WJ-MSCs的分离与表征
获取并确认WJ-MSCs的干细胞特性
从人脐带分离WJ-MSCs,进行扩增培养,通过流式细胞术检测表面标记物,并进行成脂和成骨分化能力鉴定。
Effects of the Co-Overexpression of the BCL and BDNF Genes on the Gamma-Aminobutyric Acid-Ergic Differentiation of Wharton's-Jelly-Derived Mesenchymal Stem Cells.
包含体外细胞培养、慢病毒转导、RT-qPCR、流式细胞术、免疫荧光和ELISA检测,但缺乏动物模型或体内验证。
Wharton胶来源间充质干细胞(WJ-MSCs) HEK 293T细胞(用于慢病毒包装)
WJ-MSCs来源(人脐带) 慢病毒转导后12天神经元分化 转导时病毒稀释液为Opti-MEM I Reduced Serum Medium,含5 μg/mL polybrene BCL2和BDNF共过表达时GAD67阳性细胞比例约16%,BCLXL和BDNF约18% 仅BCL2和BDNF共过表达细胞去极化后GABA释放增加
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并确认WJ-MSCs的干细胞特性
从人脐带分离WJ-MSCs,进行扩增培养,通过流式细胞术检测表面标记物,并进行成脂和成骨分化能力鉴定。
建立BCL2/BCLXL和BDNF共过表达的WJ-MSCs模型
将BCL2或BCLXL克隆到LeGO-iG2载体,BDNF克隆到LeGO-iT2载体,共转染HEK293T细胞包装慢病毒,然后感染WJ-MSCs。
诱导基因修饰的WJ-MSCs分化为神经元
转导后的WJ-MSCs在含Neurobasal PLUS和B27 PLUS的分化培养基中培养12天。
检测神经元分化相关基因的表达水平
提取分化后细胞的总RNA,通过RT-qPCR检测MAP2、SYP、GAD和BAX基因的表达。
确认GABA能神经元标志物GAD67的蛋白表达
使用抗GAD67抗体进行免疫荧光染色和流式细胞术检测GAD67阳性细胞比例。
评估分化细胞的功能性,即去极化后GABA的释放能力
收集低钾和高钾条件下的上清液,用ELISA试剂盒定量GABA浓度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| WJ-MSC培养 | 间充质干细胞扩增培养基 | Sigma Aldrich | SCM015 |
| 抗生素抗真菌溶液 | PAN-Biotech | P06-07300 | |
| 细胞传代 | 0.05%胰蛋白酶-0.02%EDTA-PBS溶液 | ATCC | PCS-999-003 |
| 胰蛋白酶中和溶液 | ATCC | PCS-999-004 | |
| WJ-MSC培养 | 间充质干细胞基础培养基 | ATCC | PCS-500-030 |
| 用于脂肪和脐带来源MSC的低血清间充质干细胞生长试剂盒 | ATCC | PCS-500-040 | |
| WJ-MSC表征 | 0.05%胰蛋白酶/EDTA溶液 | PAN-Biotech | P10-029500 |
| 磷酸盐缓冲液 | PAN-Biotech | P04-36500 | |
| 流式细胞术 | BD FACSAria II流式细胞仪 | BD | -- |
| WJ-MSC表征 | StemMACS成脂分化培养基 | Miltenyi Biotec | 130-091-677 |
| 油红O | Sigma Aldrich | O9755-256 | |
| StemMACS成骨分化培养基 | Miltenyi Biotec | 130-091-678 | |
| BCIP/NBT底物 | Sigma Aldrich | B5655-5TAB | |
| WJ-MSC培养 | DMEM/F12培养基 | PAN-Biotech | P04-41250 |
| 胎牛血清 | PAN-Biotech | P30-8500 | |
| 抗生素溶液 | PAN-Biotech | -- | |
| 慢病毒包装 | DMEM培养基 | PAN-Biotech | P04-05550 |
| 胎牛血清 | PAN-Biotech | P04-03590 | |
| 抗生素溶液 | PAN-Biotech | P06-07300 | |
| pMD2.G质粒 | Addgene | 12259 | |
| psPAX2质粒 | Addgene | 12260 | |
| Corning 150 mL真空过滤/储存瓶系统 | Corning | 431153 | |
| Lenti-X浓缩器 | TaKaRa Bio | 631231 | |
| LeGO-iG2载体 | Addgene | 27341 | |
| LeGO-iT2载体 | Addgene | 27343 | |
| 慢病毒转导 | Opti-MEM I减血清培养基 | Gibco | 31985070 |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| 神经分化 | Neurobasal PLUS培养基 | Gibco | A3582901 |
| B27 PLUS添加剂 | Gibco | A3582801 | |
| RNA提取 | NucleoZOL试剂 | Macherey-Nagel | 740404.200 |
| RT-qPCR | KiCqStart SYBR Green引物 | Sigma Aldrich | -- |
| GoTaq 1-Step RT-qPCR系统 | Promega | A6020 | |
| C1000 Touch热循环仪 | Bio-Rad | -- | |
| GAD67检测 | 牛血清白蛋白 | Sigma Aldrich | A9418 |
| Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787 | |
| 正常山羊血清 | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | |
| 兔抗GAD67抗体 | GeneTex | GTX101881 | |
| 山羊抗兔IgG二抗(DY405) | LifeSpan BioSciences | LS-C355899 | |
| 兔IgG同型对照 | Bioss Antibodies | bs-0295P | |
| GABA释放分析 | ELISA试剂盒 | Cloud-Clone Corp | CEA900Ge |
| ELX 800 IU自动酶标仪 | Bio-Tek Instruments | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| WJ-MSC分离与培养 | 脐带来源(人)、分离方法、培养基成分(MSC Expansion Medium,1% Antibiotic Antimycotic Solution)、培养条件(37°C,5% CO2)、传代试剂(0.05% trypsin/EDTA) 阅读提示:Methods 2.1 |
| 慢病毒转导 | 质粒(LeGO-iG2-BCL2/BCLXL,LeGO-iT2-BDNF)、包装细胞(HEK293T)、转导时细胞密度(70-80% confluence)、病毒稀释液(Opti-MEM I)、polybrene浓度(5 μg/mL)、转导时间(18小时) 阅读提示:Methods 2.2 |
| 神经分化 | 分化培养基(Neurobasal PLUS + B27 PLUS supplement)、分化时间(12天) 阅读提示:Methods 2.2 |
| RT-qPCR | 内参基因(RPS17)、引物序列、反应程序(37°C 15min RT, 95°C 10min, 40 cycles of 95°C 10s, 60°C 30s, 72°C 30s)、RNA量(15 ng/反应) 阅读提示:Methods 2.3 |
| GAD67蛋白检测 | 一抗(anti-GAD67,1:250)、二抗(1:1000)、固定和透化条件(4% PFA,0.3% Triton X-100)、细胞数量(10000个) 阅读提示:Methods 2.4 |
| GABA释放分析 | ELISA试剂盒(CEA900Ge)、低钾和高钾刺激条件、检测波长(450 nm)、计算方式(高钾-低钾) 阅读提示:Methods 2.5 |