分离培养前脂肪细胞并诱导分化
建立体外脂肪生成模型,验证miR136在脂肪生成过程中的表达模式
从绵羊腹股沟皮下白色脂肪组织分离前脂肪细胞,在含DMEM/F12、10% FBS和1%青霉素-链霉素的完全培养基中培养,细胞过度生长后依次加入诱导剂1(含胰岛素、地塞米松、IBMX)处理48小时和诱导剂2(含胰岛素)处理48小时,随后换用完全培养基继续培养。
miR136 regulates proliferation and differentiation of small tail han sheep preadipocytes.
包含细胞模型(前脂肪细胞、293T细胞)体外实验,功能验证(脂滴、TG含量)和机制验证(双荧光素酶报告基因、Western blot)
小尾寒羊皮下白色脂肪组织前脂肪细胞 293T细胞
miR136 mimics/inhibitor/NC转染浓度及时间(6μL转染,48h检测) 诱导分化方案(诱导剂1处理48h,诱导剂2处理48h) PPARGC1B 3'UTR野生型和突变型荧光素酶报告基因 PPARGC1B siRNA敲低验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立体外脂肪生成模型,验证miR136在脂肪生成过程中的表达模式
从绵羊腹股沟皮下白色脂肪组织分离前脂肪细胞,在含DMEM/F12、10% FBS和1%青霉素-链霉素的完全培养基中培养,细胞过度生长后依次加入诱导剂1(含胰岛素、地塞米松、IBMX)处理48小时和诱导剂2(含胰岛素)处理48小时,随后换用完全培养基继续培养。
确定miR136在前脂肪细胞增殖和分化过程中的表达变化
在诱导分化的第2、4、6、8、10天提取总RNA,通过qPCR检测miR136表达水平。结果显示miR136水平在增殖期(2d-4d)升高,在分化期(4d-6d)下降,成熟后(8d)再次升高。
验证miR136对前脂肪细胞增殖和分化的功能作用
将miR136 mimics、inhibitor或NC转染到前脂肪细胞,48小时后通过油红O染色、甘油三酯含量和脂质含量检测评估分化程度。miR136 mimics减少脂滴形成、脂质含量和甘油三酯积累,miR136 inhibitor则相反,表明miR136促进增殖但抑制分化。
验证PPARGC1B是否为miR136的直接靶基因
通过生物信息学预测miR136与PPARGC1B 3'UTR的结合位点,并构建野生型和突变型双荧光素酶报告基因载体,共转染293T细胞和miR136 mimics/inhibitor/NC,检测荧光素酶活性。结果显示miR136 mimics降低野生型报告基因活性,但对突变型无影响,miR136 inhibitor则相反,证明miR136直接结合PPARGC1B 3'UTR。
探究miR136通过PPARGC1B调控PPARγ和C/EBPα表达的机制
通过qPCR和Western blot检测miR136 mimics/inhibitor处理的前脂肪细胞和293T细胞中PPARγ和C/EBPα的表达水平。miR136 mimics降低PPARGC1B表达同时降低PPARγ和C/EBPα表达,miR136 inhibitor则相反;PPARGC1B siRNA敲低逆转了miR136 inhibitor的效果,证实miR136通过PPARGC1B调控PPARγ和C/EBPα。
探究miR136促进前脂肪细胞增殖是否通过升高IGF1表达
通过qPCR和Western blot检测miR136 mimics/inhibitor处理的前脂肪细胞和293T细胞中IGF1的表达。结果显示miR136 mimics显著升高IGF1 mRNA和蛋白表达,表明miR136通过升高IGF1促进增殖。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞分离与培养 | II型胶原酶 | Sangon Biotech | A004174 |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 诱导分化 | 胰岛素 | Sigma | I5523 |
| 地塞米松 | Sigma | D4902 | |
| 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 | Sigma | I5879 | |
| 油红O染色 | 油红O染色试剂盒 | Sangon Biotech | E607319 |
| 甘油三酯检测 | EnzyChrom甘油三酯检测试剂盒 | BioAssay System | ETGA-200 |
| 细胞转染 | FuGene HD转染试剂 | Promega | E2311 |
| RNA干扰 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Invitrogen | 13778030 |
| 载体构建与荧光素酶检测 | GP-miRGLO载体 | GenePharma | C08006 |
| 荧光素酶检测 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Beyotime | RG042M |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | 15596018 |
| RNA浓度测定 | Quawell Q5000分光光度计 | Quawell Technology | Q5000 |
| RT-qPCR | PrimeScript RT试剂盒 | -- | -- |
| LightCycler 480 SYBR Green I Master | Roche Applied Science | 04707516001 | |
| 蛋白定量与Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0012S |
| Western blot | PPARγ抗体 | Bioss | bs-0530R |
| C/EBPα抗体 | Bioss | bs-24540R | |
| IGF1抗体 | Bioss | bs-0014R | |
| PPARGC1B抗体 | Bioss | bs-7534R | |
| β-actin抗体 | Bioss | bsm-33036M | |
| 辣根过氧化物酶标记的二抗 | -- | -- | |
| 增强化学发光底物 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞分离与培养 | 细胞来源:1月龄雄性小尾寒羊腹股沟皮下白色脂肪组织;消化条件:0.2%胶原酶II,37°C,80分钟;培养条件:DMEM/F12,10% FBS,1%青霉素-链霉素,37°C,5% CO2 阅读提示:Materials and methods: Cell isolation, culture, and differentiation |
| 诱导分化 | 诱导剂1(10 mg/ml胰岛素、1.0 mM地塞米松、0.5 mM IBMX)处理48小时;诱导剂2(10 mg/ml胰岛素)处理48小时;随后换用完全培养基 阅读提示:Materials and methods: Cell isolation, culture, and differentiation |
| 细胞转染 | 转染剂量:miR136 mimics/inhibitor/NC各6 μL,FuGene HD转染试剂10 μL;检测时间:转染后48小时 阅读提示:Materials and methods: Cell transfection |
| 双荧光素酶报告基因 | 293T细胞共转染GP-miRGLO载体(野生型/突变型)和miR136 mimics/inhibitor/NC;转染试剂及剂量;荧光素酶检测试剂盒 阅读提示:Materials and methods: Vector construction and luciferase assays |
| RNA干扰 | PPARGC1B siRNA和阴性对照(GenePharma,A10001)转染试剂Lipofectamine RNAiMAX(Invitrogen,13778030);转染条件按说明书 阅读提示:Materials and methods: RNA interference |
| qPCR检测 | 引物序列;内参(GAPDH、U6);反应条件(40个循环:95°C 5 min,95°C 10s,60°C 15s,72°C 20s);2^-ΔΔCt法 阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and qPCR; Table 1 |