视网膜色素上皮细胞中的HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴促进视网膜下纤维化并加剧脉络膜新生血管形成

The HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho axis in retinal pigment epithelial cells promotes subretinal fibrosis and exacerbates choroidal neovascularization.

作者信息Laiqing Xie, Ying Wang, Quan Li, Xiaoyan Ji, Yuanyuan Tu, Shu Du, Hui Lou, Xinwei Zeng, Linling Zhu, Ji Zhang, Manhui Zhu
PMID33438362
发布时间2021-02
DOI10.1111/jcmm.16272

实验完整度

包含体外细胞实验(CHX追踪、Western blot、qRT-PCR、双荧光素酶报告、ChIP)和体内小鼠激光诱导CNV模型,并进行功能验证(EMT标志物、CNV渗漏和面积、纤维化面积)和机制验证(p53结合位点、miRNA-34a靶向Klotho)。

主要模型

ARPE-19细胞系(人RPE细胞系) C57BL/6J小鼠激光诱导CNV模型

重点核对

ARPE-19细胞缺氧处理条件:95% N2/5% CO2,常氧为95% O2/5% CO2 HIF-1α抑制剂地高辛浓度:0.5 μmol/L,处理24小时 miRNA-34a mimic浓度:40 nM,处理24小时 小鼠CNV模型:激光光凝诱导,分组包括正常、CNV 7天、CNV 7天+DMSO、CNV 7天+地高辛(口服2 mg/kg,7天)、CNV 7天+AAV-p53突变体(玻璃体腔注射,约3 μL,3×10^10病毒颗粒/mL)、CNV 7天+miRNA-34a抑制剂(玻璃体腔注射,1 μg)、CNV 7天+AAV-Klotho全长质粒(玻璃体腔注射,2 μL,5×10^10病毒颗粒/mL) 统计方法:Student's t检验或单因素方差分析(Tukey事后检验),P<0.05表示显著

摘要

湿性年龄相关性黄斑变性(wAMD)以脉络膜新生血管(CNV)为特征,是发达国家老年人不可逆性视力丧失的主要原因。由视网膜色素上皮(RPE)细胞的上皮-间质转化(EMT)介导的视网膜下纤维化,导致CNV患者抗血管内皮生长因子(VEGF)药物治疗失败。在缺氧条件下,缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)增加p53的稳定性和激活,从而激活microRNA-34a(miRNA-34a)的转录以促进纤维化。此外,Klotho是miRNA-34a的靶基因,可抑制纤维化。本研究旨在探讨HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴在视网膜下纤维化和CNV中的作用。缺氧诱导的HIF-1α促进ARPE-19细胞(人RPE细胞系)中p53的稳定性、磷酸化和核转位。HIF-1α依赖的p53激活在缺氧后上调ARPE-19细胞中miRNA-34a的表达。此外,缺氧诱导的p53依赖性miRNA-34a抑制ARPE-19细胞中Klotho的表达。另外,HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴促进缺氧诱导的ARPE-19细胞EMT。在体内,阻断HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴可减轻小鼠激光诱导的CNV和视网膜下纤维化的形成。总之,RPE细胞中的HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴促进视网膜下纤维化,从而加重CNV的形成。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴在视网膜下纤维化和CNV形成中的作用是什么?
核心机制
缺氧条件下,HIF-1α促进p53的稳定性、磷酸化和核转位,p53转录激活miRNA-34a,miRNA-34a直接结合Klotho mRNA的3'UTR抑制其表达,从而促进RPE细胞的EMT,导致视网膜下纤维化和CNV加重。
主要证据
体外实验显示缺氧诱导的HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴促进ARPE-19细胞EMT;体内实验显示阻断该轴减轻小鼠激光诱导CNV的渗漏、面积、体积和视网膜下纤维化。
研究意义
该研究为湿性AMD的治疗提供了新策略,靶向HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴可能减轻视网膜下纤维化,改善抗VEGF治疗的效果。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证缺氧诱导HIF-1α对p53稳定性、磷酸化和核转位的影响

确定缺氧条件下HIF-1α是否调节p53的稳定性和激活。

ARPE-19细胞在常氧或缺氧条件下培养,使用CHX追踪p53蛋白半衰期;Western blot检测HIF-1α、p-p53(S15、S20、S46)和p53水平;分离核质蛋白检测p53的核转位。

2

验证HIF-1α依赖的p53激活上调miRNA-34a表达

探讨HIF-1α/p53信号是否调控miRNA-34a的转录表达。

qRT-PCR检测miRNA-34a和pri-miRNA-34a水平;构建miRNA-34a启动子荧光素酶报告基因,转染p53或p53突变体;ChIP-qPCR检测p53结合miRNA-34a启动子区域。

3

验证miRNA-34a直接靶向Klotho并抑制其表达

确定miRNA-34a是否通过结合Klotho 3'UTR抑制Klotho表达。

Western blot检测Klotho蛋白水平;qRT-PCR检测Klotho mRNA水平;双荧光素酶报告实验验证miRNA-34a与Klotho 3'UTR的结合。

4

验证HIF-1α/p53/miRNA-34a/Klotho轴在缺氧诱导的ARPE-19细胞EMT中的作用

评估该轴是否促进RPE细胞的EMT。

Western blot检测间充质标志物fibronectin、N-cadherin和vimentin的表达,并通过地高辛、p53突变体、miRNA-34a抑制剂和Klotho过表达等手段验证轴的作用。

5

体内验证阻断该轴对小鼠激光诱导CNV的缓解作用

探讨该轴在体内对CNV形成和视网膜下纤维化的影响。

构建小鼠激光诱导CNV模型,分组给予地高辛、AAV-p53突变体、miRNA-34a抑制剂或AAV-Klotho全长质粒;通过FFA和ICGA评估CNV渗漏和面积;Western blot检测相关蛋白;荧光染色检测视网膜下纤维化面积和CNV体积。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清Sigma-AldrichF8687
青霉素/链霉素----
CO2培养箱Thermo Fisher ScientificModel 3130
Nutlin-3a----
RIPA裂解液Abcamab156034
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物Sigma-AldrichPPC1010
SDS-PAGE凝胶Thermo Fisher ScientificNP0326BOX
PVDF膜Thermo Fisher Scientific88518
抗HIF-1α抗体Abcamab82832
抗p-p53 (S15)抗体Abcamab1431
抗p-p53 (S20)抗体Thermo Fisher ScientificPA5-104741
抗p-p53 (S46)抗体MerckSAB4504503
抗p53抗体Thermo Fisher ScientificMA1-12549
抗Klotho抗体Novus BiologicalsNBP1-76511
抗纤连蛋白抗体Abcamab2413
抗N-钙黏蛋白抗体Abcamab76057
抗波形蛋白抗体Abcamab137321
抗GAPDH抗体Sigma-AldrichG9545
抗组蛋白H3抗体Abcamab1791
HRP标记的山羊抗兔IgGSigma-Aldrich12-34
HRP标记的山羊抗小鼠IgGSigma-AldrichA5278
NE-PER核质提取试剂Thermo Fisher Scientific78833
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher ScientificL3000008
pGL3基础荧光素酶载体PromegaE1751
海肾荧光素酶检测系统PromegaE2810
p-MIR-REPORT质粒InvitrogenAM5795
抗p53单克隆抗体(DO-1)Abcamab1101
免疫前小鼠IgGAbcamab188776
EvaGreen染料Bio-Rad--
AAV-p53Vector BiolabsAAV-226227
AAV-p53突变体(S15A, S20A, S46A)Vector Biolabs--
荧光素AK-FLUORAkorn17478025310
吲哚菁绿Sigma-Aldrich1340009
视网膜成像显微镜Phoenix Research LaboratoriesMicron IV
Alexa Fluor 488标记的IB4Thermo Fisher ScientificI21411
Alexa Fluor 594标记的I型胶原抗体Bioss Incbs-10423R-A594

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与缺氧处理
ARPE-19细胞培养条件(DMEM含谷氨酰胺、10% FBS、50 U/mL青霉素/50 mg/mL链霉素);缺氧条件(95% N2/5% CO2)和常氧条件(95% O2/5% CO2)
阅读提示:Materials and Methods 2.1
CHX追踪实验
CHX浓度(10 μg/mL,但图注中为100 μg/mL,存在不一致);时间点(0, 15, 30, 60分钟);地高辛处理条件(0.5 μmol/L,24小时)
阅读提示:Materials and Methods 2.2,Figure 1A
Western blot
蛋白上样量(80 μg/泳道);SDS-PAGE浓度(10%);一抗稀释度(未明确说明)
阅读提示:Materials and Methods 2.3
qRT-PCR
内参(U6 snoRNA用于miRNA-34a和pri-miRNA-34a;GAPDH用于Klotho);2-ΔΔCt法计算相对表达
阅读提示:Materials and Methods 2.5
双荧光素酶报告实验
报告质粒用量(500 ng);内参质粒用量(10 ng);转染试剂(Lipofectamine 3000);检测时间(转染后24小时)
阅读提示:Materials and Methods 2.6
ChIP实验
p53抗体用量(4 μg);阴性对照(小鼠IgG);qPCR方法(EvaGreen染料)
阅读提示:Materials and Methods 2.7
小鼠激光诱导CNV模型
小鼠品系(C57BL/6J,雄性,6-9周龄);激光光凝方法(未提供具体参数);分组(正常、CNV 7天、CNV 7天+DMSO、CNV 7天+地高辛、CNV 7天+AAV-p53突变体、CNV 7天+miRNA-34a抑制剂、CNV 7天+AAV-Klotho全长质粒);给药剂量和时间(地高辛2 mg/kg口服7天;AAV-p53突变体玻璃体注射约3 μL,3×10^10病毒颗粒/mL;miRNA-34a抑制剂1 μg;AAV-Klotho全长质粒2 μL,5×10^10病毒颗粒/mL);注射时间(第4天);取材时间(第7天)
阅读提示:Materials and Methods 2.8, Figure 5
眼底血管造影
荧光素钠剂量(5 μg/g)和ICG剂量(0.075 μg/g);腹腔注射;图像采集时间(注射后5和10分钟)
阅读提示:Materials and Methods 2.9
脉络膜平铺片荧光染色
IB4和I型胶原抗体的浓度(1 mg/mL)和孵育条件(4°C,24小时)
阅读提示:Materials and Methods 2.10
统计分析
数据表示(mean ± SEM);统计方法(Student's t检验或单因素方差分析+Tukey事后检验);显著性水平(P<0.05)
阅读提示:Materials and Methods 2.11