CTSD表达与AML临床相关性分析
评估CTSD在AML中的表达水平及其与预后的关系。
利用CPTAC、GEPIA和UALCAN数据库分析CTSD在AML中的表达及与生存的相关性;在AML细胞系中检测CTSD蛋白水平。
Cathepsin D promotes acute myeloid leukemia progression through stabilization of the anti-apoptotic proteins.
包含细胞系体外实验、动物模型(U937异种移植、MLL-AF9模型)及患者样本,并进行了功能验证和机制验证(泛素化、蛋白稳定性)。
人AML细胞系(U937、MV4-11、MOLM-13) NSG小鼠U937异种移植模型 C57BL/6小鼠MLL-AF9白血病模型 原代AML患者细胞
CTSD敲低效率及对BCL2、BCL-XL、MCL1蛋白和mRNA水平的影响 TRIM21敲低对CTSD敲低细胞凋亡和增殖的回复效应 N-8处理对CTSD依赖性和TRIM21依赖性的验证 CHX和MG132处理对蛋白半衰期和泛素化的影响 N-8在U937和MLL-AF9模型中的给药剂量和给药方式
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估CTSD在AML中的表达水平及其与预后的关系。
利用CPTAC、GEPIA和UALCAN数据库分析CTSD在AML中的表达及与生存的相关性;在AML细胞系中检测CTSD蛋白水平。
验证CTSD对AML细胞增殖和凋亡的作用。
通过siRNA和shRNA敲低CTSD,检测细胞增殖和凋亡;进行回补实验。
在动物模型中验证CTSD对AML进展的影响。
将CTSD敲低的U937细胞移植到NSG小鼠中,检测白血病负荷和凋亡。
阐明CTSD敲低导致抗凋亡蛋白减少的分子机制。
定量蛋白质组学分析差异蛋白;检测BCL2、BCL-XL、MCL1的蛋白和mRNA水平、半衰期和泛素化;筛选E3连接酶并验证TRIM21的作用。
发现靶向CTSD的小分子抑制剂并评估其活性。
使用Discovery Studio 3.0进行基于结构的虚拟筛选,从中选出候选化合物,通过SPR和细胞实验验证活性,确定N-8为最优先导化合物。
验证N-8的抗AML作用及其机制。
检测N-8对AML细胞凋亡和增殖的影响,及对BCL2等蛋白水平和稳定性的影响;在CTSD敲低或TRIM21敲低细胞中验证其特异性。
在动物模型中验证N-8的疗效和安全性。
在U937异种移植模型和MLL-AF9模型中给予N-8治疗,检测白血病负荷、凋亡、生存期及毒副作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | EallBio | 03.4007C |
| 胎牛血清 | EallBio | 03.U16001DC | |
| 青霉素-链霉素 | TransGene Biotech | FG101-01 | |
| 杜氏改良Eagle培养基 | EallBio | 03.1002C | |
| 患者样本处理 | 人淋巴细胞分离液 | Solarbio | P8610 |
| 细胞筛选 | 嘌呤霉素 | Gibco | A1113802 |
| 小鼠模型 | 造血干/祖细胞富集试剂盒 | StemCell | 19856A |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | TargetMol | C0005 |
| 免疫共沉淀 | Protein A/G | Santa Cruz Biotechnology | sc-2003 |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | Applegen | C1053 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Applegen | 1511 |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| Tanon 5200化学发光成像系统 | Tanon | -- | |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | ES science | RN001 |
| 逆转录 | NovoScript Plus 全能型第一链cDNA合成预混液 | Novoprotein | E047 |
| 实时定量PCR | NovoStart SYBR qPCR预混液 | Novoprotein | E096-01A |
| MyCycler热循环仪 | qTOWER, Analytik Jena | 844-00553-2 | |
| 流式分析 | PE/Cyanine7抗人CD45抗体 | Biolegend | 368532 |
| 凋亡检测 | Annexin V-APC | Dojindo | AD11 |
| 流式分析 | 流式细胞仪 | Beckman Coulter | A00-1-1102 |
| 分子对接 | Discovery Studio 3.0 | -- | -- |
| 质粒转染 | 聚乙烯亚胺 | Kyfora Bio | 24765 |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | 13778030 |
| 药物处理 | MG132 | Selleck | S2619 |
| 药物溶解 | 二甲基亚砜 | Solarbio | D8372 |
| 动物实验 | 磷酸盐缓冲液 | Livning | LVN10022 |
| Western blot | 抗CTSD抗体 | Abcam | ab75852 |
| 抗FBXW7抗体 | Abcam | ab192328 | |
| 抗BCL2抗体 | Abclonal | A0208 | |
| 抗BCL-XL抗体 | Proteintech | 10783-1-AP | |
| 抗MCL1抗体 | Proteintech | 16225-1-AP | |
| 抗PELI1抗体 | Proteintech | 12053-1-AP | |
| 抗TRIM21抗体 | Proteintech | 67136-1-Ig | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Proteintech | 20536-1-AP | |
| 抗ITCH抗体 | Cell Signaling Technology | D8Q6D | |
| 抗GAPDH抗体 | ZSGB-BIO | TA-08 | |
| 抗Myc标签抗体 | MBL BIOTECH | 562 | |
| 抗DDDDK标签抗体 | MBL BIOTECH | PM020 | |
| 抗HA标签抗体 | MBL BIOTECH | 561 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源:HL60、Kasumi、U937、MV4-11、KG1、OCI-AML3、MOLM-13、NB4和Lenti-X 293T的培养基及添加物浓度;培养条件:37°C、5% CO2 阅读提示:Methods: Cell lines |
| CTSD敲低实验 | siRNA/shRNA序列及转染方法;敲低效率验证;用于回复实验的CTSD过表达质粒 阅读提示:Methods: Generation of Stable cell lines; Plasmids and transfection; Supplementary Table 2 |
| 体内实验 | 小鼠品系(NSG和C57BL/6J)、周龄、性别;细胞移植数量;N-8给药剂量(20 mg/kg和30 mg/kg)和给药途径(PO),Ara-C剂量和途径,venetoclax剂量和途径;治疗周期;每组样本量(n=5) 阅读提示:Methods: Murine Xenograft Model of Leukemia; Figure 6 legend |
| 药物处理 | N-8的溶解条件(corn oil with 2% DMSO);CHX和MG132的处理浓度和时间(CHX 20 μg/mL,MG132 10 μM,处理时间标注) 阅读提示:Methods: Reagents and antibodies; Figure 5H |
| 蛋白检测 | 抗体稀释度未明确说明;蛋白裂解液配方和提取方法;BCA定量和Western blot步骤 阅读提示:Methods: Coimmunoprecipitation and Western blotting; Reagents and antibodies |