细胞株建立与生长优化
筛选并优化能长期传代且保持高成脂潜力的ISP-4细胞株的生长条件。
从SV40T永生化猪脂肪细胞中分离108株,筛选出ISP-4;比较DMEM和DMEM/F12对生长和成脂的影响。
An immortal porcine preadipocyte cell strain for efficient production of cell-cultured fat.
包含细胞株建立与长期传代验证、2D和3D分化条件优化、微载体扩增分化、共培养分化及分子检测等多层次功能验证。
永生化猪前脂肪细胞株ISP-4 小鼠成肌细胞C2C12 永生化猪肌肉卫星细胞PMSC
ISP-4细胞株在DMEM培养基中培养,可传代超过40代 4+4分化方案:ADM处理4天,AMM处理4天,每2天换液 2×5分化方案:AMM处理10天,每2天换液 低血清分化:FBS浓度降至2% 3D培养:藻酸盐微纤维中的细胞浓度1.25×10^7 cells/mL,微载体浓度5 mg/mL
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选并优化能长期传代且保持高成脂潜力的ISP-4细胞株的生长条件。
从SV40T永生化猪脂肪细胞中分离108株,筛选出ISP-4;比较DMEM和DMEM/F12对生长和成脂的影响。
验证ISP-4在长期传代后是否保持成脂能力。
检测连续传代40代以上后的生长速率、脂质积累和成脂基因表达。
开发低成本、低毒性的成脂分化方法。
将ISP-4在AMM中培养10天(2×5方案)或低血清(2% FBS)条件下分化,并检测脂质积累。
评估ISP-4在海藻酸盐水凝胶中生成细胞培养脂肪的能力。
将ISP-4包埋于海藻酸盐微纤维,使用4+4方案分化,分析脂质积累和基因表达。
评价ISP-4在悬浮培养系统中扩增和原位分化的可行性。
使用3D TableTrix微载体在搅拌瓶中扩增ISP-4,并进一步直接在微载体上分化。
验证ISP-4能否与肌细胞共培养并同时分化成脂肪和肌肉结构。
将ISP-4与C2C12或PMSC共培养,使用调整的分化方案,通过免疫荧光和RT-qPCR检测脂肪和肌肉标记。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Servicebio | G4511 |
| 胎牛血清 | Procell | 164210-50 | |
| 青霉素 | Sangon | A610028 | |
| 链霉素 | Sangon | A610494 | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Novoprotein | C046 | |
| 脂肪分化 | 胰岛素 | Novolin R | -- |
| 3,3',5-三碘-L-甲状腺原氨酸 | Yuanye Bio-Technology | S24025-25mg | |
| 地塞米松 | Sangon | A601187 | |
| 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 | Sangon | A606630 | |
| 吲哚美辛 | Makclin | I811784 | |
| 罗格列酮 | Makclin | R832516 | |
| 生物素 | Makclin | B6220 | |
| 泛酸 | Sangon | A600683 | |
| 转铁蛋白 | Yuanye Bio-Technology | S12027 | |
| 3D培养 | 海藻酸盐 | Sigma | W201502 |
| 凝血酶 | Biosharp | BS903 | |
| 纤维蛋白原 | Biosharp | BS943 | |
| RNA提取 | 总RNA提取试剂 | Vazyme | R401 |
| cDNA合成 | HiScript II Q RT SuperMix反转录预混液 | Vazyme | R223 |
| RT-qPCR | iQ SYBR Green Supermix荧光定量PCR预混液 | Servicebio | G3326 |
| QuantStudio 5实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 免疫荧光 | 抗DESMIN抗体 | Abclonal | A0699 |
| 抗MYL1抗体 | Servicebio | GB112474 | |
| 山羊抗兔IgG-DyLight 549二抗 | Bioworld | BS10023 | |
| Hoechst33342染液 | Beyotime | C1028 | |
| BODIPY FL荧光染料 | Thermo Fisher | D3922 | |
| 鬼笔环肽红色荧光染料 | Beyotime | C2207S | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Servicebio | G2002 |
| 抗PERILIPIN 1抗体 | Bioss | bs-3789R | |
| 抗DESMIN抗体 | Abclonal | A0699 | |
| 抗FLAG抗体 | Genscript | A00187 | |
| 抗GAPDH抗体 | Bioworld | AP0063 | |
| 抗TUBULIN抗体 | Sangon | D190090-0100 | |
| 脂质含量分析 | 甘油三酯含量检测试剂盒 | Sangon | D799795 |
| 微载体培养 | 3D TableTrix微载体 | CytoNiche | -- |
| 搅拌瓶 | CytoNiche | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞株:ISP-4(永生化猪前脂肪细胞),培养于DMEM培养基,添加10% FBS、100 U/mL青霉素、100 μg/mL链霉素;PMSC需额外添加10% FBS和2 ng/mL FGFb。传代次数和细胞密度需核对。 阅读提示:Methods: Cell culture |
| 脂肪分化 | 分化方案:标准4+4(ADM 4天,AMM 4天)或2×5(AMM 10天);ADM成分包括胰岛素、地塞米松、IBMX、吲哚美辛、罗格列酮等;血清浓度(10%或2% FBS);换液频率(每2天)。 阅读提示:Methods: ISP-4 adipogenic differentiation; Results: Optimization of adipogenic methods |
| 3D培养 | 海藻酸盐浓度0.75%,细胞密度1.25×10^7 cells/mL,固化液为50 mM CaCl2,37°C孵育20分钟;分化前恢复培养4天。 阅读提示:Methods: Cell culture in alginate hydrogel |
| 微载体培养 | 微载体浓度5 mg/mL(3D TableTrix),接种细胞数2.5×10^6,搅拌速度(前24小时35 rpm/5min,之后40 rpm),培养时间、收获和分化条件。 阅读提示:Methods: Microcarrier cell culture |
| 共培养分化 | 细胞比例:ISP-4与C2C12(1:3)或PMSC(3:7);分化方案:ADM处理时间(C2C12 4天,PMSC 48小时)、AMM处理(后续2% HS培养4天)。 阅读提示:Methods: ISP-4 and C2C12/PMSC mixed culture; Supplementary Figure 8 |