CCSCs的分离与鉴定
从HCT116细胞中分离并验证EpCAM+ CD44+结肠癌干细胞。
使用CD44和EpCAM抗体通过MACS分离CCSCs,培养于含EGF、bFGF和B27的DMEM/F12培养基中形成肿瘤球,并检测干细胞标志物(NANOG、OCT4、SOX2、C-MYC)表达。
Silencing LY6K Suppresses CD44+ EpCAM+ HCT116 Human Colon Cancer Stem Cells Growth: Insights from In Vitro and In Vivo Evidence.
包含体外细胞模型(CCSCs分离、siRNA敲低、增殖、迁移、侵袭、细胞周期和凋亡分析)和体内异种移植模型,且包含功能验证和机制验证(细胞周期蛋白、MMP/TIMP)。
HCT116细胞系来源的EpCAM+ CD44+结肠癌干细胞(CCSCs) BALB/c裸鼠异种移植模型
CCSCs分离条件:4×10^7 HCT116细胞与生物素化EpCAM和CD44抗体孵育,磁珠分选 siRNA转染:siLY6K或siNC浓度50 nM,转染48小时 细胞增殖检测:MTS实验,细胞密度1×10^4细胞/100 μL,检测0、24、48、72小时 体内模型:1×10^6 CCSCs皮下注射BALB/c裸鼠,肿瘤体积50-120 mm3后分组(每组5只),瘤内注射siLY6K或siNC(5 nmol/10 μL生理盐水)每周两次,持续三周 生存分析:监测50天,Kaplan-Meier方法
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从HCT116细胞中分离并验证EpCAM+ CD44+结肠癌干细胞。
使用CD44和EpCAM抗体通过MACS分离CCSCs,培养于含EGF、bFGF和B27的DMEM/F12培养基中形成肿瘤球,并检测干细胞标志物(NANOG、OCT4、SOX2、C-MYC)表达。
分析LY6K等基因在CCSCs中的表达水平。
通过RT-qPCR检测CCSCs和HCT116细胞中LY6K、PSCA、LY6E、LY6H的表达。
验证siLY6K对CCSCs中LY6K表达的敲低效果。
使用siLY6K和siNC转染CCSCs,48小时后通过RT-qPCR和Western blot检测LY6K表达。
确定LY6K沉默对CCSCs增殖和细胞周期分布的影响。
通过MTS实验检测细胞增殖,流式细胞术分析细胞周期,Western blot检测细胞周期相关蛋白(CDK2、CDK4、cyclin D1、cyclin E1)。
确定LY6K沉默是否影响CCSCs凋亡。
通过Annexin V-FITC/PI染色和流式细胞术分析凋亡,Western blot检测caspase-3和cleaved caspase-3。
确定LY6K沉默对CCSCs迁移和侵袭能力的影响。
使用Transwell实验检测迁移和侵袭,Western blot检测MMP-2、MMP-9、TIMP-1蛋白表达。
评估LY6K沉默对肿瘤生长和生存期的影响。
将CCSCs皮下注射BALB/c裸鼠,待肿瘤生长至50-120 mm3后分组,瘤内注射siLY6K或siNC,测量肿瘤体积和重量,进行生存分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| DMEM/F12培养基 | Gibco | -- | |
| 表皮生长因子 | PeproTech | -- | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | PeproTech | -- | |
| B27补充剂 | Gibco | -- | |
| 细胞分选 | CELLection生物素结合试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 生物素化EpCAM抗体 | -- | -- | |
| 生物素化CD44抗体 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | PrimeScript RT试剂盒 | Takara Bio | -- |
| SYBR Premix Ex Taq | Takara Bio | -- | |
| 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 基因沉默 | 靶向LY6K的siRNA | RiboBio | -- |
| 阴性对照siRNA | RiboBio | -- | |
| RiboFECTTMCP转染试剂 | RiboBio | -- | |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | Dingguo Changsheng Biotechnology | -- |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| Western blot | LY6K抗体 | Invitrogen | PIPA572689 |
| MMP-2抗体 | Boster | BM0569 | |
| MMP-9抗体 | Boster | BM4089 | |
| TIMP-1抗体 | Boster | BM4980 | |
| CDK4抗体 | Boster | BM4672 | |
| 细胞周期蛋白D1抗体 | Bioss | bs-0623R | |
| CDK2抗体 | Bioss | bs-0757R | |
| 细胞周期蛋白E1抗体 | Bioss | bs-0573R | |
| caspase-3抗体 | CST | 14220 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Beyotime | AF0003 | |
| β-微管蛋白抗体 | Beyotime | AC008 | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Beyotime | A0208 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | Beyotime | A0216 | |
| 超增强化学发光检测试剂 | Yeasen Biotechnology | -- | |
| 细胞增殖 | CellTiter 96 AQueous One Solution细胞增殖检测试剂盒(MTS) | Promega | -- |
| 酶标仪(Multiskan GO) | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞周期 | 细胞周期检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | -- |
| 核糖核酸酶A | -- | -- | |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 流式细胞仪(FC500) | Beckman Coulter | -- | |
| 细胞凋亡 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | -- |
| 动物实验 | BALB/c裸鼠 | Beijing HFK Bioscience | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CCSCs分离与培养 | MACS分选的具体步骤:4×10^7 HCT116细胞与生物素化EpCAM和CD44抗体孵育时间20分钟;培养条件:DMEM/F12 + 20 ng/mL EGF + 20 ng/mL bFGF + 2% B27;肿瘤球形成时间7天 阅读提示:Methods 2.2, 2.3, Figure 1 |
| 基因敲低 | siRNA浓度50 nM,转染48小时,使用RiboFECTTMCP转染试剂 阅读提示:Methods 2.6, Figure 2 |
| 增殖检测 | MTS实验:细胞密度1×10^4细胞/100 μL,检测时间0、24、48、72小时 阅读提示:Methods 2.9, Figure 4A |
| 细胞周期分析 | 细胞周期检测:2×10^5细胞,PI染色,流式分析 阅读提示:Methods 2.10, Figure 4B |
| 迁移和侵袭 | Transwell实验:2×10^5细胞,48小时,结晶紫染色 阅读提示:Methods 2.8, Figure 3 |
| 体内异种移植 | 细胞数量1×10^6,分组每组5只,瘤内注射siLY6K或siNC(5 nmol/10 μL)每周两次共三周,肿瘤体积测量公式,处死时间第31天,生存监测50天 阅读提示:Methods 2.12, Figure 5 |
| 统计分析 | 统计方法:Student's t-test或ANOVA followed by Tukey-Kramer;生存分析Kaplan-Meier和log-rank检验;显著性水平p<0.05 阅读提示:Methods 2.13, Figure legends |