一种用于高效生产细胞培养脂肪的永生化猪前脂肪细胞株

An immortal porcine preadipocyte cell strain for efficient production of cell-cultured fat.

作者信息Yun-Mou Cheng, Peng-Cheng Hong, Ming-Mei Song, Hai-Ning Zhu, Jing Qin, Zeng-Di Zhang, Hao Chen, Xing-Zhou Ma, Meng-Yuan Tian, Wei-Yun Zhu, Zan Huang
PMID38007598
发布时间2023-11-25
DOI10.1038/s42003-023-05583-7

实验完整度

高

包含细胞株建立与长期传代验证、2D和3D分化条件优化、微载体扩增分化、共培养分化及分子检测等多层次功能验证。

主要模型

永生化猪前脂肪细胞株ISP-4 小鼠成肌细胞C2C12 永生化猪肌肉卫星细胞PMSC

重点核对

ISP-4细胞株在DMEM培养基中培养,可传代超过40代 4+4分化方案:ADM处理4天,AMM处理4天,每2天换液 2×5分化方案:AMM处理10天,每2天换液 低血清分化:FBS浓度降至2% 3D培养:藻酸盐微纤维中的细胞浓度1.25×10^7 cells/mL,微载体浓度5 mg/mL

摘要

在细胞培养肉中添加脂肪细胞可以提供类似真实肉的独特香气和多汁口感。然而,获得能够长期传代、保持成脂潜力并降低生产成本的中坚细胞仍然是一个重大挑战。在本研究中,我们提出了一种源自永生化猪前脂肪细胞的细胞株,该细胞株可传代超过40代而不丧失分化能力。该细胞株可以在3D生物支架内分化生成细胞培养脂肪,使用更少的化学品和血清。此外,它可以在微载体上扩增和分化,实现规模化培养以降低成本和劳动力。而且,它可以与肌肉前体细胞共同分化,产生类似于真实肉的图案。因此,我们的细胞株为研究和生产细胞培养脂肪提供了一个优秀的模型。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何获得一种能够长期传代、保持高效成脂能力并适用于细胞培养脂肪生产的猪前脂肪细胞株?
核心机制
ISP-4细胞株通过SV40T永生化,在长期传代中保持成脂基因表达和脂质积累能力,并能在低血清或无化学诱导剂的条件下分化。
主要证据
ISP-4在传代40代后仍能积累脂质,并在藻酸盐支架和微载体上分化,与C2C12和PMSC共培养时产生脂肪和肌肉结构。
研究意义
ISP-4提供了高效、成本降低的细胞培养脂肪生产种子细胞模型,有望应用于细胞培养肉的生产。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞株建立与生长优化

筛选并优化能长期传代且保持高成脂潜力的ISP-4细胞株的生长条件。

从SV40T永生化猪脂肪细胞中分离108株,筛选出ISP-4;比较DMEM和DMEM/F12对生长和成脂的影响。

2

长期传代稳定性验证

验证ISP-4在长期传代后是否保持成脂能力。

检测连续传代40代以上后的生长速率、脂质积累和成脂基因表达。

3

2D分化方法优化

开发低成本、低毒性的成脂分化方法。

将ISP-4在AMM中培养10天(2×5方案)或低血清(2% FBS)条件下分化,并检测脂质积累。

4

3D生物支架分化

评估ISP-4在海藻酸盐水凝胶中生成细胞培养脂肪的能力。

将ISP-4包埋于海藻酸盐微纤维,使用4+4方案分化,分析脂质积累和基因表达。

5

微载体规模化培养与分化

评价ISP-4在悬浮培养系统中扩增和原位分化的可行性。

使用3D TableTrix微载体在搅拌瓶中扩增ISP-4,并进一步直接在微载体上分化。

6

与肌细胞共培养共分化

验证ISP-4能否与肌细胞共培养并同时分化成脂肪和肌肉结构。

将ISP-4与C2C12或PMSC共培养,使用调整的分化方案,通过免疫荧光和RT-qPCR检测脂肪和肌肉标记。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基ServicebioG4511
胎牛血清Procell164210-50
青霉素SangonA610028
链霉素SangonA610494
碱性成纤维细胞生长因子NovoproteinC046
胰岛素Novolin R--
3,3',5-三碘-L-甲状腺原氨酸Yuanye Bio-TechnologyS24025-25mg
地塞米松SangonA601187
3-异丁基-1-甲基黄嘌呤SangonA606630
吲哚美辛MakclinI811784
罗格列酮MakclinR832516
生物素MakclinB6220
泛酸SangonA600683
转铁蛋白Yuanye Bio-TechnologyS12027
海藻酸盐SigmaW201502
凝血酶BiosharpBS903
纤维蛋白原BiosharpBS943
总RNA提取试剂VazymeR401
HiScript II Q RT SuperMix反转录预混液VazymeR223
iQ SYBR Green Supermix荧光定量PCR预混液ServicebioG3326
QuantStudio 5实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher Scientific--
抗DESMIN抗体AbclonalA0699
抗MYL1抗体ServicebioGB112474
山羊抗兔IgG-DyLight 549二抗BioworldBS10023
Hoechst33342染液BeyotimeC1028
BODIPY FL荧光染料Thermo FisherD3922
鬼笔环肽红色荧光染料BeyotimeC2207S
RIPA裂解液ServicebioG2002
抗PERILIPIN 1抗体Biossbs-3789R
抗DESMIN抗体AbclonalA0699
抗FLAG抗体GenscriptA00187
抗GAPDH抗体BioworldAP0063
抗TUBULIN抗体SangonD190090-0100
甘油三酯含量检测试剂盒SangonD799795
3D TableTrix微载体CytoNiche--
搅拌瓶CytoNiche--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞株:ISP-4(永生化猪前脂肪细胞),培养于DMEM培养基,添加10% FBS、100 U/mL青霉素、100 μg/mL链霉素;PMSC需额外添加10% FBS和2 ng/mL FGFb。传代次数和细胞密度需核对。
阅读提示:Methods: Cell culture
脂肪分化
分化方案:标准4+4(ADM 4天,AMM 4天)或2×5(AMM 10天);ADM成分包括胰岛素、地塞米松、IBMX、吲哚美辛、罗格列酮等;血清浓度(10%或2% FBS);换液频率(每2天)。
阅读提示:Methods: ISP-4 adipogenic differentiation; Results: Optimization of adipogenic methods
3D培养
海藻酸盐浓度0.75%,细胞密度1.25×10^7 cells/mL,固化液为50 mM CaCl2,37°C孵育20分钟;分化前恢复培养4天。
阅读提示:Methods: Cell culture in alginate hydrogel
微载体培养
微载体浓度5 mg/mL(3D TableTrix),接种细胞数2.5×10^6,搅拌速度(前24小时35 rpm/5min,之后40 rpm),培养时间、收获和分化条件。
阅读提示:Methods: Microcarrier cell culture
共培养分化
细胞比例:ISP-4与C2C12(1:3)或PMSC(3:7);分化方案:ADM处理时间(C2C12 4天,PMSC 48小时)、AMM处理(后续2% HS培养4天)。
阅读提示:Methods: ISP-4 and C2C12/PMSC mixed culture; Supplementary Figure 8