胰岛素样生长因子结合蛋白5下调Th17/Treg平衡

Insulin-binding protein-5 down-regulates the balance of Th17/Treg.

作者信息Mengyuan Zhu, Han Han, Lei Hu, Yu Cao, Zhipeng Fan
PMID36389828
发布时间2022-11-01
DOI10.3389/fimmu.2022.1019248

实验完整度

包含体外T细胞分化实验、DSS诱导结肠炎动物模型、流式细胞术、ELISA、IHC、RT-qPCR、16S rRNA测序等多个证据层级,并进行了功能验证和机制验证。

主要模型

CD4+ T细胞 DSS诱导的结肠炎小鼠模型 肠系膜淋巴结细胞

重点核对

体外T细胞分化实验中,抗CD3ε包被浓度1μg/mL,抗CD28浓度2μg/mL 重组IGFBP5处理浓度和处理时间(文中未明确说明浓度,处理3天) ERK抑制剂PD98059和JNK抑制剂SP600125浓度均为20μM DSS诱导结肠炎模型:3% DSS饮水7天,IGFBP5腹腔注射0.5μg/只,分别在第3天和第5天 每组5只小鼠,实验重复三次

摘要

炎症反应在组织稳态中起着至关重要的作用。我们之前的研究表明胰岛素样生长因子结合蛋白5(IGFBP5)能增强炎症条件下组织缺损的再生,但IGFBP5在控制炎症和调节免疫反应中的功能仍不清楚。在本研究中,我们研究了IGFBP5对体外T细胞免疫应答的调节作用,以及通过使用葡聚糖硫酸钠(DSS)诱导的小鼠结肠炎维持体内Th17/Treg平衡的作用。结果表明,IGFBP5抑制CD4+ T细胞向Th17亚群分化,同时促进其向Treg亚群分化。进一步的动物实验结果表明,重组IGFBP5逆转了Th17/Treg的失衡,并减轻了DSS诱导的结肠炎的严重程度。IGFBP5治疗后,结肠炎小鼠的炎症结肠组织和肠系膜淋巴结中Th17细胞百分比降低,Treg细胞百分比升高。此外,血清中的促炎细胞因子如TNF-α、IL-1β和IFN-γ在IGFBP5处理后受到抑制。此外,IGFBP5调节Th17/Treg平衡的功能可被ERK或JNK通路抑制剂抑制。总之,这些数据表明IGFBP5可通过ERK或JNK通路调节Th17/Treg平衡。我们的研究结果为IGFBP5在炎症性疾病中的应用提供了理论基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IGFBP5是否以及如何调节Th17/Treg平衡,从而影响炎症性疾病的进程?
核心机制
IGFBP5通过ERK和JNK通路调节Th17/Treg平衡,即抑制Th17分化并促进Treg分化。
主要证据
体外实验中,IGFBP5处理CD3/CD28激活的CD4+ T细胞后,流式细胞术显示Th17比例降低、Treg比例升高,RT-qPCR显示RORγt表达下降、Foxp3表达上升;体内实验中,DSS诱导结肠炎小鼠经IGFBP5治疗后,肠系膜淋巴结和结肠组织中Th17/Treg平衡恢复,炎症减轻。
研究意义
为IGFBP5在炎症性疾病治疗中的应用提供理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外T细胞分化实验

检测重组IGFBP5对CD4+ T细胞亚群分化的影响

从C57BL/6小鼠肠系膜淋巴结分离初始CD4+ T细胞,用抗CD3/CD28激活,并用重组IGFBP5处理3天,然后进行流式细胞术和RT-qPCR检测。

2

DSS诱导结肠炎模型及IGFBP5治疗

评估IGFBP5对体内结肠炎严重程度和Th17/Treg平衡的影响

将C57BL/6小鼠分为对照组、DSS+PBS组和DSS+IGFBP5组,给予3% DSS饮水7天诱导结肠炎,在第3天和第5天腹腔注射重组IGFBP5或PBS,记录体重、DAI评分,结肠长度和组织病理学评分。

3

流式细胞术检测肠系膜淋巴结Th17/Treg

检测体内IGFBP5治疗对Th17和Treg细胞比例的影响

从小鼠肠系膜淋巴结分离细胞,进行流式染色检测CD4+ IL-17A+ Th17细胞和CD4+ CD25+ Treg细胞比例。

4

结肠组织免疫组化检测

检测结肠组织中RORγt和FOXP3的表达,评估Th17和Treg浸润

收集结肠组织,固定、包埋、切片,进行免疫组化染色检测RORγt和FOXP3的表达,并进行定量分析。

5

血清细胞因子检测

检测血清中促炎细胞因子水平的变化

收集小鼠血清,使用ELISA试剂盒检测TNF-α、IL-1β和IFN-γ的浓度。

6

肠道菌群16S rRNA测序分析

探究IGFBP5对肠道菌群组成和多样性的影响

收集新鲜粪便,提取总DNA,进行16S rDNA基因高保真测序,并分析α多样性、β多样性、门水平和属水平菌群组成。

7

机制研究

探究IGFBP5调节Th17/Treg平衡是否依赖ERK和JNK通路

在体外T细胞分化实验中,加入ERK抑制剂PD98059和JNK抑制剂SP600125预处理1小时,再给予IGFBP5处理,检测Th17和Treg比例的变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基----
胎牛血清----
青霉素和链霉素Gibco--
HEPESGibco--
L-谷氨酰胺Gibco--
MEM非必需氨基酸Sigma-Aldrich--
初始CD4+ T细胞分离试剂盒Miltenyi Biotec130-104-453
LS柱Miltenyi Biotec130-042-401
MidiMACS™分离器Miltenyi Biotec--
抗CD3ϵ抗体Biolegend100302
抗CD28抗体Biolegend102102
FITC抗小鼠CD4抗体Biolegend100406
APC抗小鼠CD25抗体Biolegend101910
PE抗小鼠IL-17A抗体Biolegend506904
APC抗小鼠IFN-γ抗体Biolegend505810
PE抗小鼠IL-4抗体Biolegend504104
Triton X-100Solarbio Life ScienceT8200
抗IGFBP5抗体Proteintech55205-1-AP
抗FOXP3抗体Cell Signaling Technology#12653S
抗RORγt抗体Biossbs-23110R
DAB溶液CwbioCW2069S
小鼠TNF-α预包被ELISA试剂盒Dakewei Bio-engineering1217202
小鼠IL-1β预包被ELISA试剂盒Dakewei Bio-engineering1210122
小鼠IFN-γ预包被ELISA试剂盒Dakewei Bio-engineering1210002
Trizol试剂Invitrogen--
QuantiTect SYBR Green PCR试剂盒Qiagen--
iCycleriQ多色实时PCR检测系统----
重组小鼠IGFBP5蛋白R&D system578-B5-025
PD98059Cell Signaling Technology#9900S
SP600125MCEHY-12041
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外T细胞分化实验
细胞分离:6周龄雄性C57BL/6小鼠的肠系膜淋巴结;激活:抗CD3ε (1μg/mL)包被、抗CD28 (2μg/mL);处理:重组IGFBP5蛋白浓度未明确,处理时间3天;抑制剂:PD98059和SP600125浓度均为20μM,预处理1小时;重复数:n=3。
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry
DSS诱导结肠炎模型
动物:6周龄雄性C57BL/6小鼠;分组:每组5只;模型:3% DSS饮水7天;治疗:IGFBP5腹腔注射0.5μg/只,在第3天和第5天;评估:体重、DAI评分、结肠长度、组织病理学。
阅读提示:Methods: Induction of UC model and treatment
流式细胞术
抗体:CD4、CD25、IL-17A、IFN-γ、IL-4;样本:肠系膜淋巴结细胞和活化的CD4+ T细胞;门控:排除碎片和死细胞。
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry, Results section 'IGFBP5 increased the percentage...'
免疫组化
组织:结肠;固定:4%多聚甲醛;抗原修复:95°C柠檬酸盐缓冲液15分钟;抗体浓度:IGFBP5 1:200, FOXP3 1:400, RORγt 1:500;显色:DAB。
阅读提示:Methods: Immunohistochemistry analysis
ELISA
样本:血清;试剂盒:小鼠TNF-α、IL-1β、IFN-γ预包被ELISA试剂盒;操作:按说明书。
阅读提示:Methods: Enzyme linked immunosorbent assay
16S rRNA测序
样本:新鲜粪便;DNA提取;测序平台:PacBio Sequel;分析:BMKCloud平台。
阅读提示:Methods: Total stool DNA extraction and 16S rDNA gene high-throughput sequencing