发炎大鼠膝关节中巨噬细胞耗竭通过减弱Nampt和Spp1信号抑制滑膜间充质干细胞的激活

Macrophage depletion in inflamed rat knees prevents the activation of synovial mesenchymal stem cells by weakening Nampt and Spp1 signaling.

作者信息Hayato Kodama, Kentaro Endo, Ichiro Sekiya
PMID39563425
发布时间2024-11
DOI10.1186/s41232-024-00361-2

实验完整度

包含体内动物模型(大鼠膝关节炎症模型)、体外细胞实验(MSC增殖、软骨形成)、以及scRNA-seq和细胞通讯分析等多层级验证。

主要模型

大鼠膝关节炎症模型(角叉菜胶诱导) 滑膜间充质干细胞(大鼠原代培养) 单细胞RNA测序(滑膜细胞)

重点核对

巨噬细胞耗竭处理:氯膦酸盐脂质体(0.1 mg/50 µL)在角叉菜胶诱导炎症后第1天和第4天关节内注射 对照组:空脂质体(0.1 mg/50 µL) 检测时间点:第7天取材进行组织学、流式细胞术和集落形成实验 流式细胞术分析:检测CD68、CD80、CD206、CD44、CD73、CD90、CD271等表面标志物 集落形成实验:每1000个有核细胞和每克滑膜的集落形成细胞数量

摘要

背景:巨噬细胞和间充质干细胞(MSCs)在炎症和组织再生中发挥关键的相互作用。滑膜MSCs作为关节再生的关键角色,已知在滑膜炎中与巨噬细胞一起增殖。然而,滑膜MSCs与巨噬细胞之间的串扰仍不清楚。在本研究中,我们调查了用氯膦酸盐脂质体选择性耗竭巨噬细胞后,发炎大鼠膝关节中滑膜MSCs激活的变化。方法:通过注射角叉菜胶(第0天)在大鼠膝关节中诱导急性炎症。在第1天和第4天关节内给予氯膦酸盐脂质体以耗竭巨噬细胞,以空脂质体作为对照。第7天收集膝关节用于组织学、流式细胞术和集落形成试验。同时,培养滑膜MSCs并进行增殖试验、流式细胞术和软骨形成评估。我们还使用单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析了它们的串扰。结果:氯膦酸盐脂质体治疗显著减少CD68阳性巨噬细胞数量并抑制滑膜炎。免疫组织化学和流式细胞术显示氯膦酸盐组中CD68(巨噬细胞标志物)以及CD44和CD271(MSC标志物)的表达降低,而CD73表达保持不变。氯膦酸盐组中每1000个有核细胞和每克滑膜的集落形成细胞数量显著低于对照组。两组培养的滑膜MSCs显示出相当的增殖能力、表面抗原表达和软骨形成能力。scRNA-seq鉴定出七个不同的滑膜成纤维细胞(SF)亚群,其中Mki67+ SF亚群(对应于滑膜MSCs)在氯膦酸盐组显著减少。氯膦酸盐处理下调了Mki67+ SF中与细胞外基质组织和合成代谢途径相关的基因。细胞间通讯分析显示,氯膦酸盐组中巨噬细胞与Mki67+ SF之间的Nampt和Spp1信号相互作用减弱,以及Mki67+ SF与巨噬细胞之间的Ccl7、Spp1和Csf1信号相互作用减弱。Spp1和Nampt促进了滑膜MSCs的增殖和/或软骨形成。结论:用氯膦酸盐脂质体耗竭巨噬细胞抑制了滑膜炎并减少了滑膜MSCs的数量和活性,突显了巨噬细胞来源的Nampt和Spp1信号在滑膜MSC激活中的重要性。这些发现为通过增强巨噬细胞和滑膜MSCs之间的有益信号来促进关节组织再生的潜在治疗策略提供了可能。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
巨噬细胞与滑膜间充质干细胞之间的串扰机制不明,本研究旨在探究巨噬细胞耗竭对发炎膝关节中滑膜MSC激活的影响。
核心机制
巨噬细胞来源的Nampt和Spp1信号促进滑膜MSC的增殖和/或软骨形成,从而激活滑膜MSC;同时滑膜MSC通过Ccl7、Spp1和Csf1信号反馈调节巨噬细胞。
主要证据
氯膦酸盐脂质体耗竭巨噬细胞后,滑膜MSC数量(集落形成细胞、Mki67+ SF比例)和活性下降;scRNA-seq和CellChat分析显示Nampt和Spp1信号减弱;体外实验证实Spp1和Nampt促进滑膜MSC增殖和软骨形成。
研究意义
研究揭示了巨噬细胞与滑膜MSC之间的关键信号,为通过增强这些信号促进关节组织再生提供了潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

诱导大鼠膝关节急性炎症

建立滑膜炎模型以研究巨噬细胞和滑膜MSC的作用。

第0天向大鼠膝关节注射1%角叉菜胶50 µL诱导急性炎症。

2

巨噬细胞耗竭处理

通过氯膦酸盐脂质体选择性清除巨噬细胞,比较滑膜MSC的变化。

第1天和第4天关节内注射氯膦酸盐脂质体或空脂质体(0.1 mg/50 µL)。

3

组织学和免疫组织化学评估

评估滑膜炎程度以及巨噬细胞和MSC标志物表达。

第7天收集膝关节,固定、脱钙、包埋、切片,进行HE染色和免疫组化检测CD68、CD80、CD206、CD44、CD73、CD271。

4

流式细胞术分析

定量分析滑膜细胞中巨噬细胞和MSC标志物阳性比例。

消化滑膜组织后,用荧光标记抗体染色,通过FACS Melody检测。

5

集落形成实验

评估滑膜中集落形成细胞的数量,反映MSC数量和干性。

将1000个有核细胞接种于145 cm²培养皿,培养2周后染色并计数集落。

6

滑膜MSC的体外培养和功能鉴定

比较对照组和氯膦酸盐组滑膜MSC在体外的增殖、表面标志和软骨形成能力。

从滑膜消化细胞中培养MSC,进行增殖实验、流式细胞术和软骨形成实验。

7

单细胞RNA测序分析

解析滑膜细胞亚群及其通讯变化,揭示巨噬细胞对滑膜MSC的影响。

对消化后的滑膜细胞进行scRNA-seq,鉴定细胞亚群,分析SF亚群比例、DEGs、GO富集、拟时间轨迹和细胞-细胞通讯。

8

验证Spp1和Nampt对滑膜MSC的作用

验证巨噬细胞分泌的Spp1和Nampt是否能促进滑膜MSC的增殖和软骨形成。

用重组人Spp1和Nampt处理滑膜MSC,检测增殖、软骨形成相关指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
角叉菜胶----
空对照脂质体HYGIEIA BIOSCIENCE--
福尔马林中性缓冲液Wako--
EDTA----
抗CD68抗体Novus Biologicals--
抗CD80抗体Bioss Antibodies--
抗CD206抗体Abcam--
抗CD44抗体Proteintech--
抗CD73抗体R&D Systems--
抗CD271抗体Millipore--
DAB溶液Dako--
Blocking One HistoNACALAI TESQUE--
LiberaseRoche Diagnostics--
DNase ISigma-Aldrich--
ACK裂解缓冲液Thermo Fisher Scientific--
Ghost Dye Violet 510Tonbo Biosciences--
固定和透化溶液BD--
CD44-PER&D Systems--
CD68-FITCBIO-RAD--
CD73-PE-Cy7Bioss--
CD80-BV421BD--
CD86-Alexa647BIO-RAD--
CD90-BV421BD--
CD105-APCNovus--
CD206-PEBioss--
CD271-Alexa488BD--
FACS MelodyBD--
FlowJo软件BD--
α-MEM培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Thermo Fisher Scientific--
抗生素-抗真菌药Thermo Fisher Scientific--
结晶紫----
胰蛋白酶Thermo Fisher Scientific--
二甲基亚砜Wako--
Cell Counting Kit-8Dojindo--
酶标仪Tecan--
重组人Spp1Pepro Tech--
重组人NamptPepro Tech--
DMEM培养基Thermo Fisher Scientific--
胰岛素-转铁蛋白-硒Corning--
抗坏血酸-2-磷酸----
L-脯氨酸Sigma-Aldrich--
地塞米松----
人转化生长因子-β3Miltenyi Biotec Japan--
人骨形态发生蛋白2Medtronic--
番红O/固绿Wako--
木瓜蛋白酶Sigma-AldrichP3125
Hoechst 33258染料DojindoH341
小牛胸腺DNASigma-AldrichD4522
Blyscan试剂盒BiocolorB1000
miRNeasy Mini试剂盒QIAGEN217004
NanoDropThermo Fisher Scientific--
ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA RemoverTOYOBO Corporation--
Thunderbird SYBR qPCR MixToyoboQPS-201
LightCycler 480仪器IIRoche Diagnostics--
Cellbanker 1PlusZenoaq--
GraphPad Prism 10GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
大鼠品系、年龄、性别、角叉菜胶浓度和注射体积
阅读提示:见Methods中的Animals部分
巨噬细胞耗竭
氯膦酸盐脂质体剂量、注射时间点和对照处理
阅读提示:见Methods中的Animals部分
组织学评估
固定、脱钙时间,切片厚度,染色方法,滑膜炎评分标准
阅读提示:见Methods中的Histology部分
免疫组化
抗原修复条件,抗体稀释度,显色时间
阅读提示:见Methods中的Immunohistochemistry部分
流式细胞术
消化酶浓度和时间,抗体组合,仪器设置
阅读提示:见Methods中的Flow cytometry部分
集落形成实验
接种细胞数,培养时间,集落计数标准
阅读提示:见Methods中的Colony formation assay部分
滑膜MSC培养和功能
细胞分离方法,培养条件,传代次数,增殖和软骨形成实验的具体条件
阅读提示:见Methods中的Rat synovial MSC isolation, Proliferation assays, Chondrogenesis部分
scRNA-seq分析
样本处理,测序平台,数据分析参数(如过滤条件、聚类分辨率)
阅读提示:见Methods中的scRNA-seq analysis部分
重组蛋白刺激实验
Spp1和Nampt浓度,处理时间,检测方法
阅读提示:见Methods中的Proliferation assays和Chondrogenesis部分