诱导大鼠膝关节急性炎症
建立滑膜炎模型以研究巨噬细胞和滑膜MSC的作用。
第0天向大鼠膝关节注射1%角叉菜胶50 µL诱导急性炎症。
Macrophage depletion in inflamed rat knees prevents the activation of synovial mesenchymal stem cells by weakening Nampt and Spp1 signaling.
包含体内动物模型(大鼠膝关节炎症模型)、体外细胞实验(MSC增殖、软骨形成)、以及scRNA-seq和细胞通讯分析等多层级验证。
大鼠膝关节炎症模型(角叉菜胶诱导) 滑膜间充质干细胞(大鼠原代培养) 单细胞RNA测序(滑膜细胞)
巨噬细胞耗竭处理:氯膦酸盐脂质体(0.1 mg/50 µL)在角叉菜胶诱导炎症后第1天和第4天关节内注射 对照组:空脂质体(0.1 mg/50 µL) 检测时间点:第7天取材进行组织学、流式细胞术和集落形成实验 流式细胞术分析:检测CD68、CD80、CD206、CD44、CD73、CD90、CD271等表面标志物 集落形成实验:每1000个有核细胞和每克滑膜的集落形成细胞数量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立滑膜炎模型以研究巨噬细胞和滑膜MSC的作用。
第0天向大鼠膝关节注射1%角叉菜胶50 µL诱导急性炎症。
通过氯膦酸盐脂质体选择性清除巨噬细胞,比较滑膜MSC的变化。
第1天和第4天关节内注射氯膦酸盐脂质体或空脂质体(0.1 mg/50 µL)。
评估滑膜炎程度以及巨噬细胞和MSC标志物表达。
第7天收集膝关节,固定、脱钙、包埋、切片,进行HE染色和免疫组化检测CD68、CD80、CD206、CD44、CD73、CD271。
定量分析滑膜细胞中巨噬细胞和MSC标志物阳性比例。
消化滑膜组织后,用荧光标记抗体染色,通过FACS Melody检测。
评估滑膜中集落形成细胞的数量,反映MSC数量和干性。
将1000个有核细胞接种于145 cm²培养皿,培养2周后染色并计数集落。
比较对照组和氯膦酸盐组滑膜MSC在体外的增殖、表面标志和软骨形成能力。
从滑膜消化细胞中培养MSC,进行增殖实验、流式细胞术和软骨形成实验。
解析滑膜细胞亚群及其通讯变化,揭示巨噬细胞对滑膜MSC的影响。
对消化后的滑膜细胞进行scRNA-seq,鉴定细胞亚群,分析SF亚群比例、DEGs、GO富集、拟时间轨迹和细胞-细胞通讯。
验证巨噬细胞分泌的Spp1和Nampt是否能促进滑膜MSC的增殖和软骨形成。
用重组人Spp1和Nampt处理滑膜MSC,检测增殖、软骨形成相关指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 角叉菜胶 | -- | -- |
| 空对照脂质体 | HYGIEIA BIOSCIENCE | -- | |
| 组织学 | 福尔马林中性缓冲液 | Wako | -- |
| EDTA | -- | -- | |
| 免疫组化 | 抗CD68抗体 | Novus Biologicals | -- |
| 抗CD80抗体 | Bioss Antibodies | -- | |
| 抗CD206抗体 | Abcam | -- | |
| 抗CD44抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗CD73抗体 | R&D Systems | -- | |
| 抗CD271抗体 | Millipore | -- | |
| DAB溶液 | Dako | -- | |
| Blocking One Histo | NACALAI TESQUE | -- | |
| 流式细胞术 | Liberase | Roche Diagnostics | -- |
| DNase I | Sigma-Aldrich | -- | |
| ACK裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Ghost Dye Violet 510 | Tonbo Biosciences | -- | |
| 固定和透化溶液 | BD | -- | |
| CD44-PE | R&D Systems | -- | |
| CD68-FITC | BIO-RAD | -- | |
| CD73-PE-Cy7 | Bioss | -- | |
| CD80-BV421 | BD | -- | |
| CD86-Alexa647 | BIO-RAD | -- | |
| CD90-BV421 | BD | -- | |
| CD105-APC | Novus | -- | |
| CD206-PE | Bioss | -- | |
| CD271-Alexa488 | BD | -- | |
| FACS Melody | BD | -- | |
| FlowJo软件 | BD | -- | |
| 集落形成实验 | α-MEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 抗生素-抗真菌药 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 胰蛋白酶 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 二甲基亚砜 | Wako | -- | |
| 增殖实验 | Cell Counting Kit-8 | Dojindo | -- |
| 酶标仪 | Tecan | -- | |
| 重组人Spp1 | Pepro Tech | -- | |
| 重组人Nampt | Pepro Tech | -- | |
| 软骨形成实验 | DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胰岛素-转铁蛋白-硒 | Corning | -- | |
| 抗坏血酸-2-磷酸 | -- | -- | |
| L-脯氨酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 地塞米松 | -- | -- | |
| 人转化生长因子-β3 | Miltenyi Biotec Japan | -- | |
| 人骨形态发生蛋白2 | Medtronic | -- | |
| 番红O/固绿 | Wako | -- | |
| DNA和GAG定量 | 木瓜蛋白酶 | Sigma-Aldrich | P3125 |
| Hoechst 33258染料 | Dojindo | H341 | |
| 小牛胸腺DNA | Sigma-Aldrich | D4522 | |
| Blyscan试剂盒 | Biocolor | B1000 | |
| qPCR | miRNeasy Mini试剂盒 | QIAGEN | 217004 |
| NanoDrop | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover | TOYOBO Corporation | -- | |
| Thunderbird SYBR qPCR Mix | Toyobo | QPS-201 | |
| LightCycler 480仪器II | Roche Diagnostics | -- | |
| scRNA-seq | Cellbanker 1Plus | Zenoaq | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 10 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 大鼠品系、年龄、性别、角叉菜胶浓度和注射体积 阅读提示:见Methods中的Animals部分 |
| 巨噬细胞耗竭 | 氯膦酸盐脂质体剂量、注射时间点和对照处理 阅读提示:见Methods中的Animals部分 |
| 组织学评估 | 固定、脱钙时间,切片厚度,染色方法,滑膜炎评分标准 阅读提示:见Methods中的Histology部分 |
| 免疫组化 | 抗原修复条件,抗体稀释度,显色时间 阅读提示:见Methods中的Immunohistochemistry部分 |
| 流式细胞术 | 消化酶浓度和时间,抗体组合,仪器设置 阅读提示:见Methods中的Flow cytometry部分 |
| 集落形成实验 | 接种细胞数,培养时间,集落计数标准 阅读提示:见Methods中的Colony formation assay部分 |
| 滑膜MSC培养和功能 | 细胞分离方法,培养条件,传代次数,增殖和软骨形成实验的具体条件 阅读提示:见Methods中的Rat synovial MSC isolation, Proliferation assays, Chondrogenesis部分 |
| scRNA-seq分析 | 样本处理,测序平台,数据分析参数(如过滤条件、聚类分辨率) 阅读提示:见Methods中的scRNA-seq analysis部分 |
| 重组蛋白刺激实验 | Spp1和Nampt浓度,处理时间,检测方法 阅读提示:见Methods中的Proliferation assays和Chondrogenesis部分 |