MC5R参与鹅肝脏能量代谢的机制研究

Study on the Mechanism of MC5R Participating in Energy Metabolism of Goose Liver.

作者信息Jinqi Zhang, Ya Xing, Fangbo Li, Ji'an Mu, Tongjun Liu, Jing Ge, Minmeng Zhao, Long Liu, Daoqing Gong, Tuoyu Geng
PMID37239994
发布时间2023-05-12
DOI10.3390/ijms24108648

实验完整度

包含动物模型(过量饲喂、禁食/重饲)、原代肝细胞培养、体外因子处理、基因过表达与敲低、转录组测序及qPCR/免疫印迹验证等多层级实验。

主要模型

朗德鹅胚胎及成体肝脏 鹅原代肝细胞 过量饲喂模型(朗德鹅) 禁食/重饲模型(朗德鹅)

重点核对

MC5R在过量饲喂和禁食/重饲模型中的表达变化(RT-qPCR、免疫印迹) 葡萄糖、油酸、甲状腺素处理鹅原代肝细胞的浓度和时间(14小时) MC5R过表达和敲低验证下游基因的调控关系 转录组测序分析MC5R过表达后DEGs及其富集的通路

摘要

营养和能量水平对动物的生长、生产性能、疾病发生和健康恢复有重要影响。先前的研究表明,黑皮质素5受体(MC5R)主要参与动物外分泌腺功能、脂质代谢和免疫反应的调节。然而,MC5R如何参与动物的营养和能量代谢尚不清楚。为此,广泛使用的动物模型,包括过量饲喂模型和禁食/重饲模型,可以提供有效的工具。在本研究中,首先在这些模型中测定了MC5R在鹅肝脏中的表达。然后用营养/能量代谢相关因子(葡萄糖、油酸和甲状腺素)处理鹅原代肝细胞,随后测定MC5R基因的表达。此外,在鹅原代肝细胞中过表达MC5R,然后通过转录组分析鉴定受MC5R调控的差异表达基因(DEGs)和通路。最后,在体内和体外模型中也鉴定了部分可能受MC5R调控的基因,并用于预测可能的调控网络(使用蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)程序)。数据显示,过量饲喂和重饲均抑制了鹅肝脏中MC5R的表达,而禁食则诱导了MC5R的表达。葡萄糖和油酸可以诱导鹅原代肝细胞中MC5R的表达,而甲状腺素可以抑制它。MC5R的过表达显著影响了1381个基因的表达,富集的DEGs通路主要包括氧化磷酸化、粘着斑、ECM-受体相互作用、谷胱甘肽代谢和MAPK信号通路。有趣的是,一些通路与糖脂代谢有关,包括氧化磷酸化、丙酮酸代谢、柠檬酸循环等。使用体内和体外模型,证明了一些DEGs(包括ACSL1、PSPH、HMGCS1、CPT1A、PACSIN2、IGFBP3、NMRK1、GYS2、ECI2、NDRG1、CDK9、FBXO25、SLC25A25、USP25和AHCY)的表达与MC5R的表达相关,表明这些基因可能介导了MC5R在这些模型中的生物学作用。此外,PPI分析表明,选定的下游基因,包括GYS2、ECI2、PSPH、CPT1A、ACSL1、HMGCS1、USP25和NDRG1,参与了由MC5R调控的蛋白质-蛋白质相互作用网络。总之,MC5R可能通过多种途径,包括与糖脂代谢相关的途径,介导营养和能量水平变化引起的鹅肝细胞的生物学效应。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
MC5R如何参与鹅肝脏的营养和能量代谢?
核心机制
MC5R可能通过多条通路(尤其是糖脂代谢相关通路,如氧化磷酸化、柠檬酸循环、MAPK信号通路等)介导营养和能量水平变化引起的生物学效应,且通过PKA相关网络调控下游基因。
主要证据
体内模型(过量饲喂和禁食/重饲)和体外原代肝细胞处理表明MC5R表达受葡萄糖、油酸、甲状腺素调控;MC5R过表达和敲低影响下游基因表达;转录组及PPI分析揭示其参与糖脂代谢通路。
研究意义
揭示MC5R在能量代谢中的作用,为通过调整营养或能量水平改善鹅生产性能提供理论参考。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

组织表达谱分析

确定MC5R在鹅胚胎不同组织中的表达分布

收集23天朗德鹅胚胎的胸肌、腿肌、心脏、肝脏、小肠、脂肪和皮肤组织,提取RNA进行RT-qPCR检测MC5R mRNA表达。

2

动物模型验证MC5R表达

探究过量饲喂和禁食/重饲条件下MC5R在鹅肝脏中的表达变化

分别对朗德鹅进行过量饲喂和禁食/重饲处理,收集肝脏组织,使用RT-qPCR和免疫印迹检测MC5R的mRNA和蛋白水平。

3

体外因子处理实验

检测营养/能量相关因子对鹅原代肝细胞MC5R表达的影响

分离鹅原代肝细胞,分别用不同浓度的葡萄糖、油酸钠和甲状腺素钠处理14小时,检测MC5R mRNA表达。

4

MC5R过表达及转录组分析

鉴定MC5R过表达影响的基因及通路

在鹅原代肝细胞中转染MC5R过表达载体或空载体,36小时后进行转录组测序,分析差异表达基因及其富集的GO和KEGG通路。

5

MC5R敲低验证下游基因

验证MC5R对选定下游基因表达的调控作用

在鹅原代肝细胞中转染siMC5R或阴性对照siRNA,36小时后检测MC5R及下游基因的表达。

6

体内外模型验证下游基因表达

验证下游基因在体内模型和体外处理中的表达变化及其与MC5R的关联

在过量饲喂模型、禁食/重饲模型以及葡萄糖处理的原代肝细胞中,检测选定下游基因的表达。

7

PPI网络分析

预测MC5R及其下游基因的蛋白质-蛋白质相互作用网络

将MC5R、PKA及选定的下游基因输入STRING数据库进行PPI分析,构建调控网络。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Solarbio--
表皮生长因子Solarbio--
葡萄糖----
油酸钠----
甲状腺素钠----
jetPRIME转染试剂Polyplus--
RNA-easy 提取试剂Vazyme--
HiScript III RT SuperMix qPCR逆转录试剂盒(+gDNA去除)Vazyme--
AceQ qPCR SYBR Green Master MixVazyme--
RIPA裂解液Solarbio--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
SDS-PAGE上样缓冲液(5×)NCM Biotech--
BeyoGel SDS-PAGE预制胶(12%)Beyotime--
PVDF膜(0.45 µm)Millipore--
快速封闭液NCM Biotech--
MC5R抗体R&D SystemsMAB8205
α-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2144
GAPDH抗体Biossbsm-33033M
TRIzol试剂----
Illumina测序平台Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物实验
过量饲喂模型:65日龄雄性朗德鹅,对照组自由采食,过量饲喂组人工饲喂24天,n=12,第12天和第24天每组采6只;禁食/重饲模型:10日龄朗德鹅,对照组自由采食,禁食组禁食24小时,重饲组禁食24小时后重饲2小时,n=8
阅读提示:详见Methods 4.2节
原代肝细胞处理
葡萄糖浓度0、50、100 mM;油酸钠浓度0、0.125、0.25 mM;甲状腺素钠浓度0、0.1、0.3 μM;处理时间14小时;细胞密度5×10^6细胞/孔
阅读提示:详见Methods 4.3节
基因过表达和敲低
过表达载体pcDNA3.1;siRNA序列(siMC5R和阴性对照);转染试剂jetPRIME;转染时间36小时
阅读提示:详见Methods 4.4节
转录组测序
Illumina平台PE150测序;DEGs筛选标准p-adj<0.05;GO/KEGG富集分析使用ClusterProfiler R包
阅读提示:详见Methods 4.7节
PPI分析
STRING数据库版本及输入基因列表(PKA、MC5R及下游基因)
阅读提示:详见Methods 4.8节