形成稳定信号复合物
验证iNKT细胞与单核细胞来源的树突状细胞能否形成稳定粘附的细胞对并传导信号。
通过活细胞成像和流式细胞术检测iNKT-DC共培养后的接触面积、粘附率、迁移能力和钙信号变化。
CD8+ T-cell Antitumor Immunity via Human iNKT-DC Conjugates.
包含体外细胞共培养、活细胞成像、流式细胞术、功能T细胞增殖实验、体内异种移植淋巴瘤模型及转录组分析,并进行了功能验证和机制研究。
人CD4+ iNKT细胞系 单核细胞来源的树突状细胞 EB病毒驱动的B细胞淋巴瘤异种移植小鼠模型
iNKT细胞和DC的共培养时间及比例(1:1) iNKT-DC复合物形成及其对CD8+ T细胞激活的共刺激分子表达 EBV抗原或HPV E7抗原的存在与否 iNKT-DC免疫疗法在肿瘤晚期阶段的疗效 免疫检查点阻断治疗的对比
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证iNKT细胞与单核细胞来源的树突状细胞能否形成稳定粘附的细胞对并传导信号。
通过活细胞成像和流式细胞术检测iNKT-DC共培养后的接触面积、粘附率、迁移能力和钙信号变化。
验证iNKT-DC复合物是否上调DC和iNKT细胞上的共刺激分子。
使用流式细胞术和成像流式细胞术检测共培养后细胞表面CD70、4-1BBL、OX40L、IL-15Rα等分子的表达水平,并与MPLA处理的DC比较;使用transwell实验测试可溶性因子的作用。
验证iNKT-DC复合物在抗原存在下能否有效激活CD8+ T细胞。
分离健康供者PBMC中的T细胞,与负载EBV抗原或HPV E7蛋白的DC或iNKT-DC共培养,通过流式细胞术检测T细胞增殖和抗原特异性四聚体染色。
验证iNKT-DC细胞免疫疗法在原位淋巴瘤模型中的抗肿瘤疗效。
使用EBV感染的人脐带血细胞移植NSG小鼠构建淋巴瘤模型,在第25天静脉注射iNKT-DC,评估肿瘤负荷、生存期、免疫细胞浸润和转录变化。
验证iNKT-DC复合物能否激活头颈癌患者的肿瘤抗原特异性CD8+ T细胞。
从HPV16+ HNSCC患者血液中分离单核细胞并诱导分化为DC,与iNKT细胞共培养形成复合物,加入重组E7蛋白观察T细胞增殖和四聚体染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Corning | 10-040-CV |
| 胎牛血清 | GeminiBio | 100-106 | |
| 白细胞介素-4 | Peprotech | 200-04 | |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | Peprotech | 300-03 | |
| 单磷酰脂质A | Avanti Polar Lipids | 699800P | |
| 牛血清 | HyClone | SH30072.03 | |
| iNKT细胞培养 | 植物血凝素 | Sigma-Aldrich | L1668 |
| 白细胞介素-2 | Peprotech | 200-02 | |
| 细胞分离 | Ficoll-Paque Plus | GE Healthcare | -- |
| CD14磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-050-201 | |
| Pan T磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-096-535 | |
| 活细胞成像 | CFSE | Invitrogen | C34570 |
| CMTPX | Invitrogen | C34552 | |
| Fluo-4 | Invitrogen | F14201 | |
| IncuCyte S3活细胞成像系统 | Sartorius | -- | |
| 流式细胞术 | CTV | Invitrogen | 34557 |
| 达沙替尼 | Axon Medchem | 1392 | |
| 精密计数微球 | BioLegend | 424902 | |
| 共聚焦显微镜 | CD70抗体 | BioLegend | 355101 |
| Western blot | 抗鼠 IgG | Invitrogen | A-11029 |
| 共聚焦显微镜 | ProLong Gold封片剂 | Invitrogen | P36970 |
| 细胞功能实验 | HPV E7蛋白 | Sino Biological | 40965-V07E |
| 体内实验 | NSG小鼠 | Jackson Labs | IMSR_JAX:005557 |
| 免疫组化 | DAPI | Sigma-Aldrich | D9542 |
| 转录组分析 | NanoString人类免疫耗竭panel | NanoString Technologies Inc. | 115000475 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DC生成 | 单核细胞分离方法、细胞因子浓度(IL-4 200U/ml, GM-CSF 300U/ml)、培养时间(3天) 阅读提示:Materials and Methods: Generation of monocyte-derived DCs |
| iNKT-DC复合物形成 | iNKT细胞与DC的比例(1:1)、共培养时间(24小时)、细胞密度(8000细胞/孔) 阅读提示:Materials and Methods: Live cell imaging; Flow cytometry |
| T细胞增殖实验 | T细胞与DC/iNKT-DC的比例(50:1)、抗原种类和浓度(EBV抗原等价2.5U/1000 DC, HPV E7蛋白5ng/ml)、共培养时间(10天) 阅读提示:Materials and Methods: T cell proliferation |
| 体内淋巴瘤模型 | CBMC处理(2000U M81 EBV感染)、注射细胞数(10^7细胞/鼠)、治疗时间(第25天)、iNKT-DC剂量(0.5-1x10^6细胞)、肿瘤负荷评估时间(第26-31天) 阅读提示:Materials and Methods: Murine xenograft model of human EBV-driven B cell lymphoma |
| 转录组分析 | 组织收集时间(第29-31天)、NanoString panel(Human Immune Exhaustion panel)、差异表达基因筛选标准(|log2FC|>0.5, p<0.05) 阅读提示:Materials and Methods: Transcriptomic analysis |