抗M1R和B6R单克隆抗体的生成
获得针对MPXV关键免疫原M1R和B6R的单克隆抗体。
用编码MPXV抗原的mRNA疫苗免疫BALB/c小鼠,两次免疫后进行VACV攻毒,60天后从存活的淋巴结中分离抗原特异性B细胞,进行单细胞V(D)J测序,并重组表达抗体。
Anti-M1R/B6R antibody characterization and bispecific design for enhanced orthopoxvirus protection.
研究包含抗体生成、体外功能验证(ELISA、SPR、PRNT)、体内保护实验(小鼠模型)和结构解析(晶体结构),多个独立证据层级共同支持结论。
BALB/c小鼠模型(VACV感染) CB-17 SCID小鼠模型(MPXV感染) CAST/EiJ小鼠模型(MPXV感染)
抗体给药方案:10 mg/kg或5 mg/kg,腹腔注射,攻毒前4小时和后4小时(BALB/c)或攻毒前24小时(CAST/EiJ) 病毒攻毒剂量和途径:VACV-WR鼻内攻毒(BALB/c);MPXV WIBP-MPXV-001 腹腔和鼻内攻毒(CB-17 SCID);MPXV CAMS-CCPM-B-V-052-2306-1 腹腔攻毒(CAST/EiJ) 中和试验:VACV-IMV PRNT(两倍稀释)和VACV-EEV PRNT(三倍稀释,含补体) 病毒载量检测:组织样本(肺、脾、卵巢等)通过qPCR定量,检测时间点(5 dpi或9 dpi等) 双特异性抗体格式:IgG-scFv和VH-CH1转换区插入格式
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得针对MPXV关键免疫原M1R和B6R的单克隆抗体。
用编码MPXV抗原的mRNA疫苗免疫BALB/c小鼠,两次免疫后进行VACV攻毒,60天后从存活的淋巴结中分离抗原特异性B细胞,进行单细胞V(D)J测序,并重组表达抗体。
确定抗体的表位分类和结合亲和力。
通过ELISA和BLI进行表位竞争分析,通过SPR测量结合亲和力,使用B6R片段和M1R肽段进行表位定位。
评估抗M1R和抗B6R抗体对VACV的中和能力。
通过PRNT检测抗M1R抗体对VACV-IMV和抗B6R抗体对VACV-EEV的中和活性;EEV中和实验在补体存在下进行。
评估抗M1R和抗B6R抗体在动物模型中对VACV和MPXV的保护效果。
在BALB/c小鼠中,攻毒VACV-WR前后给予抗体,监测体重、生存率和肺病毒载量;在CB-17 SCID和CAST/EiJ小鼠中,使用MPXV攻毒,评估不同组织的病毒载量。
阐明抗体与M1R结合的分子基础。
通过坐滴气相扩散法结晶,收集X射线衍射数据,使用Phaser分子置换、Coot模型构建和PHENIX精修,解析hmMM1-40和mMM1-16与M1R的复合物结构。
评估组合策略(鸡尾酒和双特异性抗体)的抗病毒效果。
将hmMM1-40和hMB621组合为鸡尾酒或设计成IgG-scFv和VH-CH1转换区插入格式的双特异性抗体,在VACV或MPXV攻毒模型中评估保护效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT |
| 胎牛血清 | GIBCO | 10270106 | |
| SMM 293-TII培养基 | Sino Biological | M293TII | |
| 蛋白质纯化 | HisTrap HP 5 mL预装柱 | Cytia | 17524802 |
| HiLoad 16/600 Superdex 200 pg凝胶过滤柱 | Cytia | 28989335 | |
| 抗体纯化 | Protein A HP 5 mL预装柱 | Cytia | 17040303 |
| SPR分析 | Series S传感器芯片Protein A | Cytia | 29127556 |
| 细胞培养 | 聚乙烯亚胺 | Alfa | A04043896-1g |
| 受体竞争实验 | 7D11抗体 | -- | -- |
| 检测 | TaqMan基因表达预混液 | ThermoFisher | 4369016 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体生成 | 免疫剂量和次数:mRNA疫苗编码MPXV抗原,两次免疫,免疫间隔时间?攻毒时间:第二次免疫后两周。抗体序列克隆:pCAGGS载体。 阅读提示:Methods:Isolation of antigen-specific B cells and recombinant monoclonal antibodies production |
| 结合分析 | ELISA抗原包被浓度:2 μg/mL;抗体检测浓度:10 μg/mL;BLI竞比时第一和第二抗体浓度:50 μg/mL;SPR捕获抗体浓度:0.5 μg/mL。 阅读提示:Methods:Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), BLI assay, SPR analysis |
| 中和试验 | IMV中和:病毒量约150 PFU,抗体系列二倍稀释,孵育1 h,Vero细胞感染,40 h培养;EEV中和:病毒量约100 PFU,抗体系列三倍稀释,补体(10%幼兔补体),7D11浓度50 μg/mL,孵育2 h。 阅读提示:Methods:Plaque reduction neutralization test (PRNT) |
| 体内保护实验(VACV) | 小鼠品系、性别、年龄:6-8周龄雌性BALB/c;抗体剂量:10 mg/kg(图3)或5 mg/kg(图6和EV4);给药途径:腹腔注射;攻毒途径:鼻内接种VACV-WR;给药时间:攻毒前4h和后4h(图3,6),或攻毒前24h/-24h和攻毒后24h/+24h(图EV4);监测时间:5天或9天。 阅读提示:Methods:Animal protection experiments(VACV protection in BALB/c mice);Figure legends 3A, 6B, EV4A,D |
| 体内保护实验(MPXV) | 小鼠品系:CB-17 SCID(6-8周龄雌性)和CAST/EiJ(4-10周龄,性别比例);攻毒剂量:WIBP-MPXV-001 (0.2×107 PFU intranasally and 4.8×107 PFU intraperitoneally),CAMS-CCPM-B-V-052-2306-1 1×106 PFU腹腔;抗体剂量:5 mg/kg(CB-17)或10 mg/kg(CAST/EiJ);给药时间:攻毒前4h和后4h(CB-17),攻毒前24h(CAST);监测时长:10天或4天;病毒载量检测组织:肺、脾、卵巢(CB-17),血浆、脾、肺、肝、肾、脑、卵巢/睾丸(CAST)。 阅读提示:Methods:Animal protection experiments(MPXV protection in CB-17 SCID mice, MPXV protection in CAST/Eij mice);Figure legends 5A,D, EV3A |
| 结构解析 | 蛋白浓度:8 mg/mL;结晶条件:hmMM1-40复合物(1% w/v tryptone, 0.05 M HEPES sodium pH 7.0, 20% w/v PEG3350),mMM1-16复合物(0.2 M ammonium fluoride, 20% w/v PEG3350);衍射数据收集波长:0.979183 Å;分辨率:2.80 Å和2.70 Å。 阅读提示:Methods:Crystallization and structure determination |