生物信息学筛选和临床样本验证
筛选与NK细胞相关的差异表达miRNA,并验证miR-1275在胰腺癌中的表达及其与NK细胞的相关性。
分析GEO数据集GSE85589,使用TIMER2.0免疫评分筛选与NK细胞相关的miRNA;通过H&E染色、IF、FISH和qRT-PCR检测胰腺癌组织和血液样本中miR-1275和NK细胞标志物CD16的表达。
Hypoxia mediates immune escape of pancreatic cancer cells by affecting miR-1275/AXIN2 in natural killer cells.
结合GEO数据筛选、TIMER2.0免疫评分、临床样本验证及体外NK-92细胞功能实验,包含缺氧处理、miR-1275调控、靶基因验证及功能回复实验,但缺乏体内动物模型验证。
NK-92细胞系 Panc-1细胞系 胰腺癌患者肿瘤组织及癌旁组织 健康志愿者和胰腺癌患者外周血NK细胞
NK-92细胞缺氧处理条件(1% O2,24小时) miR-1275上调和下调试剂(agomir-1275和antagomir-1275) HIF1α抑制剂CAY10585处理(20 μM,24小时) NK-92与Panc-1共培养比例(6.25:1至50:1)和时长(6小时) AXIN2过表达质粒(AXIN2 oe)转染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选与NK细胞相关的差异表达miRNA,并验证miR-1275在胰腺癌中的表达及其与NK细胞的相关性。
分析GEO数据集GSE85589,使用TIMER2.0免疫评分筛选与NK细胞相关的miRNA;通过H&E染色、IF、FISH和qRT-PCR检测胰腺癌组织和血液样本中miR-1275和NK细胞标志物CD16的表达。
探讨缺氧对NK细胞miR-1275表达及杀伤功能的影响。
将NK-92细胞置于不同氧浓度下培养,检测miR-1275表达;通过ELISA检测免疫因子分泌,通过MTT检测NK-92细胞对Panc-1细胞的杀伤能力;使用HIF1α抑制剂CAY10585处理,观察其对缺氧效应的逆转作用。
验证miR-1275对NK细胞杀伤能力的调控作用。
通过转染agomir-1275和antagomir-1275调节NK-92细胞中miR-1275表达,检测免疫因子分泌和杀伤能力变化。
鉴定miR-1275的下游靶基因。
通过TargetScan和miRDB预测靶基因,取交集;通过qRT-PCR和Western blot检测AXIN2表达,并进行双荧光素酶报告基因实验验证miR-1275与AXIN2 3'UTR的结合。
验证miR-1275通过靶向AXIN2调控NK细胞杀伤能力。
在NK-92细胞中共转染AXIN2过表达质粒和miR-1275激动剂,检测免疫因子分泌和杀伤能力变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 重组白细胞介素-2 | -- | -- | |
| 细胞分选 | 磁珠细胞分选 | StemCell Technologies | -- |
| 细胞转染 | AXIN2过表达质粒 | YouBio | -- |
| 空白载体 | YouBio | -- | |
| miR-1275激动剂 | Genepharma | -- | |
| miR-1275拮抗剂 | Genepharma | -- | |
| 激动剂阴性对照 | Genepharma | -- | |
| 拮抗剂阴性对照 | Genepharma | -- | |
| 电穿孔系统 | Bio-rad | -- | |
| 药物处理 | HIF1α抑制剂 | MedChemExpress | HY-13671 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| cDNA合成 | FastKing cDNA合成试剂盒 | TIANGEN | -- |
| qRT-PCR | SuperReal PreMix Plus(SYBR Green) | TIANGEN | -- |
| Fast实时荧光定量PCR 7500系统 | -- | -- | |
| ELISA | 穿孔素ELISA试剂盒 | CUSABIO | CSB-E09313h |
| IFN-γ ELISA试剂盒 | Beyotime | PI521 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Beyotime | PT518 | |
| 细胞杀伤实验 | MTT | Sigma-Aldrich | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 抗HIF1A抗体 | Abcam | ab179483 | |
| 抗AXIN2抗体 | Abcam | ab109307 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab9485 | |
| 山羊抗兔IgG(HRP) | Abcam | ab6721 | |
| 增强化学发光底物试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 双荧光素酶报告基因实验 | Lipofectamine 2000转染试剂 | -- | -- |
| 双荧光素酶检测系统 | Beyotime | -- | |
| 免疫荧光染色 | 抗CD16抗体 | Bioss | bs-6028R |
| Alexa Fluor 647标记二抗 | Abcam | ab150079 | |
| DAPI | -- | -- | |
| FITC-酪胺信号放大 | -- | -- | |
| Cy3标记二抗 | -- | -- | |
| 组织化学 | 二甲苯 | Sigma-Aldrich | -- |
| 伊红 | Sigma-Aldrich | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | NK-92细胞培养条件(含20% FBS和150 IU/mL IL-2的RPMI-1640培养基),Panc-1细胞培养条件(含10% FBS的DMEM培养基),培养环境37°C,5% CO2。 阅读提示:详见Methods中的Cell culture小节。 |
| 缺氧处理 | 缺氧处理氧浓度(1% O2)和处理时间(24小时);HIF1α抑制剂CAY10585浓度(20 μM)和处理时间(24小时)。 阅读提示:详见Methods中的Hypoxia treatment小节及Figure 4图注。 |
| 细胞转染 | 使用agomir-1275和antagomir-1275及阴性对照的浓度和转染方法(电穿孔);AXIN2过表达质粒和空白载体的转染效率验证。 阅读提示:详见Methods中的Cell transfection小节及Figure 5和图7图注。 |
| 细胞杀伤实验 | NK-92与Panc-1共培养比例(6.25:1至50:1)和时长(6小时);MTT检测方法(490 nm OD值)。 阅读提示:详见Methods中的Cell killing assay小节及Figure 4和5图注。 |
| ELISA检测 | 共培养比例(25:1)和时长(6小时);检测因子(perforin、IFN-γ、TNF-α)及ELISA试剂盒品牌和货号。 阅读提示:详见Methods中的Enzyme linked immunosorbent assay小节。 |
| 双荧光素酶报告基因实验 | 293T细胞共转染条件;报告基因质粒(AXIN2 3'UTR-WT和MUT)和转染试剂(Lipofectamine 2000)浓度;裂解液检测方法。 阅读提示:详见Methods中的Dual luciferase reporter gene assay小节及Figure 6图注。 |