CD36介导的蛋白降解靶向嵌合体的内吞作用

CD36-mediated endocytosis of proteolysis-targeting chimeras.

作者信息Zhengyu Wang, Bo-Syong Pan, Rajesh Kumar Manne, Jungang Chen, Dongwen Lv, Minmin Wang, Phuc Tran, Tsigereda Weldemichael, Wei Yan, Hongfei Zhou, Gloria M Martinez, Jingwei Shao, Che-Chia Hsu, Robert Hromas, Daohong Zhou, Zhiqiang Qin, Hui-Kuan Lin, Hong-Yu Li
PMID40250420
期刊Cell
发布时间2025-06-12
DOI10.1016/j.cell.2025.03.036

实验完整度

高

包含体外细胞敲低/敲入、体内异种移植瘤模型、SPR结合分析、代谢组学UPLC-MS、分子建模等多个独立证据层级,并进行了功能及机制验证。

主要模型

LNCaP前列腺癌细胞 22Rv1前列腺癌细胞 HCC1806三阴性乳腺癌细胞 小鼠异种移植瘤模型

重点核对

CD36敲低对PROTACs细胞毒性和蛋白降解的影响 CD36结合亲和力与PROTACs摄取和功效的关系 前药策略中酯键的可切割性及活性药物释放 CD36表达水平与ARV-110疗效的关联

摘要

被动扩散并不能解释为什么许多药物由于过大和/或极性过强而无法突破常规膜渗透规则,例如蛋白降解靶向嵌合体(PROTACs,通常分子量>800 Da)。在这里,我们使用生物素化化学探针靶点垂钓和基因敲低/敲入方法,发现膜分化簇36(CD36)结合并促进多种PROTACs(例如,SIM1-Me、MZ1和临床药物ARV-110)以及大尺寸和/或高极性小分子抑制剂(例如,rapalink-1、雷帕霉素、navitoclax、birinapant、tubacin和阿霉素)的摄取和功效,通过CD36介导的EEA1/Rab5内体级联在体外和/或体内发挥作用。随后,我们设计了一种新型化学内吞药物化学策略,通过前药方法进行结构修饰以改善PROTACs与CD36的结合,同时显著提高PROTACs的渗透性和溶解性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探明超出类药五规则(bRo5)的大分子(如PROTACs)进入细胞的机制,以及能否通过靶向该机制提高药物渗透性和疗效。
核心机制
CD36作为膜受体结合PROTACs等bRo5分子,通过EEA1/Rab5早期内体级联介导其内吞摄取。
主要证据
通过生物素化探针垂钓、质谱和免疫印迹鉴定CD36;利用shRNA敲低、过表达及恢复实验,在LNCaP、22Rv1、HCC1806细胞及异种移植瘤模型中证明CD36敲低抑制PROTACs的摄取、降解活性和抗肿瘤效果。
研究意义
揭示CD36介导的内吞是bRo5药物细胞摄取的主要途径,提出化学内吞药物化学策略,通过前药修饰增强CD36结合,同时提高渗透性和溶解度,有望改善药物生物利用度和疗效,并为精准医疗提供潜在生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

PROTACs与CD36结合鉴定

验证PROTACs能否直接结合CD36蛋白。

设计和合成生物素化PROTAC探针(BRD4-VHL-biotin),进行链霉亲和素拉下实验,结合质谱鉴定膜蛋白;使用表面等离子体共振(SPR)测定结合亲和力。

2

CD36介导PROTACs摄取和活性验证

验证CD36介导的内吞对PROTACs细胞摄取和功能的影响。

在LNCaP等细胞中敲低CD36,检测PROTACs诱导的靶蛋白降解、细胞活力、集落形成、细胞内药物浓度(UPLC-MS)和体内异种移植瘤生长。

3

CD36介导PROTACs荧光探针摄取

可视化验证CD36介导PROTACs的细胞内吞。

设计合成多种BDP-FL标记的PROTAC探针,在LNCaP细胞中敲低CD36、EEA1、Rab5,利用共聚焦显微镜观察探针摄取和亚细胞共定位。

4

CD36介导其他bRo5分子摄取

验证CD36是否普遍介导其他大分子或高极性药物的摄取。

测试不同bRo5药物(rapalink-1、雷帕霉素、navitoclax等)对CD36敲低细胞的细胞毒性,以及BDP-FL标记的探针摄取。

5

优化PROTACs以增强CD36结合和摄取

通过结构修饰提高PROTACs对CD36的结合亲和力和细胞摄取。

基于MZ1设计系列前药(MZ1-Cs-Na、MZ1-Cs-NH、MZ1-Cs-NB),引入可切割酯键和不同电荷/疏水性基团,评估CD36结合、BRD4降解和细胞内浓度。

6

优化PROTACs的体内抗肿瘤活性评估

评估增强CD36介导摄取的前药策略对体内抗肿瘤疗效的影响。

在HCC1806和22Rv1异种移植瘤模型中,比较优化PROTAC(MZ1-C14-Na和MZ1-C12-NB)与母体MZ1的肿瘤生长抑制效果,并通过免疫组织化学检测BRD4降解。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
D-(+)-生物素Thermo Fisher Scientific58-85-5
Dynabeads MyOne链霉亲和素T1磁珠Thermo Fisher Scientific65601
人重组CD36蛋白,胞外域,His标签Sino Biological10752-H08H
CM5传感芯片Cytiva--
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
噻唑蓝四氮唑溴盐Sigma-AldrichM5655
细胞增殖试剂WST-1Roche05015944001
Clarity Max Western ECL底物试剂盒BIO-RAD1705062
蛋白酶抑制剂混合物Roche04693132001
ProlongGold封片剂Life TechnologiesP36930
TurboFect转染试剂Thermo Fisher ScientificR0531
聚凝胺Sigma-AldrichTR1003
Mem-PER Plus膜蛋白提取试剂盒Thermo Fisher Scientific89842
NE-PER™核和胞质提取试剂Thermo Fisher Scientific78833
BirinapantMedChemExpress1260251-31-7
阿霉素Selleckchem23214-92-8
NavitoclaxAPExBIO923564-51-6
紫杉醇Selleckchem33069-62-4
Rapalink-1MedChemExpress1887095-82-0
雷帕霉素MedChemExpress53123-88-9
TubacinMedChemExpress537049-40-4
BDP FL NHS酯Lumiprobe61420
D-(+)-生物素NHS酯Combi-Blocks35013-72-0
人血清转铁蛋白,Alexa Fluor™ 546偶联物InvitrogenT23364

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源和培养基条件:LNCaP、22Rv1、HCC1806细胞培养于RPMI-1640培养基,添加10% FBS和抗生素。
阅读提示:STAR Methods, Cell culture
CD36敲低和过表达
shRNA序列、转染方法、筛选条件(嘌呤霉素浓度)
阅读提示:STAR Methods, Lentiviral infection generation and stable knockdown generation; Key resources table
PROTACs处理
药物浓度、处理时间、溶剂对照(DMSO)
阅读提示:Results, Figure 2 legend
细胞活力检测
MTT实验:细胞接种密度(1×10^3)、处理时间(6天)、检测波长570 nm;WST-1实验流程
阅读提示:STAR Methods, Cell viability and cytotoxicity assay
免疫印迹
抗体信息、裂解缓冲液、ECL显色
阅读提示:STAR Methods, Immunoblotting assays; Key resources table
SPR分析
蛋白固定方法(CM5芯片)、分析物浓度、运行缓冲液
阅读提示:STAR Methods, Surface plasmon resonance studies
体内实验
细胞接种量、小鼠品系和性别、给药方案(剂量、频率、途径)、肿瘤体积测量和计算
阅读提示:STAR Methods, Animal studies