在小鼠模型中通过CRISPR激活筛选鉴定肝细胞癌生长和转移的驱动因子

CRISPR activation screening in a mouse model for drivers of hepatocellular carcinoma growth and metastasis.

作者信息Bei Zhang, Zhiyao Ren, Hongmei Zheng, Meilan Lin, Guobing Chen, Oscar Junhong Luo, Guodong Zhu
PMID36843840
期刊iScience
发布时间2023-02
DOI10.1016/j.isci.2023.106099

实验完整度

包含体内CRISPRa筛选、体外功能验证(CCK8、Transwell)、临床样本分析(TCGA、TMA)和免疫浸润分析,多个独立证据层级。

主要模型

HEPG2细胞 HUH7细胞 BALB/c裸鼠原位肝癌模型 HCC临床组织样本

重点核对

体内筛选使用HEPG2细胞,移植细胞数为4×10^6,接种于免疫缺陷BALB/c裸鼠肝内,7周后检测转移 体外验证使用HEPG2和HUH7细胞,transwell实验检测24小时(过表达)或48小时(siRNA)的侵袭 siRNA转染使用6 μL siRNA预混100 μL Opti-MEM,加入8 μL Lipo8000,转染5小时后更换培养基 使用TCGA数据(371例HCC和50例癌旁)进行Kaplan-Meier生存分析和Cox回归 免疫组化检测80例HCC组织中MYADML2蛋白表达,使用抗体bs-19119R(Bioss)

摘要

肝细胞癌(HCC)仍然是全球癌症相关死亡的主要原因。在这里,我们描述了一个通过CRISPR激活(CRISPRa)文库在体内进行全基因组筛选,以寻找HCC生长和转移的驱动因子。病理结果显示,经CRISPRa诱变后的细胞群在肺部形成了高度转移性肿瘤。体外验证表明,XAGE1B、PLK4、LMO1和MYADML2的过表达促进了细胞增殖和侵袭,而其抑制则抑制了HCC的进展。此外,我们报道了在HCC中高MYADML2蛋白水平表现出更差的总生存期,并且在60岁以上的患者中显著增加。此外,高MYADML2降低了对化疗药物的敏感性。有趣的是,免疫细胞浸润分析显示,树突状细胞、巨噬细胞等可能在HCC进展中发挥重要作用。总之,我们提供了一种在体内筛选与HCC侵袭和转移相关的功能基因的路线图,这可能为HCC的治疗提供新的潜在靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
哪些基因的激活能够驱动肝细胞癌的生长和转移?
核心机制
XAGE1B、PLK4、LMO1和MYADML2的过表达促进HCC细胞增殖和侵袭,其高表达与不良预后相关,可能涉及免疫微环境中的M0巨噬细胞、单核细胞和树突状细胞等。
主要证据
通过体内CRISPRa筛选得到7个候选基因,体外功能实验(CCK8、Transwell)证实XAGE1B、PLK4、LMO1和MYADML2促进增殖和侵袭,siRNA抑制则相反;TCGA和TMA分析显示高表达与预后不良相关。
研究意义
为HCC的临床诊断、治疗和预后评估提供新的潜在生物学靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内CRISPRa筛选

鉴定促进HCC生长和转移的驱动基因。

使用人全基因组SAM2文库转导HEPG2细胞,构建原位肝癌模型,7周后分析肿瘤和肺转移灶中的sgRNA丰度。

2

生物信息学分析

从筛选结果中识别关键基因和通路。

对sgRNA进行深度测序,通过比较肺和肝中的sgRNA丰度划分基因类型,并进行KEGG和GO富集分析。

3

临床样本分析

评估候选基因的表达和预后价值。

利用TCGA数据库分析候选基因在HCC中的表达和生存关联,并用免疫组化验证MYADML2蛋白表达。

4

体外功能验证

验证候选基因对HCC细胞增殖和侵袭的影响。

在HEPG2和HUH7细胞中分别过表达或敲低候选基因,通过CCK8和Transwell实验检测细胞增殖和侵袭能力。

5

免疫浸润分析

探索候选基因与免疫细胞浸润的关系。

使用CIBERSORT分析TCGA数据中15种免疫细胞的比例,并比较高低表达组间的差异。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗MYADML2抗体Biossbs-19119R
抗Vimentin抗体ServicebioGB11192
抗MMP9抗体Biossbs-4593R
抗VEGFa抗体Abcamab1316
抗MYADML2抗体Novus BiologicalsNBP2-85342
抗PLK4抗体AbclonalA9863
抗LMO1抗体AbclonalA7561
抗XAGE1B抗体Novus BiologicalsNB100-262SS
人HCC标本WellbiotechLVC1607
杀稻瘟菌素MDBioD0120601
Hieff TMqPCR SYBR Green Master Mix (LoW Rox Plus)YEASEN11202ES08
胎牛血清Gibco1027-106
MEM培养基Gibco31985070
DMEM培养基HyCloneSH30022-01B
HiPure组织DNA小提试剂盒MagenD3125-02
HiPure凝胶DNA纯化试剂盒MagenD2111-03
高纯度总RNA快速提取试剂盒(柱式)BIOTEKERP1201
CCK8试剂盒BeyotimeC0039
通用病毒浓缩试剂盒BeyotimeC2901M
HEK293T细胞ProcellRRID:CVCL_0063
HEPG2细胞ProcellCL-0103
HUH7细胞ProcellCL-0120
BALB/c裸鼠实验动物中心SCXK (Yue) 2016-0029
CRISPR/Cas9 SAM混合文库质粒Addgene1000000078
MS2-P65-HSF1激活质粒Addgene89308
pCMV-VSV-G质粒GENEROL BIOL--
pMDLg pRRE质粒GENEROL BIOL--
pRSV-Rev质粒GENEROL BIOL--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体内筛选
细胞系HEPG2,移植细胞数4×10^6,小鼠品系BALB/c裸鼠,观察时间7周
阅读提示:STAR★Methods,Animal model;Figure 1A
体外增殖实验
细胞系HEPG2和HUH7,接种5000细胞至96孔板,检测时间点4h、24h、48h、72h
阅读提示:STAR★Methods,Cell proliferation assay;Figure 4
体外侵袭实验
细胞系HEPG2和HUH7,transwell小室,24小时(过表达)或48小时(siRNA)检测
阅读提示:STAR★Methods,Migration assay;Figure 4和5
siRNA转染
siRNA浓度和转染试剂用量(6 μL siRNA,8 μL Lipo8000),转染后5小时更换培养基
阅读提示:STAR★Methods,siRNA transfection
免疫组化
抗体MYADML2(bs-19119R,1:400),组织样本数80例
阅读提示:STAR★Methods,Immunohistochemistry;Figure 6