细胞毒性评估
确定XK01、美洛昔康和LPS对RAW264.7细胞活力的影响,以选择后续实验的安全浓度。
使用MTT法检测不同浓度XK01、美洛昔康和LPS处理24小时后RAW264.7细胞的活力。
Novel oxicam nonsteroidal compound XK01 attenuates inflammation by suppressing the NF-κB and MAPK pathway in RAW264.7 macrophages.
包含体外细胞实验(RAW264.7)和体内动物模型(二甲苯诱导小鼠耳肿胀),并进行了功能验证(NO、ROS、细胞因子)和分子机制验证(NF-κB、MAPK通路)。
RAW264.7小鼠巨噬细胞系 二甲苯诱导的ICR小鼠耳肿胀模型
RAW264.7细胞培养条件(高糖DMEM、10% FBS、1%抗生素,37°C、5% CO2) LPS诱导浓度10 μg/mL XK01给药浓度(6.25、25、100 μg/mL) 体内实验:ICR小鼠随机分为5组,每组5只,灌胃给药0.2 mL/20 g,每日一次,连续10天 体内实验剂量:XK01低、中、高剂量分别为1.5、3.0、6.0 mg/kg,美洛昔康6.0 mg/kg
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定XK01、美洛昔康和LPS对RAW264.7细胞活力的影响,以选择后续实验的安全浓度。
使用MTT法检测不同浓度XK01、美洛昔康和LPS处理24小时后RAW264.7细胞的活力。
评估XK01对LPS诱导的RAW264.7细胞中NO、ROS和炎症细胞因子产生的影响。
使用Griess试剂检测NO含量,DCFH-DA荧光探针检测ROS,ELISA检测TNF-α和IL-1β分泌,RT-qPCR检测TNF-α、IL-1β、IL-6等mRNA表达。
验证XK01对LPS诱导的RAW264.7细胞中COX-1和COX-2表达的影响。
Western blot检测COX-1和COX-2蛋白表达,RT-qPCR检测COX-1、COX-2和PGE2 mRNA水平,免疫荧光检测COX-2表达。
探究XK01对LPS诱导的NF-κB信号通路激活的影响。
Western blot检测p65、p-p65、IκBα磷酸化以及胞质和核内p65水平,免疫荧光观察p65核转位。
探究XK01对LPS诱导的MAPK信号通路磷酸化的影响。
Western blot检测ERK1/2、JNK、p38及其磷酸化水平。
通过动物模型验证XK01的体内抗炎活性。
建立二甲苯诱导的ICR小鼠耳肿胀模型,灌胃给予不同剂量XK01或美洛昔康,评估耳肿胀程度、抑制率及组织学变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Hyclone | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞活力检测 | MTT试剂(3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四氮唑溴盐) | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞因子检测 | ELISA试剂盒(IL-6、TNF-α、PGE2) | Elabscience | -- |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | 上海碧云天 | -- |
| NO检测 | 一氧化氮检测试剂盒 | 上海碧云天 | -- |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | Vazyme Biotech | -- |
| 逆转录 | RNA逆转录试剂盒 | Vazyme Biotech | -- |
| Western blot | ECL化学发光试剂盒 | BioRad | -- |
| SYBR Green PCR预混液 | -- | -- | |
| p-NF-κB抗体 | Cell Signaling Technology | 3033S | |
| NF-κB抗体 | Cell Signaling Technology | 8242S | |
| ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4695S | |
| p-ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4370S | |
| COX-1抗体 | HuaBio | ET1610-98 | |
| COX-2抗体 | Proteintech | 12375-1-AP | |
| p-IKBα抗体 | Zen-Bioscience | 340776 | |
| p38抗体 | Signalway Antibody | 48644 | |
| p-p38抗体 | Signalway Antibody | 12322 | |
| JNK抗体 | Signalway Antibody | 48615 | |
| p-JNK抗体 | Signalway Antibody | 11504 | |
| Histon H3抗体 | Signalway Antibody | 32667 | |
| α-tubulin抗体 | Signalway Antibody | 37981 | |
| β-Actin抗体 | Signalway Antibody | 38074 | |
| RNA提取 | TRI试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Sigma-Aldrich | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| ECL Plus Western印迹检测系统 | Amersham Biosciences | -- | |
| ODYSSEY Fc双模式成像系统 | Li-COR | -- | |
| RT-qPCR | CFX96实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- |
| 药物处理 | 美洛昔康 | -- | -- |
| XK01 | -- | -- | |
| 体内实验 | 二甲苯 | -- | -- |
| 生理盐水 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | RAW264.7细胞来源、培养条件(高糖DMEM、10% FBS、1%抗生素,37°C、5% CO2) 阅读提示:见原文2.2 Cell culture。 |
| 药物处理与LPS刺激 | XK01和美洛昔康浓度(6.25、25、100 μg/mL),LPS浓度(10 μg/mL),处理时间(24小时) 阅读提示:见原文3.1和2.3-2.8。 |
| 体外功能检测 | NO检测(Griess试剂、540 nm),ROS检测(DCFH-DA探针、无血清孵育12小时,加药刺激24小时),ELISA(TNF-α、IL-1β) 阅读提示:见原文2.4、2.5、2.6和3.2、3.3。 |
| 体外分子机制 | Western blot蛋白上样量(25 μg)、一抗孵育(4°C过夜),NF-κB(p65、p65核转位)和MAPK(p-ERK、p-JNK、p-p38)通路关键蛋白 阅读提示:见原文2.8和3.5、3.6。 |
| 体内动物模型 | ICR小鼠分组(每组5只)、给药剂量(XK01: 1.5、3.0、6.0 mg/kg;美洛昔康:6.0 mg/kg)、给药方式(灌胃,0.2 mL/20 g,每日1次,连续10天)、模型诱导(二甲苯涂抹右耳)、组织学分析(H&E、IHC) 阅读提示:见原文2.9和3.7。 |