P-PIC偶联优化
确定抗CD205抗体与pBPA修饰的HTB1-OVA的最佳偶联条件,并评估偶联对抗原摄取的影响。
比较HTB1在A24或K28位掺入pBPA后的共价偶联效率,选择A24位点;在RAW264.7细胞中通过免疫荧光和流式细胞术评估偶联产物αmCD205-OVAP-PIC的抗原摄取能力;在THP-1细胞中验证人源化系统。
Development of a dendritic cell-targeted vaccine strategy using proximity-induced conjugation.
包含体外细胞实验(RAW264.7、THP-1)、体内模型(B16-OVA、MC38-LMP2A)、功能验证及机制验证(流式、ELISpot、TIL分析)。
B16-OVA黑色素瘤小鼠模型 MC38-LMP2A结肠癌小鼠模型 RAW264.7巨噬细胞 THP-1单核细胞
疫苗偶联效率:P-PIC摩尔比1:8,UV 365 nm照射2h,效率>90%;C-PIC摩尔比1:6,37°C孵育24h,效率>80% B16-OVA模型:皮下接种0.5×10^6细胞,第1天和第8天腹腔注射10 μg疫苗、50 μg CpG1826佐剂 MC38-LMP2A模型:皮下接种1×10^6细胞,疫苗方案同B16-OVA ICI联用:每次免疫后2天腹腔注射50 μg/kg BMS-1 检测终点:肿瘤体积、生存期、TILs中CD8+和CD4+比例、PD-1表达、IFN-γ分泌
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定抗CD205抗体与pBPA修饰的HTB1-OVA的最佳偶联条件,并评估偶联对抗原摄取的影响。
比较HTB1在A24或K28位掺入pBPA后的共价偶联效率,选择A24位点;在RAW264.7细胞中通过免疫荧光和流式细胞术评估偶联产物αmCD205-OVAP-PIC的抗原摄取能力;在THP-1细胞中验证人源化系统。
评估P-PIC偶联的DC靶向疫苗在B16-OVA黑色素瘤模型中的抗肿瘤免疫应答和治疗效果。
建立B16-OVA皮下荷瘤小鼠模型,分别用生理盐水、OVA、αmCD205、αmCD205+OVA混合物或αmCD205-OVAP-PIC疫苗治疗,并分析肿瘤生长、生存期、TILs和脾细胞IFN-γ分泌。
探索DC靶向疫苗与PD-1抑制剂联用是否进一步增强抗肿瘤效果并缓解T细胞耗竭。
在B16-OVA模型中,于每次免疫后2天腹腔注射BMS-1,评估肿瘤生长、生存期、TILs中CD8+/CD4+比例和PD-1表达,并利用ELISpot检测IFN-γ分泌。
验证P-PIC能否递送来自LMP2A的表位富集区(EER)T3,并在MC38-LMP2A模型中评估其治疗潜力。
构建HTB1(A24pBPA)-T3融合蛋白,通过P-PIC偶联至αmCD205,在RAW264.7细胞中验证摄取;在MC38-LMP2A荷瘤小鼠中评估单药和联合BMS-1的治疗效果。
开发一种在温和条件下(37°C孵育)通过FPheK介导的化学偶联方法,以替代P-PIC的UV照射,减少对抗体功能的潜在损伤。
利用MinZ(E25FPheK)-OVA与αmCD205在1:6摩尔比、37°C孵育24h进行偶联;在RAW264.7细胞中验证摄取;在B16-OVA模型中评估抗肿瘤效果及与BMS-1联用的效果。
评估DC靶向疫苗在体内是否引起系统性毒性或细胞因子异常。
对接种P-PIC或C-PIC疫苗的小鼠,监测体重、血清IL-6和TNF-α水平,进行主要器官的H&E染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | HyClone | SH30255.01 |
| 高糖DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 非必需氨基酸 | -- | -- | |
| 蛋白表达 | SMM 293-TII表达培养基 | Sinobiological | M293TII |
| 药物处理 | 对苯甲酰-L-苯丙氨酸 | MATEK | -- |
| 免疫检查点抑制剂 | BMS-1 | Selleck | S7911 |
| 蛋白表达 | 镍珠 | Solarbio | P2010 |
| 蛋白纯化 | 抗DYKDDDDK亲和树脂 | SinoBiological | 101274 |
| 转染 | PEI MAX | Polysciences, Inc. | -- |
| P-PIC偶联 | 紫外交联仪(UV07-II) | MCGS | -- |
| LC-MS分析 | Q Exactive HF-X质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| ELISA | TMB底物 | Elabscience | E-IR-R201 |
| ELISA检测 | Cytation 5细胞成像读板机 | Agilent | -- |
| 细胞ELISA | 多聚-D-赖氨酸 | Sigma-Aldrich | 27964-99-4 |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Sangon Biotech | 9002-93-1 |
| Alexa Fluor 647标记的抗RAB7抗体 | Abcam | ab198337 | |
| Alexa Fluor 488标记的抗DYKDDDDK抗体 | Proteintech | CL488-80010 | |
| 细胞核染色 | Hoechst染料 | Solarbio | C0031 |
| 流式细胞术 | Attune NxT流式细胞仪 | Thermo Fisher Scientific | A29001 |
| 动物实验 | CpG 1826 | MCE | 202668-42-6 |
| TIL检测 | PE偶联抗小鼠CD3ε抗体 | BioLegend | 100308 |
| FITC偶联抗小鼠CD8α抗体 | BioLegend | 100706 | |
| Brilliant Violet 421偶联抗小鼠PD-1抗体 | BioLegend | 135217 | |
| ELISpot | 红细胞裂解液 | BioLegend | 420302 |
| 小鼠IFN-γ ELISpot试剂盒 | DKW22-2000 | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| P-PIC偶联 | HTB1(A24pBPA)-OVA与αmCD205的摩尔比(8:1)、UV照射波长和时间(365 nm,2 h)、偶联效率(>90%) 阅读提示:Materials and Methods: PIC |
| C-PIC偶联 | MinZ(E25FPheK)-OVA与αmCD205的摩尔比(6:1)、孵育条件(37°C, 24 h, pH 8.5)、偶联效率(>80%) 阅读提示:Materials and Methods: PIC |
| 动物模型建立 | 小鼠品系(C57BL/6J)、细胞接种数量(B16-OVA 0.5×10^6, MC38-LMP2A 1×10^6)、接种途径(皮下) 阅读提示:Materials and Methods: Animal study |
| 疫苗给药方案 | 疫苗剂量(10 μg)、佐剂CpG1826剂量(50 μg)、注射途径(腹腔)、免疫时间(day 1和day 8) 阅读提示:Materials and Methods: Animal study; Figure 2A |
| ICI联用方案 | BMS-1剂量(50 μg/kg)、给药时间(每次免疫后2天)、给药途径(腹腔) 阅读提示:Materials and Methods: Animal study; Figure 3A |