尼古丁通过抑制小鼠海马中的 NF-κB 抑制结晶二氧化硅诱导的星形胶质细胞活化和神经元死亡

Nicotine suppresses crystalline silica-induced astrocyte activation and neuronal death by inhibiting NF-κB in the mouse hippocampus.

作者信息Hangbing Cao, Bing Li, Min Mu, Shanshan Li, Haoming Chen, Huihui Tao, Wenyang Wang, Yuanjie Zou, Yehong Zhao, Yang Liu, Xinrong Tao
PMID37864452
发布时间2024-04
DOI10.1111/cns.14508

实验完整度

包含体内动物模型(C57BL/6 小鼠)、行为学测试、ELISA、RNA 测序、免疫荧光、Western blot 等多个独立证据层级,并明确进行了功能验证(行为学)和机制验证(NF-κB 通路)。

主要模型

C57BL/6 小鼠 CS 暴露和尼古丁干预的小鼠模型

重点核对

CS 暴露剂量:20 mg/mL,50 μL 鼻滴,每 3 天一次,共 5 次 尼古丁给药:200 μg/mL 于 1% 糖精水中,逐渐递增至 200 μg/mL 行为学测试时间点:3、6、9 周 检测脑区:海马 CA1 区 关键分子:NF-κB、Lcn2

摘要

目的:职业环境中接触结晶二氧化硅(CS)会诱发呼吸系统以及可能大脑的慢性炎症。一些工人经常同时接触 CS 和尼古丁。在此,我们探讨了尼古丁对 CS 诱导的小鼠海马神经炎症的影响。方法:在本研究中,我们建立了 C57BL/6 小鼠的 CS 和尼古丁双重暴露模型。为了评估抑郁样行为,在 3、6 和 9 周进行了实验。通过 ELISA 分析血清炎症因子。收集海马进行 RNA 测序分析,并检查与炎症和细胞死亡相关的基因表达模式。使用免疫组织化学和免疫荧光染色评估小胶质细胞和星形胶质细胞活化以及海马神经元死亡。使用 Western blotting 分析 NF-κB 表达水平。结果:暴露于 CS 3 周的小鼠表现出抑郁迹象。这伴随着血液中 IL-6 升高、血脑屏障破坏以及由海马 CA1 区 NF-κB 表达增加引起的星形胶质细胞活化。星形胶质细胞来源的 Lcn2 水平升高和与炎症相关的基因上调导致神经元死亡率升高。此外,尼古丁减轻了 NF-κB 表达、星形胶质细胞活化和神经元死亡,从而改善了相关症状。结论:二氧化硅暴露诱导小鼠海马 CA1 区神经炎症和神经元死亡以及抑郁行为。然而,尼古丁抑制 CS 诱导的神经炎症和神经元凋亡,减轻小鼠的抑郁样行为。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CS 暴露如何影响小鼠海马神经炎症和抑郁样行为,以及尼古丁是否具有神经保护作用?
核心机制
CS 暴露通过激活 NF-κB 信号通路促进星形胶质细胞活化,上调 Lcn2 表达,导致神经元死亡,进而引发抑郁样行为;尼古丁抑制 NF-κB 表达,减少星形胶质细胞活化和 Lcn2 的产生,从而保护神经元并缓解抑郁症状。
主要证据
CS 暴露小鼠表现出 BBB 破坏、星形胶质细胞活化(GFAP 上调)、NF-κB 表达增加、Lcn2 上调、神经元凋亡(TUNEL、BAX 阳性细胞增多)以及抑郁样行为(OFT、EPM 测试);尼古丁干预显著逆转这些效应。
研究意义
该研究为开发针对慢性 CS 暴露相关抑郁和认知障碍的新疗法提供了潜在靶点,即抑制 NF-κB 信号通路和星形胶质细胞活化。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立 CS 暴露和尼古丁干预的小鼠模型

模拟职业性 CS 暴露和吸烟者尼古丁摄入的共暴露情况,以评估其对小鼠的影响。

将 C57BL/6 小鼠分为四组:Veh、Nic、Sil、Nic+Sil。CS 通过鼻滴给予(20 mg/mL,50 μL,每 3 天一次,共 5 次),尼古丁通过饮水给予(逐渐递增至 200 μg/mL)。

2

评估 BBB 完整性

检测 CS 暴露是否破坏血脑屏障。

通过伊文思蓝(EB)外渗实验,检测脑组织中 EB 含量以及 EB 与 Cldn-5 的共定位。

3

检测星形胶质细胞活化和 Lcn2 表达

评估 CS 暴露对星形胶质细胞活化和 Lcn2 表达的影响。

通过 GFAP 免疫荧光染色、Sholl 分析评估星形胶质细胞形态;通过 RNA 测序和免疫荧光染色检测 Lcn2 表达。

4

验证 NF-κB 信号通路

探究 CS 激活星形胶质细胞的分子机制,并验证尼古丁的抑制作用。

通过免疫荧光染色和 Western blot 检测 NF-κB 表达水平。

5

检测炎症和凋亡相关基因表达

验证 CS 诱导的炎症和凋亡基因表达变化,以及尼古丁的抑制效应。

通过 qPCR 检测 Lcn2、S100a8、S100a9、Ly6a、Chil3、FAS 等基因的表达。

6

评估神经元死亡

检测 CS 暴露是否导致海马 CA1 区神经元死亡,以及尼古丁的保护作用。

通过 Nissl 染色、TUNEL 染色和 BAX 免疫荧光染色评估神经元损伤和凋亡。

7

行为学测试

评估 CS 暴露对小鼠抑郁样行为的影响以及尼古丁的干预效果。

在 3、6、9 周进行 OFT、EPM、MBT 测试。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
结晶二氧化硅Sigma-Aldrich--
伊文思蓝----
小鼠 IL-6 ELISA 试剂盒ABclonalRK00008
小鼠 IL-1β ELISA 试剂盒ABclonalRK00006
小鼠 TNF-α ELISA 试剂盒ABclonalRK00027
一步法 TUNEL 凋亡检测试剂盒BeyotimeC1086
DAPIBeyotimeC1002
NF-κB 抗体Biossbs-2321R
HRP 标记的亲和纯化山羊抗兔 IgG(H+L)ProteintechSA00001-2
ABScript III 逆转录试剂盒ABclonalRK20408
2× SYBR Green 快速 qPCR 预混液ABclonalRK21204
Amersham ImageQuant 800 成像系统Cytiva--
QuantStudio 3 实时荧光定量 PCR 系统Thermo Fisher Scientific--
奥林巴斯 FV-3000 共聚焦显微镜Olympus--
VS-200 扫描显微镜Olympus--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型和分组
小鼠品系:C57BL/6(雄性);分组:Veh、Nic、Sil、Nic+Sil,每组 12 只;CS 暴露:20 mg/mL,50 μL 鼻滴,每 3 天一次,共 5 次;尼古丁给药:1% 糖精水中,浓度从 50 μg/mL 递增至 200 μg/mL
阅读提示:Materials and Methods 部分 2.2
BBB 完整性检测
EB 注射剂量(2 mL/kg 5% EB 溶液),注射途径(眶后静脉),检测时间(1 小时后),脑组织处理(甲酰胺提取,55°C 24-48 小时)
阅读提示:Materials and Methods 部分 2.4
免疫荧光染色
抗体稀释比例和品牌(见表 1),组织厚度(30 μm),封闭条件(5% BSA),一抗孵育(4°C 过夜),二抗孵育(室温 1 小时)
阅读提示:Materials and Methods 部分 2.5
qPCR
引物序列(表 2),使用 SYBR Green 预混液,内参基因 GAPDH,相对定量方法 2^-ΔΔCt
阅读提示:Materials and Methods 部分 2.8,表 2