通过慢病毒介导的RNA干扰靶向SPARC抑制宫颈癌细胞生长和转移

Targeting SPARC by lentivirus-mediated RNA interference inhibits cervical cancer cell growth and metastasis.

作者信息Jie Chen, Dehuan Shi, Xiaoyan Liu, Shuang Fang, Jie Zhang, Yueran Zhao
PMID23050783
发布时间2012-10-10
DOI10.1186/1471-2407-12-464

实验完整度

高

包含体外细胞系亚克隆分离、功能实验(增殖、凋亡、迁移侵袭)、体内裸鼠移植瘤和肺转移模型,并通过qRT-PCR、Western blot和流式细胞术验证机制。

主要模型

HeLa-1高侵袭亚克隆 SiHa-1高侵袭亚克隆 HeLa-25低侵袭亚克隆 SiHa-23低侵袭亚克隆 BALB/C-nu/nu裸鼠异种移植和尾静脉转移模型

重点核对

细胞系:HeLa和SiHa及其亚克隆 SPARC shRNA靶序列:5′-AACAAGACCTTCGACTCTTCC-3′ 慢病毒感染MOI=60,感染时间24小时 细胞周期分析中PI染色浓度50 μg/ml和RNase 250 μg/ml 体内实验中皮下接种5.0×10^6细胞,尾静脉注射每周一次连续3周 肿瘤体积计算公式:0.5 × length × width^2

摘要

背景:富含半胱氨酸的酸性分泌蛋白(SPARC),一种钙结合性基质细胞糖蛋白,与某些癌症的进展有关。然而,迄今为止尚无关于SPARC在宫颈癌细胞生长和转移中功能的信息。方法:在本研究中,我们通过有限稀释法从人宫颈癌细胞系HeLa和SiHa中分离并建立了高侵袭性亚克隆和低侵袭性亚克隆。采用实时荧光定量RT-PCR、Western Blot和免疫细胞化学(ICC)检测SPARC在高侵袭性亚克隆和低侵袭性亚克隆中的mRNA和蛋白表达。然后构建含有SPARC shRNA的慢病毒载体并感染高侵袭性亚克隆。感染后同样采用实时荧光定量RT-PCR、Western Blot和ICC检测SPARC表达的变化。在功能实验中,研究了SPARC敲低对宫颈癌细胞生物学行为的影响。还研究了SPARC在宫颈癌增殖、凋亡和侵袭中的机制。结果:与低侵袭性亚克隆相比,SPARC在高侵袭性亚克隆中过表达。敲低SPARC显著抑制宫颈癌细胞增殖,并通过p53/p21途径诱导细胞周期阻滞于G1/G0期,同时通过降低Bcl-2/Bax比值引起细胞凋亡,并通过下调MMP2和MMP9表达及上调E-cadherin表达抑制细胞侵袭和转移。结论:SPARC与宫颈癌细胞的侵袭表型相关。敲低SPARC显著抑制宫颈癌细胞增殖,诱导细胞凋亡并抑制细胞侵袭和转移。SPARC作为促进因子促进宫颈癌细胞的生长和转移。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SPARC在宫颈癌细胞生长和转移中的功能及其机制是什么?
核心机制
敲低SPARC通过上调p53/p21通路诱导细胞周期G1/G0期阻滞,通过降低Bcl-2/Bax比值诱导凋亡,并通过上调E-cadherin和下调MMP2/MMP9抑制侵袭和转移。
主要证据
基于HeLa和SiHa高/低侵袭亚克隆、SPARC shRNA敲低实验、MTT、软琼脂克隆形成、流式细胞术、Transwell迁移侵袭实验、裸鼠异种移植和肺转移模型,并通过qRT-PCR、Western blot、免疫细胞化学和酶谱法检测相关分子。
研究意义
该研究首次阐明SPARC在宫颈癌生长和转移中的功能,提示SPARC可能作为宫颈癌治疗的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

亚克隆建立与侵袭性评估

从亲本细胞系中筛选高侵袭性和低侵袭性亚克隆以研究SPARC与侵袭表型的关系。

通过有限稀释法从HeLa和SiHa细胞系中获得亚克隆,利用细胞电泳仪测量电泳迁移率,并通过MTT、软琼脂克隆形成、迁移和侵袭实验以及裸鼠移植瘤实验评估其侵袭性。

2

SPARC表达差异检测

比较SPARC在高侵袭和低侵袭亚克隆中的表达差异。

通过qRT-PCR、Western blot和ICC检测SPARC mRNA和蛋白水平。

3

SPARC敲低验证

验证慢病毒介导的shRNA有效敲低SPARC表达。

构建SPARC shRNA慢病毒载体并感染HeLa-1和SiHa-1细胞,通过GFP荧光、qRT-PCR、Western blot和ICC验证敲低效率。

4

细胞增殖和周期分析

评估SPARC敲低对细胞增殖和细胞周期的影响。

通过MTT、软琼脂克隆形成和流式细胞术分析细胞增殖和周期分布。

5

细胞凋亡检测

评估SPARC敲低对细胞凋亡的影响。

使用Annexin V-PI染色和流式细胞术检测凋亡细胞比例。

6

细胞迁移和侵袭实验

评估SPARC敲低对细胞迁移和侵袭能力的影响。

使用Transwell实验,分别使用无Matrigel和有Matrigel的腔室检测迁移和侵袭。

7

体内肿瘤生长和肺转移实验

在体内评估SPARC敲低对肿瘤生长和肺转移的影响。

将SPARC shRNA感染的HeLa-1细胞皮下注射或尾静脉注射裸鼠,监测肿瘤体积和肺转移。

8

下游分子机制探究

探究SPARC调控增殖、凋亡和侵袭的分子机制。

通过qRT-PCR、Western blot和酶谱法检测相关基因和蛋白表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco BRL--
RPMI-1640培养基----
慢病毒载体GeneChem--
Trizol试剂Invitrogen--
ABI PRISM 7500实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
Power SYBR Green PCR预混液Applied Biosystems--
RIPA裂解缓冲液----
PVDF膜----
SPARC抗体R&D SystemsAF941
PCNA抗体BIOSSbs-0754R
细胞周期蛋白D1抗体BIOSSbs-0623R
P53抗体BIOSSbs-0033R
P21抗体BIOSSbs-0741R
Bax抗体BIOSSbs-0127R
Bcl-2抗体BIOSSbs-0032R
增强化学发光----
SPARC抗体R&D SystemsAF941
MTT试剂----
二甲基亚砜----
Sea Plague琼脂----
Annexin V-FITC----
碘化丙啶----
碘化丙啶----
核糖核酸酶----
Transwell小室BD Biosciences--
Matrigel基质胶----
BALB/C-nu/nu裸鼠----
FITC标记的单克隆抗体----
明胶----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与亚克隆建立
细胞系来源(HeLa、SiHa购自上海生命科学研究院);培养条件(DMEM含10%胎牛血清);有限稀释法密度10 cells/ml,96孔板每孔0.1 ml;培养时间2-3周;亚克隆命名及筛选标准(电泳迁移率),详见Methods。
阅读提示:Methods 部分 'Cell lines' 和 'Isolation of HeLa and SiHa cell subclones'
RNA干扰
SPARC shRNA靶序列(5′-AACAAGACCTTCGACTCTTCC-3′),对照序列(5′-TTCTCCGAACGTGTCACGT-3′);感染MOI=60,时间24小时;感染后培养4天;GFP阳性率>80%确认感染效率。
阅读提示:Methods 部分 'RNA interference'
基因表达检测
qRT-PCR引物序列(表1);Western blot上样量50 μg/孔,一抗稀释度1:1000;ICC抗体工作浓度15 μg/ml。
阅读提示:Methods 部分 'Real-time quantitative RT-PCR (q-RT-PCR)'、'Western blot'、'Immunocytochemistry (ICC)',以及表1
细胞功能实验
MTT实验:加MTT 20 μl(5 mg/ml)37°C孵育4小时,DMSO溶解,测定570 nm;软琼脂克隆形成:底层1.2%琼脂,顶层0.7%琼脂,细胞密度5×10^3/ml,培养14天;凋亡检测:Annexin V-FITC 10 μl,PI 5 μl;周期分析:PI 50 μg/ml和RNase 250 μg/ml孵育30分钟;迁移侵袭实验:Matrigel稀释比例1:3,包被50 μl/孔,细胞数2×10^5,孵育12小时;每组至少三次重复。
阅读提示:Methods 部分 'Cell proliferation assays'、'Annexin V-PI assays for apoptosis'、'Analysis of cell cycle distribution'、'Cell invasion assay and migration assay'
体内实验
裸鼠品系(BALB/C-nu/nu雌性5周龄);皮下注射5×10^6细胞(n=4);尾静脉注射每周一次连续3周(n=8);观察时间皮下2个月,尾静脉3个月;肿瘤体积计算0.5×长×宽^2;小鼠饲养条件。
阅读提示:Methods 部分 'Tumor xenografts in nude mice'
机制探究
下游基因检测包括p53/p21、Bcl-2/Bax、MMP2/MMP9、E-cadherin等;酶谱法(zymography)上样量20 μg蛋白,凝胶中明胶浓度0.1 mg/ml。
阅读提示:Methods 部分 'Zymography' 和 Results 部分 'Downstream molecules of SPARC in cervical cancer cell'
统计分析
两组间比较用双尾t检验,三组间用单因素方差分析(one-way ANOVA),P<0.05为显著;数据表示为mean±SE。
阅读提示:Methods 部分 'Statistical analysis'