CCDC65,一种导致小鼠早期死亡的基因敲除,在肺腺癌中作为潜在的新型肿瘤抑制因子

CCDC65, a Gene Knockout that leads to Early Death of Mice, acts as a potentially Novel Tumor Suppressor in Lung Adenocarcinoma.

作者信息Ziyan Zhang, Ping Xu, Zhe Hu, Zhaojian Fu, Tongyuan Deng, Xiaojie Deng, Lanzhu Peng, Yingying Xie, Lingzhi Long, Dayong Zheng, Peng Shen, Mengmin Zhang, Bin Gong, Zhibo Zhu, Junhao Lin, Rui Chen, Zhen Liu, Huilin Yang, Rong Li, Weiyi Fang
PMID35844805
发布时间2022-06-27
DOI10.7150/ijbs.69332

实验完整度

研究包含临床样本分析、细胞系体外功能实验、转基因小鼠模型及体内成瘤实验,并通过Co-IP、CHX、泛素化、ChIP-qPCR和拯救实验等多层级机制验证。

主要模型

人肺腺癌细胞系A549、H1975、SPC-A1 CCDC65敲除小鼠(CCDC65+/+、+/-、-/-) 乌拉坦诱导的小鼠肺腺癌模型 裸鼠皮下异种移植瘤模型

重点核对

CCDC65在组织中的表达水平(TCGA数据库、免疫组化) CCDC65敲除小鼠的基因型和存活情况 乌拉坦诱导剂量和频次(1 g/kg腹腔注射,每周1次,持续20周) 细胞系中CCDC65过表达或敲低的效率 CHX和MG132处理浓度及时间

摘要

CCDC65是卷曲螺旋结构域蛋白家族的成员,我们课题组之前仅在胃癌中报道过该蛋白。我们首次基于TCGA数据库观察到其在肺腺癌中表达下调。CCDC65蛋白的减少被证明是促进肺腺癌临床进展的不利因素。随后,发现CCDC65-/-小鼠可能因脑积水而死亡。与CCDC65+/+小鼠相比,CCDC65+/-小鼠中CCDC65的下调显著增加了乌拉坦诱导的肺癌形成能力。在后续研究中,我们观察到CCDC65在体外和体内均发挥抑制细胞增殖的肿瘤抑制功能。分子机制研究表明,CCDC65招募E3泛素连接酶FBXW7诱导致癌转录因子c-Myc的泛素化降解,并减少c-Myc与ENO1启动子的结合,从而抑制ENO1的转录。此外,CCDC65还招募FBXW7通过泛素化修饰降解ENO1蛋白。ENO1的下调进一步减少了AKT1的磷酸化激活,从而使细胞周期信号失活。我们的数据表明,CCDC65通过招募FBXW7抑制c-Myc/ENO1诱导的细胞周期信号,在肺腺癌中是一个潜在的肿瘤抑制因子。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CCDC65在肺腺癌中的表达及其是否作为肿瘤抑制因子发挥作用,以及其潜在的分子机制。
核心机制
CCDC65通过招募E3泛素连接酶FBXW7,促进c-Myc的泛素化降解,减少c-Myc与ENO1启动子的结合从而抑制ENO1转录;同时,CCDC65也招募FBXW7降解ENO1蛋白,ENO1下调进一步抑制AKT1磷酸化,使细胞周期信号失活。
主要证据
基于TCGA数据库、临床组织样本和细胞系中CCDC65表达下调;CCDC65基因敲除小鼠在乌拉坦诱导下肿瘤结节更多且更大;CCDC65过表达抑制细胞增殖和周期,并在裸鼠中减小肿瘤体积;Co-IP、CHX追逐、泛素化实验和ChIP-qPCR验证了CCDC65与c-Myc、FBXW7的相互作用及其对c-Myc降解和ENO1转录的调控。
研究意义
本研究揭示了CCDC65作为潜在肿瘤抑制因子在肺腺癌发病中的新机制,为肺腺癌的诊断和治疗提供了潜在的生物标志物和分子靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本及数据库分析

评估CCDC65在肺腺癌组织及细胞系中的表达水平及其与临床预后的关系。

利用TCGA数据库和KM plotter分析CCDC65表达与生存期;通过qRT-PCR和Western blot检测细胞系和组织中CCDC65表达;采用免疫组化检测组织芯片,结合临床病理特征进行统计分析。

2

CCDC65基因敲除小鼠模型构建及表型分析

构建CCDC65敲除小鼠,观察其发育和存活情况,并评估CCDC65缺失对肿瘤发生的影响。

通过CRISPR/Cas9技术构建CCDC65敲除小鼠,并进行基因分型;观察不同基因型小鼠的出生率、存活率和生长发育;通过解剖和HE染色检查小鼠脑部及主要器官形态。

3

乌拉坦诱导肺腺癌模型

评估CCDC65表达下调对乌拉坦诱导肺腺癌发生的影响。

对CCDC65+/+和CCDC65+/-小鼠腹腔注射乌拉坦建立肺腺癌模型,观察小鼠肺部肿瘤结节数量和面积,并进行HE染色分析。

4

CCDC65对细胞增殖和周期的影响

验证CCDC65在体外对LUAD细胞增殖和细胞周期的影响。

构建CCDC65过表达和敲低的细胞系,采用CCK8、集落形成、EdU、流式细胞术检测细胞增殖和周期变化,并用Western blot检测周期相关蛋白表达。

5

裸鼠皮下成瘤实验

验证CCDC65在体内对肿瘤生长的抑制作用。

将稳定过表达CCDC65的SPC-A1或A549细胞和对照细胞皮下注射裸鼠,28天后取出肿瘤称重并检测增殖指标。

6

CCDC65与c-Myc、FBXW7的相互作用和泛素化降解机制

阐明CCDC65调控c-Myc和ENO1蛋白稳定性的分子机制。

通过Co-IP验证相互作用,免疫荧光检测共定位;CHX追踪实验检测蛋白半衰期;MG132处理检测蛋白酶体依赖性;泛素化实验检测泛素化水平;siFBXW7用于验证FBXW7的依赖。

7

c-Myc对ENO1转录的调控

验证c-Myc是否作为转录因子结合ENO1启动子并调控其转录。

通过ChIP-qPCR检测c-Myc与ENO1启动子区域的结合,结合JASPAR预测和ENCODE数据,并过表达c-Myc检测ENO1 mRNA表达。

8

AKT信号通路及拯救实验

验证CCDC65通过c-Myc/ENO1/AKT1通路抑制细胞增殖和周期,并明确下游调控。

Western blot检测AKT1磷酸化水平;在CCDC65过表达细胞中回补c-Myc、ENO1或使用AKT抑制剂MK2206,评估对细胞增殖和周期的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Vivacell--
DMEM培养基Vivacell--
胎牛血清Biowest--
Lipofectamine 2000 转染试剂Invitrogen--
CCDC65 抗体Proteintech24376-1-AP
ENO1 抗体Proteintech11204-1-AP
c-Myc 抗体Proteintech10828-1-AP
CCND1 抗体Proteintech60186-1-Ig
p-AKT (Ser473) 抗体Proteintech66444-1-Ig
DYKDDDDK 标签抗体Proteintech80010-1-RR
mTOR 抗体Proteintech66888-1-Ig
p-mTOR (Ser2448) 抗体Proteintech677778-1-Ig
GSK3β 抗体Proteintech22104-1-AP
p-GSK3β (Ser9) 抗体Proteintech67558-1-AP
Anti-P-Akt1 (Ser473) 抗体Cell Signaling Technology9018
小鼠IgGCell Signaling Technology3420
正常兔IgGCell Signaling Technology2729
p27抗体Cell Signaling Technology3686
p21抗体Cell Signaling Technology2947
AKT1抗体Signalway Antibody48884
Flag抗体SigmaF1804
β-actin抗体BioworldAP0060
GAPDH抗体BioworldAP0063
SuperKine™ 增强型抗体稀释液Abbkine--
Mini-PROTEAN Tetra 电泳槽Bio-Rad--
Mini Trans-Blot 转印槽Bio-Rad--
化学发光成像系统Minichemi--
总RNA提取试剂盒Foregene--
逆转录试剂盒Vazyme--
CFX96 实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
链霉亲和素/过氧化物酶试剂盒ZSGB BIO--
DAB显色试剂盒ZSGB BIO--
琼脂糖Leagene--
TAE电泳缓冲液Leagene--
GelRed核酸染料Biosharp--
GelDoc XR+ 凝胶成像系统Bio-Rad--
乌拉坦Sigma--
细胞计数试剂盒(CCK8)Vazyme--
Cell-Light EdU Apollo567 体外试剂盒Ribobio--
DAPIBeyotime Biotechnology--
碘化丙啶----
核糖核酸酶A----
FACS caliber 流式细胞仪BD Biosciences--
免疫沉淀裂解液Thermo Scientific--
蛋白A/G磁珠Bimake--
Alexa Fluor 二抗Earthox--
MG132Selleck--
Pierce 磁珠法ChIP试剂盒Thermo Scientific--
IBM SPSS Statistics 25IBM--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系(A549、H1975等)来源,培养基(RPMI 1640、DMEM)和血清浓度(10% FBS),培养条件(37°C、5% CO2)。
阅读提示:见Materials and methods, Cell culture and reagents。
过表达/敲低细胞系构建
慢病毒载体(GFP标记)、转染试剂(Lipofectamine 2000)、siRNA序列,感染和筛选条件。
阅读提示:见Materials and methods, Transfection和Lentivirus infection。
细胞增殖检测
细胞铺板密度(CCK8 3000细胞/孔,集落形成200细胞/孔),CCK8孵育时间(2小时),集落培养时间(两周)。
阅读提示:见Materials and methods, Cell Counting Kit 8 assay和Colony formation assay。
细胞周期分析
EdU实验细胞密度(5000细胞/孔),PI染色浓度(10 μg/mL),RNase A浓度(0.5 mg/mL),检测时间。
阅读提示:见Materials and methods, Cell-cycle analysis和5-Ethynyl-2'-deoxyuridine staining。
动物实验
小鼠品系(C57BL/6J,裸鼠)、周龄、乌拉坦剂量(1 g/kg)和给药方案(每周一次,20周),以及异种移植细胞数量(5×10^6)。
阅读提示:见Materials and methods, Lung adenocarcinoma model mouse和Tumor xenograft experiments。
机制研究
CHX浓度(50 μg/mL)、MG132浓度(20 μM,处理4小时)、Co-IP抗体和磁珠条件,泛素化检测方法。
阅读提示:见Materials and methods, Cycloheximide chase assay and ubiquitination assay和Co-immunoprecipitation assay。