制备和表征AAV8-RBD疫苗
构建表达SARS-CoV-2刺突蛋白三聚体RBD的重组AAV8载体,并验证其抗原表达能力。
通过三重质粒转染AAV293细胞生产AAV8-RBD,纯化后使用TEM表征形态,Western blot检测HEK293T细胞中抗原表达。
Microneedle-delivered adeno-associated virus vaccine amplified anti-viral immunity by improving antigen-presenting cells infection
包含体外细胞实验、体内小鼠模型、流式细胞术、ELISA、ELISPOT、假病毒中和实验等多种实验,进行了机制验证和功能验证。
BALB/c小鼠 B16F10细胞 HEK293T细胞 DC2.4细胞 RAW264.7细胞 HACAT细胞 HDF-a细胞 HSF细胞
微针制备条件(20%海藻糖保护剂,4°C低温两步干燥) AAV8-RBD在微针中的生物活性(100%保留) 接种剂量(1×10^11 vg)和途径(背部皮肤) APC感染效率(流式分析皮肤和淋巴结中DC、LC、巨噬细胞的eGFP阳性率) 免疫应答评估时间点(第14天、第180天)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建表达SARS-CoV-2刺突蛋白三聚体RBD的重组AAV8载体,并验证其抗原表达能力。
通过三重质粒转染AAV293细胞生产AAV8-RBD,纯化后使用TEM表征形态,Western blot检测HEK293T细胞中抗原表达。
开发可溶性微针递送AAV,并优化制备配方以保持病毒活性。
使用HA基质和20%海藻糖作为保护剂,通过两步低温法制备AAV8-GFP微针(MN-A8G)和AAV8-RBD微针(MN-A8R),表征其形态、机械强度、皮肤穿刺能力和转染效率。
检测MN-A8L在皮肤中的转基因表达持续时间。
将MN-A8L应用于BALB/c小鼠背部皮肤,于不同时间点(3,7,14,30,60,120,180,240天)使用活体成像监测荧光强度。
比较微针和皮内注射对皮肤和淋巴结中APC感染效率的影响。
小鼠接种MN-A8G或ID-A8G,第14天取皮肤和腹股沟淋巴结,制备单细胞悬液,流式检测DC、LC、巨噬细胞中eGFP阳性比例。
检测微针递送AAV疫苗对淋巴结中DC成熟和T细胞活化的影响。
接种MN-A8R或ID-A8R,第14天取腹股沟淋巴结,流式检测CD40和CD80表达(DC成熟)以及CD69表达(T细胞活化)。
检测MN-A8R诱导的RBD特异性抗体水平。
小鼠接种MN-A8R或ID-A8R,于第15,30,60,120,180天采血,ELISA检测WT-RBD和Omicron-RBD特异性IgG、IgG1、IgG2a滴度。
评估MN-A8R诱导的T细胞应答和记忆细胞形成。
第180天取小鼠脾脏和腹股沟淋巴结,流式检测Tfh、GC B细胞、IFN-γ分泌CD4/CD8 T细胞、记忆T/B细胞;ELISPOT检测IL-4、IL-2、IFN-γ分泌细胞;ELISA检测细胞因子(IFN-γ、TNF-α、IL-6、IL-17A)水平。
检测MN-A8R诱导的中和抗体对多种假病毒的交叉保护作用。
第180天收集血清,与WT、Lambda、Delta假病毒孵育,加入ACE2-293T细胞,检测IC50值。
评估MN-A8R的局部和全身毒性。
第180天处死小鼠,采集全血进行血常规检测,采集主要器官(肝、心、肺、脾、肾、皮肤)进行H&E染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 材料与试剂 | 透明质酸 | Bloomage Biotechnology | -- |
| SYLGARD™ 184硅酮弹性体 | DOWSIL | -- | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | -- | |
| 小鼠IFN-γ、TNF-α、IL-6和IL-17A ELISA试剂盒 | eBioscience | -- | |
| 所有针对细胞表面标记的抗体 | eBioscience | -- | |
| 小鼠IL-4、IL-2和IFN-γ ELISPOT试剂盒 | Mabtech | -- | |
| SARS-CoV-2刺突RBD重组蛋白 | Sino Biological | 40592-V08H | |
| AAV生产 | FectoVIR转染试剂 | -- | -- |
| 苯并尼酶 | -- | -- | |
| POROS™ CaptureSelect™ AAVX亲和树脂 | Thermo | A36745 | |
| Amicon® Ultra-15超滤管 | Merck | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 |
| 抗SARS-CoV-2刺突小鼠单克隆抗体 | Sino Biological | 40591-MM42 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Thermo | 31431 | |
| ECL底物试剂 | Millipore | WBKLS0100 | |
| ChemiDox成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 微针制备 | 金属微针模具 | Maifeng | -- |
| 海藻糖 | -- | -- | |
| 蔗糖 | -- | -- | |
| 人血清白蛋白 | -- | -- | |
| 微针表征 | 扫描电子显微镜 | JSM-7500F | -- |
| 共聚焦激光扫描显微镜 | Zeiss LSM 800 | -- | |
| 测力计 | Mark-10 | -- | |
| 体内成像 | 活体成像系统 | PerkinElmer | -- |
| 荧光素钾盐 | -- | -- | |
| 分子检测 | 病毒基因组DNA提取试剂盒 | Vazyme | RC313-01 |
| 细胞实验 | IV型胶原酶 | -- | -- |
| ELISA | TMB溶液 | InnoReagents | -- |
| 酶标仪 | Tecan Spark 10M | -- | |
| 假病毒中和实验 | Bright-Glo™荧光素酶底物 | Promega | E2610 |
| 微板发光检测仪 | Thermo | -- | |
| 血常规分析 | 血液分析仪 | Nihon Kohden | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 微针制备 | 微针基质成分(1.67% HA,20%海藻糖);低温两步干燥法(4°C,第一次2小时,第二次6小时);加压填充(0.2 MPa, 3 min)和真空填充(-0.09 MPa, 6 min)条件 阅读提示:见Materials and methods中的'Fabrication and characterization of AAV loaded microneedles' |
| AAV生产 | AAV8-RBD的生产使用三重质粒转染AAV293细胞;转染后72小时收获;纯化使用亲和层析柱;病毒滴度通过qPCR测定。 阅读提示:见Materials and methods中的'Fabrication and characterization of AAV' |
| 动物实验 | BALB/c小鼠,6-8周龄,雌性;单次接种剂量1×10^11 vg;接种部位背部皮肤;微针按压3分钟 阅读提示:见Materials and methods中'APCs infection efficiency at vaccinated sites...'及'Investigation of cellular immune response'等部分 |
| 免疫应答评估 | 抗体检测时间点(第15,30,60,120,180天);ELISA操作细节(包被RBD 0.1 μg/孔,血清3倍梯度稀释);细胞免疫检测(第180天,RBD肽库刺激2 μg/mL,ELISPOT孵育24小时,胞内染色前刺激1小时加Brefeldin A 5小时) 阅读提示:见Materials and methods中的'Detection of RBD-specific antibodies'和'Investigation of cellular immune response' |
| 假病毒中和实验 | 血清灭活(56°C 30分钟);起始稀释1:20,四倍梯度稀释;假病毒量2.25×10^4 TU;ACE2-293T细胞数量15,000/孔;孵育48小时 阅读提示:见Materials and methods中的'SARS-CoV-2 pseudovirus neutralization assay' |