CXCR1参与雌性大鼠Walker 256乳腺癌细胞诱导的骨癌痛

CXCR1 participates in bone cancer pain induced by Walker 256 breast cancer cells in female rats.

作者信息Chengfei Xu, Baoxia Zhao, Longsheng Xu, Yahui Wang, Beibei Liu, Miao Xu, Qiuli He, Chaobo Ni, Jie Fu, Min Kong, Xuewu Lin, Huadong Ni, Ming Yao
PMID36227008
期刊Mol Pain
发布时间2022-04-18
DOI10.1177/17448069221135743

实验完整度

包含体内大鼠模型和体外PC12细胞实验,通过siRNA敲低进行功能验证,并检测JAK2/STAT3通路和NLRP3炎症小体蛋白表达,验证机制。

主要模型

Walker 256乳腺癌细胞诱导的雌性SD大鼠骨癌痛模型 PC12细胞系

重点核对

CXCR1特异性siRNA序列:5'- CTAACCTGGTTCACAAGGA -3' 鞘内注射剂量:33 μg in 15 μL,每天一次,连续6天(术后7-12天) PC12细胞转染CXCR1 siRNA或PEX-1-CXCR1过表达质粒,并用IL-8(1 μg/mL)处理 行为学检测:Von Frey测PWT,Catwalk步态分析(参数:最大接触面积、平均强度、最大接触最大强度) 统计方法:行为学用双因素重复测量方差分析,其余用单因素方差分析

摘要

骨癌痛(BCP)是一种临床难以处理的混合性疼痛,涉及炎症和神经病理性疼痛,其机制尚不清楚。CXC趋化因子受体1(CXCR1,IL-8RA)和2(CXCR2,IL-8RB)是白细胞介素8(IL8)的高亲和力受体。根据之前的研究,CXCR2在BCP中星形胶质细胞与神经元之间起着关键作用,而CXCR1的作用仍不清楚。本研究的目的是探讨CXCR1在BCP中的作用。我们发现CXCR1在脊髓背角表达增加。鞘内注射CXCR1 siRNA有效减轻了大鼠的机械性异常性疼痛和疼痛相关行为。结果发现,CXCR1主要与神经元共定位。鞘内注射CXCR1-siRNA降低了磷酸化JAK2/STAT3蛋白水平和NLRP3炎症小体(NLRP3、caspase1和IL-1β)水平。此外,体外细胞学实验证实了这一结论。研究结果表明,脊髓趋化因子受体CXCR1的激活通过JAK2/STAT3信号通路和NLRP3炎症小体(NLRP3、caspase1和IL-1β)介导BCP。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CXCR1是否参与骨癌痛(BCP)的发生发展,及其潜在机制。
核心机制
脊髓趋化因子受体CXCR1的激活通过JAK2/STAT3信号通路和NLRP3炎症小体(NLRP3、caspase1和IL-1β)介导BCP。
主要证据
在Walker 256细胞诱导的BCP大鼠模型中,CXCR1在脊髓背角表达增加,主要与神经元共定位;鞘内注射CXCR1 siRNA减轻机械性异常性疼痛并抑制JAK2/STAT3磷酸化和NLRP3炎症小体蛋白水平;体外PC12细胞实验证实CXCR1激活依赖IL-8。
研究意义
CXCR1受体可能是治疗Walker 256诱导的BCP的新靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

BCP模型构建与验证

建立并验证Walker 256乳腺癌细胞诱导的大鼠骨癌痛模型。

将Walker 256乳腺癌细胞(10 μL,1×10^6/mL)注入雌性SD大鼠左侧胫骨骨髓腔,或注入热灭活细胞作为假手术组。模型验证包括行为学检测(Von Frey测PWT)、CT成像和H&E染色。

2

CXCR1表达及细胞定位检测

检测BCP大鼠脊髓背角CXCR1的表达变化及其细胞类型定位。

通过免疫荧光、RT-PCR和Western blot检测CXCR1表达;免疫荧光双标使用NeuN、Iba-1和GFAP标记神经元、小胶质细胞和星形胶质细胞,确定CXCR1共定位。

3

CXCR1功能验证(siRNA敲低)

验证下调CXCR1是否缓解BCP大鼠的机械性异常性疼痛和步态异常。

术后7-12天鞘内注射CXCR1 siRNA或对照siRNA,检测PWT和Catwalk步态参数,并通过Western blot确认CXCR1蛋白下调。

4

机制验证(JAK2/STAT3通路)

验证CXCR1是否通过JAK2/STAT3信号通路介导BCP。

检测BCP大鼠脊髓中p-JAK2、JAK2、p-STAT3、STAT3的表达,并在CXCR1-siRNA处理后观察变化;体外PC12细胞中过表达CXCR1或siRNA敲低后给予IL-8处理,检测相关蛋白。

5

机制验证(NLRP3炎症小体)

验证CXCR1是否通过NLRP3炎症小体介导BCP。

检测BCP大鼠脊髓和PC12细胞中NLRP3、caspase1、IL-1β蛋白水平,并在CXCR1-siRNA处理后观察变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Walker 256乳腺癌细胞----
SOMATOM CT扫描仪Siemens--
von Frey纤维丝Biological Medicine Institute, Medical Science AcademyBME-404
PC12细胞Chinese Academy of Sciences Cell Bank--
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
Lipofectamine 2000Invitrogen1168019
IL-8----
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒Jiangsu Biyuntian Biotechnology Institute--
PVDF膜----
抗CXCR1抗体Biossbs-1009R
抗p-JAK2抗体Cell Signaling3771
抗JAK2抗体Cell Signaling3230
抗p-STAT3抗体AffinityAF3293
抗STAT3抗体Proteintech10253-2-AP
抗GAPDH抗体AffinityAF7021
Trizol试剂----
PrimeScript RT试剂盒TaKaRa--
PowerUp SYBR Green预混液Thermo Fisher--
StepOnePlus实时PCR仪Applied Biosystems--
大鼠IL-1β ELISA试剂盒Elabscience--
大鼠NLRP3 ELISA试剂盒USCNK--
大鼠caspase1 ELISA试剂盒USCNK--
DAPIInvitrogen--
抗NeuN抗体NOVUSNBP1-92693
抗Iba-1抗体Abcamab5076
抗GFAP抗体SigmaC9205
CXCR1封闭肽Biossbs-1009P
488驴抗兔二抗Abcamab150073
594驴抗小鼠二抗Abcamab150108
594驴抗山羊二抗Abcamab150132
GraphPad Prism 6.0GraphPad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
BCP模型构建
动物品系、性别、体重;细胞类型和浓度(1×10^6/mL);注射体积(10 μL);麻醉剂量(50 mg/kg 戊巴比妥钠);分组(naïve, sham, BCP);行为学检测时间点。
阅读提示:Methods:Animals 和 BCP model
CXCR1表达检测
检测时间点(6、12、18天);样本量(n=4);RT-PCR引物序列;Western blot抗体稀释比例和来源;免疫荧光抗体组合。
阅读提示:Methods:Western blot, RT-PCR, Immunofluorescence
CXCR1功能验证(siRNA敲低)
siRNA序列(5'- CTAACCTGGTTCACAAGGA -3');给药方式(鞘内注射);剂量(33 μg/15 μL);给药时间(术后7-12天,每天一次);对照组(si-control);行为学检测时间点。
阅读提示:Methods:Intrathecal siRNA transfection;Figure 5
机制验证(JAK2/STAT3通路)
蛋白检测时间点;抗体列表;体内外实验条件;IL-8处理浓度(1 μg/mL);PC12细胞转染条件。
阅读提示:Methods:Western blot, Cell culture, siRNA and plasmid transfection;Figure 6
机制验证(NLRP3炎症小体)
蛋白检测方法(Western blot, ELISA);ELISA试剂盒来源;样本量(n=3/4);体内外实验条件。
阅读提示:Methods:ELISA, Western blot;Figure 7