血小板活化在重症肌无力中发挥促炎作用

Platelet activation plays a pro-inflammatory role in myasthenia gravis.

作者信息Qi Wen, Shu Zhang, Yaye Wang, Haoran Liu, Jingsi Wang, Shengyao Su, Nairong Xie, Yan Lu, Li Di, Min Xu, Min Wang, Hai Chen, Suobin Wang, Wenjia Zhu, Xinmei Wen, Jinming Han, Dongshan Wan, Shufang Zhao, Wanting Lu, Zhen Tao, Jianying Duo, Yue Huang, Guoliang Chai, Ruisheng Duan, Xiaoli Li, Junwei Hao, Yuwei Da
PMID41038808
发布时间2025-10
DOI10.1038/s41467-025-63750-2

实验完整度

多证据层级:单细胞转录组、批量转录组、流式细胞术、电镜形态学、体外共培养功能实验及临床样本验证,且包含功能验证和机制验证。

主要模型

外周血单个核细胞(PBMC) 洗涤血小板 中性粒细胞与血小板共培养 naïve CD4+ T细胞与血小板共培养

重点核对

血小板计数增加:nGMG患者(n=65)vs HC(n=25)p=0.007 CD62P+血小板比例:nMG(n=50)vs HC(n=20)p=0.0307 sCD40L水平:nMG(n=24)vs HC(n=18)p=0.0199 血小板-中性粒细胞聚集体(PNAs)与QMG评分正相关(R=0.46, p=0.00084) RANTES水平在nMG血小板培养上清和血浆中升高

摘要

重症肌无力(MG)是一种通过自身抗体破坏神经肌肉接头功能的自身免疫性疾病。血小板正逐渐成为MG发病机制中的关键角色,连接先天免疫和适应性免疫。我们利用批量RNA测序和单细胞RNA测序,分析了AChR+未接受免疫治疗的MG(nMG)患者外周血单个核细胞(PBMC)中血小板转录组特征及其与免疫系统的相互作用。nMG患者表现出与活化、炎症和细胞骨架调节相关的基因上调。在PBMC中观察到血小板计数增加、活化、形态改变、CD62P表达增强以及血浆CD40L水平升高,这些变化在达到微小临床表现(MMS)后减弱。功能上,血小板与白细胞的相互作用增强,形成与疾病严重程度相关的聚集体。这些特征在静脉注射免疫球蛋白或长期免疫抑制治疗后恢复至基线水平。本研究强调了血小板活化在MG中的关键作用,并支持以血小板为靶点的治疗。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
血小板活化在重症肌无力发病机制中的作用及其与免疫细胞相互作用的机制。
核心机制
重症肌无力中血小板活化增强,通过NETs形成与中性粒细胞形成双向活化循环,并通过RANTES等可溶性因子促进CD4+ T细胞向Th1分化并抑制Treg分化。
主要证据
单细胞和批量RNA测序显示血小板活化基因上调;流式细胞术显示CD62P表达和sCD40L水平升高;体外共培养实验显示血小板与中性粒细胞双向活化;血小板上清促进Th1细胞因子分泌并抑制Treg分化。
研究意义
本研究强调了血小板活化在MG相关炎症中的关键作用,并提示血小板及其产物(如PNAs和细胞因子)可作为疾病发展和预后的生物标志物,支持以血小板为靶点的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组分析

在PBMC水平鉴定MG患者中血小板数量的增加及转录特征的变化。

对6例个体的PBMC进行10X Genomics单细胞RNA测序,鉴定16种免疫细胞类型,分析血小板比例和基因表达。

2

批量RNA测序

表征nMG患者洗涤血小板中的转录组变化。

对3例nMG和3例HC的洗涤血小板进行批量RNA测序,鉴定差异表达基因并进行通路富集分析。

3

血小板活化表型验证

在蛋白质水平验证血小板活化状态及形态学变化。

通过流式细胞术检测CD62P表达、sCD40L水平及血小板大小(FSC/SSC),并通过透射电镜观察血小板形态。

4

血小板-白细胞聚集体分析

评估活化血小板与白细胞(尤其是中性粒细胞)的相互作用。

通过流式细胞术检测血小板-白细胞聚集体(PLAs),特别是血小板-中性粒细胞聚集体(PNAs),并分析其与疾病严重程度的相关性。

5

血小板-中性粒细胞双向活化验证

探究血小板与中性粒细胞之间的双向活化机制。

将血小板与中性粒细胞或NETs共培养,检测血小板活化(CD62P MFI)和NETs形成(MPO-DNA复合物)。

6

血小板-T细胞相互作用验证

探究血小板对CD4+ T细胞增殖和分化的影响。

将血小板或血小板上清与naïve CD4+ T细胞共培养,检测T细胞增殖(CFSE)和分化(IFNγ, TNFα, IL17A, Foxp3)。

7

RANTES中和实验

验证RANTES在血小板介导的T细胞功能调节中的关键作用。

使用中和抗体预处理血小板,然后收集上清与T细胞共培养,检测T细胞增殖和分化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Ficoll-Paque培养基Dakewe7111011
Chromium单细胞5'试剂盒v310x Genomics--
NovaSeq 6000测序平台Illumina--
Qubit 3.0荧光计Life Technologies--
片段分析仪--1.0.2.9
Illumina MiSeq测序平台Illumina--
FACSAria III流式细胞仪BD Biosciences--
FlowJo软件TreeStarv10.8.0
FITC标记抗人CD62P抗体Biolegend304903
BV421标记抗人CD15抗体Biolegend323039
PE/Cyanine7标记抗人CD14抗体Biolegend325617
PerCP标记抗人CD45抗体Biolegend368505
PE标记抗人CD61抗体Biolegend336405
红细胞裂解液SolarbioR1010
磷酸盐缓冲液SolarbioP1020
牛血清白蛋白Miltenyi130-091-376
JEM-1400电子显微镜JEOL--
乙醇General ReagentP3223264
环氧丙烷HUSHI80059118
EPON 812树脂SPI1280505
醋酸铀酰SPI-CHEM1121018
柠檬酸铅Electron Microscopy Sciences17800
CD66abce磁珠分离试剂盒Miltenyi130-092-393
RPMI-1640培养基HyCloneSH30027.01
胎牛血清Gibco26170043
青霉素-链霉素BeyotimeC0222
抗MPO单克隆抗体Proteintech22225-1-AP
PicoGreen dsDNA定量试剂Yeasen12641ES01
MojoSort人CD4初始T细胞分离试剂盒Biolegend480041
CFSE细胞分裂示踪试剂盒Biolegend423801
Dynabeads人T细胞激动剂CD3/CD28Gibco11161D
细胞活化混合物Biolegend423302
BD GolgiStop蛋白转运抑制剂BD Biosciences420701
Zombie染料Biolegend423105
PerCP标记抗人CD3抗体Biolegend300427
PE/Cyanine7标记抗人IFNγ抗体Biolegend502527
PE标记抗人TNFα抗体Biolegend502908
Brilliant Violet 421标记抗人IL17A抗体Biolegend512321
Alexa Fluor 647标记抗人Foxp3抗体Biolegend320013
True-Nuclear转录因子缓冲液套装Biolegend424401
抗RANTES中和抗体Biolegend515502
抗PF4中和抗体Sino Biological10874-RP01
抗TGF-β中和抗体Biolegend146703
LEGENDplex定制检测试剂盒Biolegend--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
PBMC分离
使用Ficoll-Paque密度梯度离心,PBMC分离后洗涤三次,细胞活力>95%
阅读提示:Methods: 10X Genomics single-cell sequencing of peripheral blood mononuclear cells
单细胞RNA测序
使用10x Genomics Chromium Single Cell 5'试剂盒,细胞上样量约13,000个,测序平台NovaSeq 6000,比对参考基因组GRCh38 V3.0.0
阅读提示:Methods: 10X Genomics single-cell sequencing of peripheral blood mononuclear cells
批量RNA测序
洗涤血小板分离条件:离心190g 20min、190g 10min、1000g 10min,加入PGI2和indomethacin;RNA测序使用Smart-seq2方案,MiSeq平台35bp双端读长
阅读提示:Methods: Bulk RNA sequencing of purified, washed platelets
流式分析
抗CD62P-FITC(1:100)、抗CD15-BV421(1:50)、抗CD14-PE/Cy7(1:300)、抗CD45-PerCP(1:100)、抗CD61-PE(1:100),室温孵育30分钟
阅读提示:Methods: Peripheral blood flow cytometry analysis
血小板-中性粒细胞共培养
血小板:中性粒细胞=100:1,RPMI-1640+10%FBS+1%青霉素-链霉素,37°C 5%CO2,24小时
阅读提示:Methods: Platelet-neutrophil ex vivo interaction
血小板-T细胞共培养
Tn细胞与血小板比例1:100,非接触共培养,3天,刺激用PMA(50ng/mL)和ionomycin(1μg/mL)6小时
阅读提示:Methods: Platelet-Tn ex vivo interaction
细胞因子中和
中和抗体浓度:抗RANTES 1μg/mL、抗PF4 1:300、抗TGF-β 13.5μg/mL;孵育过夜
阅读提示:Methods: Cytokine neutralization experiment