B的预后比ARG簇A差。随后,Anoscore被证明是独立的预后因素,对胃肠道癌症患者的预后具有稳健的预测能力。值得注意的是,Anoscore高的患者预后较差。此外,我们基于Anoscore和患者的临床病理因素建立了一个列线图(Ano-nomogram),以预测3年和5年生存概率。而且,Anoscore高的患者具有更高的免疫细胞浸润水平和更高的免疫检查点表达。药物敏感性分析显示,Anoscore高或低的患者对不同化疗药物和靶向药物敏感。S100A11和TLR3作为代表性候选基因,表现出不同的表达模式和生物学功能。结论:本研究强调了Anoscore在预测胃肠道癌症患者预后和指导个体化治疗方案选择方面的巨大潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
失巢凋亡相关基因是否可作为胃肠道癌症预后的生物标志物,并指导免疫治疗和药物选择?
核心机制
失巢凋亡抵抗通过促进肿瘤细胞存活、增殖和迁移,与不良预后相关;S100A11可能促进肿瘤恶性行为,而TLR3可能抑制肿瘤进展,但具体机制尚需进一步研究。
主要证据
基于TCGA和GEO数据构建Anoscore模型,并在训练和验证队列中验证其预后价值;体外实验显示S100A11敲低和TLR3过表达促进失巢凋亡、抑制增殖和迁移。
研究意义
Anoscore可作为胃肠道癌症预后预测和免疫治疗反应预测的工具,有助于个体化治疗方案的制定,但需前瞻性研究进一步验证。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

数据获取与差异表达分析

识别胃肠道癌症中差异表达的失巢凋亡相关基因(ARGs)

从TCGA和GEO数据库获取食管癌、胃癌、结肠癌和直肠癌的RNA-seq和临床数据,从GeneCards和Harmonizome获取ARGs列表,通过Wilcoxon秩和检验筛选差异表达基因(|log2FC|>1,FDR<0.05)。

2

失巢凋亡相关模式识别

基于预后相关ARGs对胃肠道癌症患者进行分子分型

对87个预后相关ARGs进行无监督聚类分析(ConsensusClusterPlus),识别ARG簇A和B,通过PCA、t-SNE、UMAP验证,并比较两簇的预后和免疫浸润。

3

Anoscore预后模型构建与验证

构建并验证基于ARGs的风险评分模型

将2220例患者随机分为训练队列和测试队列(各1110例),采用LASSO和多变量Cox回归筛选12个ARGs构建Anoscore,在训练、测试及总队列中进行KM和ROC分析验证。

4

Ano-nomogram构建

整合Anoscore和临床因素,建立预测生存概率的列线图

使用rms包构建包含Anoscore、年龄、性别、病理N分期的列线图,通过校准曲线、DCA和累积风险曲线评估性能。

5

单细胞分析S100A11和TLR3表达

在单细胞水平上分析代表性基因的表达分布

使用TISCH2数据库分析食管癌(GSE160269)、胃癌(GSE134520)和结直肠癌(GSE166555)数据集中S100A11和TLR3的表达。

6

免疫浸润和药物敏感性分析

评估Anoscore与肿瘤免疫微环境和药物敏感性的相关性

使用多种算法(XCELL、TIMER、QUANTISEQ、MCPCOUNTER、EPIC、CIBERSORT-ABS、CIBERSORT)评估免疫细胞浸润,用ESTIMATE计算免疫/基质评分,分析免疫检查点表达;使用GDSC数据库和oncoPredict算法评估药物敏感性。

7

体外功能验证

验证S100A11和TLR3在肿瘤细胞中的生物学功能

在KYSE-150、HGC-27和Caco-2细胞中敲低S100A11或过表达TLR3,通过qRT-PCR和WB验证效率,进行悬浮培养以模拟失巢凋亡条件,检测凋亡相关蛋白表达,并进行CCK-8、克隆形成和transwell迁移实验。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
抗生素Zqxzbio--
DMEM培养基Gibco--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
pcDNA3.1对照质粒Boshang Biotechnology--
pcDNA3.1-TLR3质粒Boshang Biotechnology--
细胞增殖-毒性检测试剂盒Bioss--
96孔板Corning Incorporated--
分光光度计Tecan--
24孔Transwell系统Corning Incorporated--
结晶紫----
显微镜Olympus--
RNA快速提取试剂盒Fastagen--
Evo M-MLV逆转录预混液Accurate Biology--
BlazeTaq SYBR Green qPCR预混液Accurate Biology--
RIPA裂解液Solarbio--
Omni-Easy™即时BCA蛋白定量试剂盒EpiZyme--
上样缓冲液Beyotime--
聚偏二氟乙烯膜Millipore--
S100A11抗体Proteintech10237-1-AP
TLR3抗体ABclonalA11778
β-actin抗体HUABIOEM21002
BAX抗体HUABIOET1702-53
Bcl-2抗体HUABIOET1702-53
Caspase-3抗体HUABIOET1602-39
活化Caspase-3抗体HUABIOET1602-47
Caspase-7抗体HUABIOJE59-36
活化Caspase-7抗体HUABIOER60002
PARP1抗体Proteintech66520-1-Ig
剪切PARP1抗体Proteintech60555-1-Ig

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(CCTCC),培养基(RPMI 1640或DMEM),血清浓度(10%或15%),抗生素浓度(1%),培养条件(37°C,5% CO2)
阅读提示:详见Methods 2.8 Cell culture
细胞转染
siRNA序列(S100A11)和质粒(pcDNA3.1-TLR3)构建,转染试剂(Lipofectamine 3000),转染效率验证(qRT-PCR和WB)
阅读提示:详见Methods 2.9 Cell transfection和补充表S1
失巢凋亡诱导
超低附着6孔板,悬浮培养时间(24小时)
阅读提示:详见Results 3.8 In vitro validation of S100A11 and TLR3
细胞增殖实验
细胞接种密度(3×10^3细胞/孔),检测时间点(24、48、72、96小时),CCK-8试剂孵育时间(2小时),检测波长(450nm)
阅读提示:详见Methods 2.10 Cell proliferation assay
细胞迁移实验
细胞接种密度(1×10^5细胞/孔),上室体积(200μl),下室体积(800μl),FBS浓度(20%),迁移时间(文中未明确说明),固定和染色步骤
阅读提示:详见Methods 2.11 Cell migration assay
克隆形成实验
细胞接种密度(1000细胞/孔),培养时间(10天),克隆计数标准(>50个细胞)
阅读提示:详见Methods 2.12 Colony formation assay
凋亡蛋白检测
抗体清单及稀释比例(如S100A11 1:1000,TLR3 1:1000,β-actin 1:2000等),内参对照
阅读提示:详见Methods 2.14 WB analysis
预后模型构建
训练和测试队列划分(各1110例),LASSO和Cox回归参数,Anoscore公式,AUC值
阅读提示:详见Methods 2.3 Establishment of a risk score model (Anoscore)
免疫浸润分析
算法(XCELL、TIMER等),ESTIMATE评分,免疫检查点分析
阅读提示:详见Methods 2.7 Immune landscape based on the Anoscore
药物敏感性分析
GDSC数据库,oncoPredict算法,药物列表
阅读提示:详见Methods 2.6 Evaluation of drug sensitivity