纳米抗体生成与筛选
利用羊驼免疫和噬菌体展示获得H7特异性纳米抗体。
用灭活H7N9病毒免疫羊驼,构建噬菌体展示文库,以H7-HA为靶标进行三轮淘选,筛选出六种独特纳米抗体并表达Fc融合蛋白。
Influenza A Virus H7 nanobody recognizes a conserved immunodominant epitope on hemagglutinin head and confers heterosubtypic protection.
包含体外中和、结合、表位作图(逃逸突变、噬菌体展示、建模)、体内预防/治疗保护(三种亚型)、B细胞免疫优势分析及肽免疫保护等多个独立证据层级。
A549细胞(人肺癌细胞系) MDCK细胞(犬肾细胞系) C57BL/6小鼠 SPF鸡胚
E10纳米抗体序列和CDR3特征(17个氨基酸,含YCSFR序列) E10靶向表位K166和S167(H3编号)在H7 HA中的保守性 E10体内保护实验的给药剂量:预防10 mg/kg(i.p.),治疗25 mg/kg(i.p.) H7N9攻毒剂量:106 EID50;H3N2:107 TCID50;H1N1:3×103 TCID50 逃逸突变病毒(K166T, S167L)的制备和验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
利用羊驼免疫和噬菌体展示获得H7特异性纳米抗体。
用灭活H7N9病毒免疫羊驼,构建噬菌体展示文库,以H7-HA为靶标进行三轮淘选,筛选出六种独特纳米抗体并表达Fc融合蛋白。
评估纳米抗体的结合、中和及血凝抑制能力。
通过免疫荧光、Western blot、中和试验和血凝抑制试验检测六种纳米抗体对H7N9的识别和中和效果。
测试E10对其他亚型(H1、H3)的结合和中和能力。
ELISA检测E10与不同HA蛋白和灭活病毒的结合,中和试验评估对H1N1和H3N2的中和效果。
确定E10作用于病毒感染的哪个阶段。
在不同时间点(早期进入、内化、复制、释放)加入E10,通过qPCR检测HA基因表达水平。
评估E10在小鼠模型中预防和治疗H7N9、H1N1、H3N2感染的效果。
小鼠腹腔注射E10(预防10 mg/kg,治疗25 mg/kg),感染病毒后监测体重和生存率,检测器官病毒滴度和肺病理。
确定E10在HA上的结合位点。
利用逃逸突变(鸡胚和细胞培养)、噬菌体展示肽库和分子建模(ClusPro)定位E10的表位。
确认K166T和S167L突变是E10结合关键,并评估突变株的适应性。
通过IFA、WB、ELISA、中和试验验证E10对突变株失效;比较WT和突变株的生长动力学和体内致病性。
确定E10表位在H7感染中的免疫优势性。
感染WT或MUT病毒的小鼠,14天后取肺、淋巴结、脾脏,流式检测GC和MBC细胞对表位的特异性;ELISPOT检测ASC;ELISA检测血清抗体。
测试包含E10表位的肽疫苗能否提供交叉反应性抗体和保护。
用H7HA166-186肽(与OVA偶联)免疫小鼠,检测血清结合和HI活性,并进行致死攻毒。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT |
| 胎牛血清 | Gibco | 10,270–106 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15,140,163 | |
| Kaighn改良Ham's F12培养基 | Gibco | C11330500BT | |
| Freestyle 293表达培养基 | Gibco | 12338018 | |
| 纳米抗体生产 | ExpiFectamine™ 293转染试剂盒 | Gibco | A14525 |
| 免疫荧光 | 抗人IgG(Fc特异性)-488 | Invitrogen | A55747 |
| DAPI染色液 | Beyotime | C1002 | |
| 西方印迹 | 硝酸纤维素膜 | Cytiva | 1060000 |
| 抗GAPDH抗体 | -- | ab181602 | |
| 抗NP抗体 | Sino Biological | 11675-V08B | |
| 小鼠抗人IgG Fc抗体 | GenScript | 50B4A9 | |
| SuperSignal West Dura延长底物 | Thermo Fisher | 34076 | |
| ELISA | TMB底物 | Thermo Fisher | 34029 |
| 抗小鼠Igκ抗体 | Sino Biological | 68077-R008-H | |
| 小鼠抗人IgG Fc抗体 | Sino Biological | SSA001 | |
| TECAN Sunrise吸光酶标仪 | -- | 16039400 | |
| RNA提取和qPCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| M-MLV逆转录酶 | Promega | M1701 | |
| 流式细胞术 | 抗小鼠CD3 BV510抗体 | BD | 563024 |
| 抗小鼠IgM PE/Dazzle 594抗体 | BioLegend | 314529 | |
| 抗小鼠IgD BV785抗体 | BD | 563618 | |
| 抗小鼠CD38 FITC抗体 | BioLegend | 102705 | |
| 抗小鼠GL7 PE抗体 | BioLegend | 144607 | |
| 抗小鼠B220 Pe-Cy7抗体 | BioLegend | 103221 | |
| 链霉亲和素-APC | BioLegend | 405243 | |
| Brilliant Violet 421链霉亲和素 | BioLegend | 405225 | |
| Brilliant Violet 650链霉亲和素 | BD | 563855 | |
| PerCP5.5链霉亲和素 | BioLegend | 405214 | |
| Live/Dead Aqua染色试剂 | Invitrogen | L34966 | |
| ELISpot | 抗小鼠IgG H+L HRP | Aviva Systems Biology | ORA 04973 |
| BD ELISpot AEC底物 | BD | -- | |
| 病毒培养 | TPCK处理的胰蛋白酶 | -- | -- |
| 完全弗氏佐剂 | Thermo | 77140 | |
| 不完全弗氏佐剂 | Thermo | 77145 | |
| EcoRI-HF限制酶 | NEB | R3101S | |
| XhoI限制酶 | NEB | R0146S | |
| In-Fusion克隆试剂盒 | Takara Bio | 638948 | |
| 肽免疫 | AddaS03™佐剂 | InvivoGen | vac-as03-10 |
| H7HA166-186肽 | GenScript | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 纳米抗体生成 | 羊驼免疫方案(抗原剂量、佐剂、次数、间隔);肽库文库构建方法(引物、载体);淘选条件(靶标浓度、洗脱方式) 阅读提示:Methods:Alpaca immunization and phage display selection |
| 体外功能验证 | 细胞系(A549、MDCK)及其培养条件;病毒感染复数(MOI)和处理时间;中和试验中病毒和纳米抗体孵育时间及温度;血凝抑制试验中病毒单位(HAU) 阅读提示:Methods:Neutralization assay, Hemagglutination inhibition assay, Figure legends of Fig.1 |
| 体内保护实验 | 小鼠品系、年龄、性别;给药剂量和途径(预防10 mg/kg i.p.,治疗25 mg/kg i.p.);攻毒剂量和途径(H7N9 106 EID50 i.n.等);体重监测标准(25%体重减少作为终点) 阅读提示:Methods: Prophylactic and therapeutic nanobody administration in mice |
| 表位鉴定 | 逃逸突变选择的宿主(SPF鸡胚或MDCK细胞);纳米抗体浓度范围;选择轮数;测序方法(NGS) 阅读提示:Methods: Escape mutation selection, Next-generation sequencing (NGS) analysis |
| 免疫优势性分析 | 感染剂量(WT 0.1 TCID50, MUT 50 TCID50);B细胞门控策略;HA蛋白标记方法(荧光素和链霉亲和素比例);ELISPOT实验中细胞数量 阅读提示:Methods: Virus infection of mice and flow cytometry analysis, B cell ELISpot assay |
| 肽免疫 | 肽序列(KSYKNTRKSPAIIVWGIHHSV);偶联OVA;免疫剂量(100 μg)和佐剂(AddaS03);免疫时间表(三次,第三次无佐剂);攻毒时间和剂量(H7N1 1 TCID50) 阅读提示:Methods: Peptide preparation and immunization |