硬膜外注射不同剂量辣椒素通过TLR4/AKT/NF-κB通路减轻大鼠炎症性疼痛

Epidural injection of varying doses of capsaicin alleviates inflammatory pain in rats via the TLR4/AKT/NF-κB pathway.

作者信息Si Ri Gu Leng Sana, Chuanbao Lv, Shasha Yu, Xijin Deng, Yingwei Dong
PMID39690361
发布时间2025-01
DOI10.1007/s10787-024-01617-6

实验完整度

包含体内CFA大鼠模型、体外BV2和N2a细胞实验、免疫组化、免疫荧光、Western blot、ELISA、流式细胞术等多层级功能验证和机制验证。

主要模型

CFA诱导的慢性炎症性疼痛大鼠模型 BV2小鼠小胶质细胞系 N2a小鼠脑神经瘤细胞系

重点核对

CFA注射剂量:100 μL/只 CAP给药剂量及途径:硬膜外注射,低剂量40 mg/kg,高剂量100 mg/kg CAP给药体积:50 μL BV2细胞体外LPS刺激浓度及CAP处理浓度:LPS 1 μg/mL,CAP 10 μM或25 μM 细胞共培养条件:BV2细胞上清与N2a细胞共培养24小时

摘要

背景:辣椒素(CAP)通过激活瞬时受体电位香草酸亚型1(TRPV1)诱导短暂的疼痛感觉。然而,CAP诱导的初始神经元兴奋之后是长时间的不应期,导致长效镇痛。尽管已有关于CAP对神经病理性疼痛疾病背根神经节中小胶质细胞作用的报道,但CAP对小胶质细胞的调控通路仍不明确。方法:通过足底注射完全弗氏佐剂(CFA)建立慢性疼痛模型,并向大鼠施用不同剂量的CAP。评估了疼痛行为、疼痛相关因子的表达、神经细胞中TRPV1的蛋白表达以及小胶质细胞的炎症活化。进行了体外实验,以探究不同剂量CAP下小胶质细胞的活化和迁移能力、炎症细胞因子和通路蛋白的表达、神经细胞中TRPV1的表达以及细胞内钙浓度。结果:不同剂量的CAP减轻了大鼠的慢性疼痛,降低了神经细胞中TRPV1的表达,并抑制了小胶质细胞的活化;然而,高剂量的CAP在改善慢性疼痛方面尤为有效。体外实验证实,CAP通过抑制TLR4/AKT/NF-κB信号通路减少小胶质细胞分泌炎症细胞因子。该机制减少了神经细胞的损伤和凋亡、TRPV1的表达以及神经细胞中钙离子的内流。结论:CAP通过抑制TLR4/AKT/NF-κB信号通路,以剂量依赖的方式减少小胶质细胞的炎症反应,从而降低神经元细胞上TRPV1的表达并减轻慢性疼痛。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
辣椒素硬膜外给药是否以及如何通过调节小胶质细胞减轻慢性炎症性疼痛?
核心机制
CAP通过抑制TLR4/AKT/NF-κB信号通路,剂量依赖性地抑制小胶质细胞的炎症反应,从而降低神经元细胞上TRPV1的表达,减少钙离子内流,进而减轻慢性疼痛。
主要证据
在CFA诱导的慢性疼痛大鼠模型中,CAP(40和100 mg/kg)剂量依赖性地减轻疼痛行为,降低DRG中TRPV1表达和微胶质细胞活化;体外实验中,CAP(10和25 μM)抑制LPS诱导的BV2细胞增殖、迁移、炎性因子分泌和NF-κB通路活化,并通过BV2细胞上清降低N2a细胞凋亡、TRPV1表达和细胞内钙浓度。
研究意义
研究为慢性疼痛患者使用辣椒素的临床给药提供了理论基础,并提示高剂量CAP可能成为缓解慢性疼痛的更优选择。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立CFA诱导的慢性炎症性疼痛大鼠模型并施用不同剂量CAP

评估CAP对大鼠慢性疼痛行为及疼痛相关因子的影响。

对大鼠足底注射CFA建立CIP模型,硬膜外注射低剂量(40 mg/kg)或高剂量(100 mg/kg)CAP,测量机械性撤足阈值和冷加压测试评分,并用ELISA检测血清中5-HT、SP、BK水平。

2

检测DRG组织中TRPV1表达和小胶质细胞活化

观察CAP对DRG中神经细胞TRPV1表达和小胶质细胞活化的影响。

通过免疫组化检测DRG组织中TRPV1蛋白表达,免疫荧光检测OX-42(小胶质细胞标记)和p-NF-κB的表达。

3

检测DRG组织中TLR4/AKT/NF-κB通路蛋白表达

探讨CAP抑制小胶质细胞炎性活化的分子机制。

通过Western blot检测DRG组织中TLR4、p-AKT/AKT、p-NF-κB/NF-κB的表达水平。

4

体外实验验证CAP对小胶质细胞增殖、迁移和炎症因子分泌的影响

验证CAP是否直接抑制LPS诱导的小胶质细胞活化。

用LPS刺激BV2细胞,并用不同浓度CAP(10 μM和25 μM)处理,用CCK-8法检测增殖,Transwell实验检测迁移,ELISA检测TNF-α、IL-1β、IL-6、CCL-2水平。

5

体外验证CAP对小胶质细胞NF-κB通路蛋白表达的影响

验证CAP在细胞水平是否抑制NF-κB通路。

利用Western blot检测BV2细胞中TLR4、p-AKT/AKT、p-NF-κB/NF-κB的表达。

6

体外共培养实验验证CAP对神经元凋亡、TRPV1表达和钙离子浓度的影响

验证CAP通过调节小胶质细胞保护神经元细胞。

收集经CAP处理的BV2细胞上清,与N2a细胞共培养,用流式细胞术检测凋亡,Western blot检测TRPV1表达,试剂盒检测细胞内钙离子浓度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素----
脂多糖BeyotimeS1732
辣椒素MCEHY-10448
完全弗氏佐剂----
ELISA试剂盒(5-HT、SP、BK、IL-6、IL-1β、CCL2、TNF-α)CHUNDUBIO--
DAB过氧化物酶底物试剂盒Maixin BiotechnologyKIT-9701
苏木素ServicebioG1040
显微镜 (ML31)Mshot--
组织自发荧光淬灭剂ServicebioG1221
OX-42抗体BioworldBS6640
NF-κB抗体BiossBS-3332R
二抗 (GB21403, GB22403)Servicebio--
DAPI溶液ServicebioG1012
荧光显微镜 (MF53)Mshot--
PAGE凝胶快速制备试剂盒YameiPG112
p38抗体CST8690
p-p38抗体CST4511
NF-κB抗体ImmunoWayYM3111
p-NF-κB抗体ImmunoWayYP0191
TLR4抗体BiossBS-20594R
AKT抗体CST4691S
p-AKT抗体AffbiotechAF0016
TRPV1抗体Proteintech66983
二抗 (BA1055, BA1051)Boster--
全自动化学发光图像分析系统 (5200)Tanon--
结晶紫染色液Guanghua Sci-TechM186781
Annexin V-APC和7AAD检测试剂盒Lianke BiotechAP104-100-AAD
细胞钙离子检测试剂盒GenmedGMS 50097.1

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立与给药
动物品系、性别、体重;CFA注射部位和体积;CAP给药剂量、体积和途径;分组和各组动物数。
阅读提示:Materials and methods: Animals; Chronic inflammatory pain model and CAP administration
行为学测试
MWT和CPT测试的具体操作程序、测试时间点(建模前和建模后第1-7天)、重复次数。
阅读提示:Materials and methods: Mechanical withdrawal threshold; Cold pressor test
细胞实验
BV2和N2a细胞来源;培养条件(培养基、血清浓度、抗生素浓度);LPS和CAP的浓度、处理时间;CCK-8检测时间点;Transwell迁移时间;共培养条件。
阅读提示:Materials and methods: Cell culture; Cell counting kit-8; Transwell migration assays; Flow cytometry; Calcium ion measurement
分子检测
ELISA检测的因子和试剂盒来源;免疫组化和免疫荧光抗体的来源和浓度;Western blot抗体浓度和孵育条件;样本制备方法(如蛋白裂解、煮沸时间)。
阅读提示:Materials and methods: Enzyme-linked immunoassay; Immunohistochemical staining; Immunofluorescence staining; Western blot
统计分析
数据表达方式(mean±SD);正态性检验方法;方差齐性检验方法;多组比较所用统计方法(one-way ANOVA)。
阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis