脱氢枞胺通过影响胃癌中的核苷酸代谢发挥抗肿瘤作用

Dehydroabietylamine exerts antitumor effects by affecting nucleotide metabolism in gastric cancer.

作者信息Jingsong Ma, Jiabao Zhao, Zhengxin Wu, Jinshui Tan, Meijuan Xu, Wenjie Ye, Mengya Zhong, Yubo Xiong, Guangchao Pan, Huiwen Zhou, Shengyi Zhou, Xuehui Hong
PMID38869064
发布时间2024-10-10
DOI10.1093/carcin/bgae037

实验完整度

高

包含细胞活力、克隆形成、类器官、RNA测序、凋亡检测、Western blot、qRT-PCR、分子对接及转基因小鼠体内实验等多层级验证。

主要模型

胃癌细胞系HGC-27和MGC-803 胃癌类器官 K19-Wnt1/C2mE转基因小鼠

重点核对

DHAA浓度(0-10 μM)及处理时间(24 h)对细胞活力的影响 DHAA处理浓度4 μM对类器官形态和活力的影响 DHAA处理下关键酶CAD、DHODH、PAICS的mRNA和蛋白水平变化 FOXK2过表达对DHAA诱导凋亡的逆转作用 小鼠给药剂量(0.244 mg/只,约7.5 mg/kg)和频率(每周两次)对肿瘤生长的影响

摘要

核苷酸代谢是肿瘤(包括胃癌(GC))自我复制过程中最终且最关键的环节。然而,在临床治疗中,经典的抗肿瘤药物如5-氟尿嘧啶(5-FU)大多是嘌呤或嘧啶的代谢类似物,对肿瘤细胞缺乏特异性,因此具有显著的副作用。目前尚不清楚除了核酸类似物外,是否还有其他药物可以靶向核苷酸代谢。在这里,我们发现一种天然化合物脱氢枞胺(DHAA)能显著降低胃癌细胞和类器官的活力与增殖。DHAA破坏胃癌细胞的嘌呤和嘧啶代谢,导致DNA损伤并进一步诱导凋亡。DHAA处理降低了核苷酸代谢通路中关键酶的转录和蛋白水平,其中嘧啶代谢关键酶CAD、DHODH和嘌呤代谢关键酶PAICS的表达显著降低。我们还发现DHAA直接结合并降低Forkhead box K2(FOXK2)的表达,FOXK2是这些代谢酶的常见转录因子。最终,DHAA被证明能延迟K19-Wnt1/C2mE转基因小鼠模型的肿瘤发生,并降低体内CAD、DHODH和PAICS的水平。我们证明DHAA通过靶向转录因子FOXK2,减少核苷酸代谢关键基因的转录并损害核苷酸生物合成,从而对胃癌发挥抗癌作用,因此DHAA是胃癌治疗的有希望的候选药物。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DHAA是否能通过靶向核苷酸代谢抑制胃癌生长,其具体机制是什么?
核心机制
DHAA直接结合转录因子FOXK2,降低其表达,进而减少核苷酸代谢关键酶CAD、DHODH和PAICS的转录,抑制核苷酸生物合成,导致DNA损伤和凋亡。
主要证据
细胞实验显示DHAA降低GC细胞和类器官活力、诱导凋亡;RNA测序显示核苷酸代谢通路下调;Western blot和qRT-PCR证实关键酶表达下降;FOXK2过表达逆转凋亡;转基因小鼠实验中DHAA抑制肿瘤生长并降低关键酶水平。
研究意义
DHAA是一种类似5-FU的调节核苷酸代谢的药物,有潜力作为胃癌的治疗化合物,但需要进一步研究和多中心临床试验验证。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估DHAA对胃癌细胞和类器官活力的影响

验证DHAA是否具有抑制胃癌细胞和类器官活力的作用

使用CCK-8试剂检测HGC-27和MGC-803细胞在DHAA处理后的活力,计算IC50;使用CellTiter-Glo 3D试剂检测类器官活力,并观察形态变化。

2

RNA测序分析DHAA对基因表达的影响

探索DHAA影响胃癌细胞和类器官的潜在分子通路

HGC-27细胞和类器官经DHAA处理后提取RNA,进行测序,并进行KEGG和GO富集分析。

3

验证核苷酸代谢关键酶的表达变化

确认DHAA是否影响核苷酸代谢通路中关键酶的转录和蛋白水平

使用qRT-PCR检测多种核苷酸代谢酶的mRNA水平,使用Western blot检测蛋白水平。

4

检测DHAA对细胞凋亡和细胞周期的影响

验证DHAA是否诱导凋亡和影响细胞周期

使用Annexin V-FITC/PI染色和流式细胞术检测凋亡率,使用PI染色检测细胞周期分布。

5

验证FOXK2在DHAA作用中的功能

确定DHAA是否通过FOXK2调控核苷酸代谢酶的表达并介导凋亡

构建FOXK2过表达质粒,转染GC细胞,通过qRT-PCR和Western blot检测CAD、DHODH、PAICS表达,并通过流式检测凋亡。

6

体外验证DHAA与FOXK2的直接结合

验证DHAA是否直接与FOXK2蛋白结合

使用AlphaFold2预测FOXK2结构,通过分子对接分析DHAA与FOXK2的结合。

7

体内评估DHAA的抗肿瘤效果

验证DHAA在体内是否抑制胃癌肿瘤生长并影响核苷酸代谢

使用K19-Wnt1/C2mE转基因小鼠,腹腔注射DHAA或对照,观察肿瘤体积,并进行组织学分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素和链霉素Gibco--
脱氢枞胺BidepharmBD123672
二甲亚砜Sigma--
高级DMEM F12培养基Gibco--
基质胶Corning--
胃癌类器官培养基Five Elements Bio-Technology--
CCK-8检测试剂盒APExBIO--
CellTiter-Glo 3D试剂Promega--
TRIzol试剂TransGen Biotech--
Illumina HiSeq-2500测序仪Illumina--
cDNA合成预混试剂盒TransGen Biotech--
TransStart Top/Tip Green qPCR预混液TransGen Biotech--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific--
PVDF膜----
Clarity Western ECL底物Bio-Rad--
抗CAD抗体Cell Signaling Technology11933
抗IMPDH2抗体Cell Signaling Technology36281
抗GMPS抗体Cell Signaling Technology14602
抗DYKDDDDK抗体Cell Signaling Technology8146
抗c-Myc抗体Cell Signaling Technology5605
抗p65抗体Cell Signaling Technology8242
抗MITF抗体Cell Signaling Technology12590
抗ATF4抗体Cell Signaling Technology11815
抗β-actin抗体Cell Signaling Technology3700
抗DHODH抗体ABclonalA13295
抗UMPS抗体ABclonalA13251
抗PPAT抗体ABclonalA6698
抗GART抗体ABclonalA3876
抗PFAS抗体ABclonalA17517
抗PAICS抗体ABclonalA6450
抗ADSL抗体ABclonalA6278
抗ATIC抗体ABclonalA5559
抗ADSS1抗体ABclonalA0178
抗ADSS2抗体ABclonalA12398
抗APRT抗体ABclonalA5456
抗SP1抗体ABclonalA14662
抗E2F1抗体ABclonalA16720
抗FOXK2抗体ABclonalA14245
抗IMPDH1抗体ABclonalA16899
抗兔二抗Abcamab150077
抗鼠二抗Bio-Rad1706516
Annexin V FITC/PI凋亡检测试剂盒Yeasen--
CytoFLEX S流式细胞仪Beckman Coulter--
BeyoClick EdU细胞增殖检测试剂盒Beyotime--
PI/RNase染色缓冲液BD Biosciences--
pCMV-C-3xFlag表达载体Public Protein/Plasmid Library--
聚氧乙烯蓖麻油----
抗原修复液MaximDIG-3009
超敏S-P免疫组化试剂盒MaximKIT-9730
增强型DAB显色试剂盒MaximDAB-2032
抗cleaved PARP抗体Cell Signaling Technology5625
抗CK8抗体Abcamab53280
抗PCNA抗体Abcamab18197
抗Ki67抗体Signalway Antibody48871
抗p53抗体Santa Cruz BiotechnologyF2117
Maestro 11.1软件Schrödinger--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞活力检测
细胞株(HGC-27、MGC-803)来源,DHAA浓度(0-10 μM),处理时间(24 h),细胞接种密度(5×10^3细胞/孔)
阅读提示:Methods: Cell lines, culture conditions, and reagents; Measurement of cell and organoid viability;Figure 1A
类器官培养与活力检测
肿瘤组织来源,消化方法,Matrigel用量,类器官培养基成分,DHAA浓度(4 μM),观察时间点(0, 24, 48, 72 h)
阅读提示:Methods: Organoid culture; Measurement of cell and organoid viability;Supplementary Figure 1B
RNA测序
细胞处理(4 μM DHAA,24 h),RNA提取方法,测序平台(Illumina HiSeq-2500),差异表达基因筛选标准(adjusted P<0.05)
阅读提示:Methods: RNA sequencing;Figure 2A
qRT-PCR
内参基因(β-actin),引物序列,反应体系和程序,重复次数(三次)
阅读提示:Methods: RNA extraction and qRT-PCR;Figure 4A
Western blot
裂解液成分,抗体浓度(1:1000),孵育条件,内参(β-actin)
阅读提示:Methods: Western blot analysis;Figure 4B
凋亡检测
细胞处理(4 μM DHAA,24 h),Annexin V-FITC/PI染色,流式细胞仪分析
阅读提示:Methods: Apoptosis assay;Figure 3C
细胞周期检测
细胞处理(4 μM DHAA,24 h),EdU标记,PI染色
阅读提示:Methods: EdU incorporation assay;Figure 3D
质粒构建与过表达
表达载体(pCMV-C-3xFlag),限制性酶切位点(EcoRI/XhoI),转染方法
阅读提示:Methods: Plasmid construction;Figure 5B
分子对接
FOXK2蛋白结构来源(AlphaFold),软件(Maestro 11.1),结合能(-7.5 kcal/mol)
阅读提示:Methods: Molecular docking;Supplementary Figure 2E-G
动物实验
小鼠品系(K19-Wnt1/C2mE),周龄(28周),给药剂量(0.244 mg/只,约7.5 mg/kg),频率(每周两次),持续时间(4周),对照组(vehicle)
阅读提示:Methods: In vivo experiments;Figure 6A
组织学分析
组织固定方法(4%多聚甲醛),切片厚度(4 μm),抗原修复,抗体浓度(如anti-CAD 1:800),显色系统(DAB)
阅读提示:Methods: Histological analysis;Figure 6C