人肾癌组织免疫荧光检测
检测人肾癌肿瘤细胞是否表达免疫细胞标记物
对21例人肾癌石蜡切片进行免疫荧光染色,检测CAIX、CD14、CD16、CD56、CD45RA等标记物共定位
Renal cancer cells acquire immune surface protein through trogocytosis and horizontal gene transfer.
包含患者肿瘤组织(21例IF,4例流式)的体外细胞共培养、功能验证(转膜实验)、体内外DNA转移追踪及转录组学分析,多层验证。
人肾细胞癌细胞系(Caki-1, ACHN, A498, 786O) 原代人T细胞与Jurkat T细胞共培养体系 人肾透明细胞癌(ccRCC)肿瘤组织及患者样本
肿瘤细胞与T细胞共培养比例1:1,共培养时间16小时 Transwell屏障用于验证细胞接触依赖性转移 CD45, CD14, CD16, CD56和CAIX抗体克隆及荧光标记 EdU标记T细胞跟踪DNA转移 GFP-H2B标记T细胞验证基因组DNA转移
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测人肾癌肿瘤细胞是否表达免疫细胞标记物
对21例人肾癌石蜡切片进行免疫荧光染色,检测CAIX、CD14、CD16、CD56、CD45RA等标记物共定位
定量分析人肾癌肿瘤细胞上免疫标记物的表达
新鲜人肾癌组织经胶原酶消化后,进行流式细胞术分析,检测CAIXhi肿瘤细胞上CD45、CD14、CD16、CD56的表达
验证肾癌细胞系能否通过与T细胞共培养获得CD45
将RCC细胞系(Caki-1, ACHN, A498, 786O)与原代人T细胞或Jurkat T细胞共培养16小时,通过流式细胞术检测CD45转移,以及Transwell屏障抑制试验
确定肿瘤细胞是否转录免疫细胞相关基因
共培养后FACS分选RCC细胞,RT-qPCR检测CD45基因表达;分选人RCC肿瘤中吞噬性肿瘤细胞(CAIXhiCD45hi)和非吞噬性肿瘤细胞(CAIXhiCD45low),进行NanoString基因表达分析
验证免疫细胞DNA是否能转移到肿瘤细胞
使用GFP-H2B标记的原代人T细胞和EdU标记的原代人T细胞与RCC细胞系共培养,通过流式细胞术和共聚焦显微镜检测DNA转移,并用Transwell作为对照
确认人肾癌肿瘤细胞中是否存在CD45+吞噬体
用共聚焦显微镜对人肾癌组织切片进行成像,检测CD45+和Hoechst+的细胞内结构
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | X-VIVO™ 15无血清造血细胞培养基 | Lonza | 02-053Q |
| ImmunoCult™人CD3/CD28/CD2 T细胞激活剂 | Stem Cell Technologies | 10970 | |
| 重组人IL-2 | R&D | BT-002-010 | |
| Pan T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-535 | |
| 细胞分离 | 4型胶原酶 | Worthington | LS0004186 |
| 流式分析 | Ghost Dye™ Violet 450 | Tonbo Biosciences | 13-0863-T100 |
| Human BD Fc Block™ | BD Pharmingen™ | 564220 | |
| 1X红细胞裂解/固定液 | eBioscience™ | 00-5333-57 | |
| BD FACSCanto™ II系统 | BD | -- | |
| 流式分选 | BD FACSAria II细胞分选系统 | BD | -- |
| RNA提取 | RNeasy Micro试剂盒 | Qiagen | 74004 |
| 免疫荧光染色 | 抗原修复液 | Vector Laboratories | H-3300 |
| Invitrogen ReadyProbes™组织自发荧光淬灭试剂盒 | Invitrogen | -- | |
| Fluoromount-G™封片剂 | Invitrogen | 00-4958-02 | |
| Echo Revolution荧光显微镜 | Echo Inc. | -- | |
| Hoescht核染色 | -- | -- | |
| 流式分析 | CD45抗体(克隆2D1) | BioLegend | 368532 |
| CAIX抗体 | R&D Biosystems | FAB2188G | |
| 共聚焦显微镜 | 蔡司710激光扫描共聚焦显微镜 | Zeiss | -- |
| 慢病毒转导 | GFP-H2B慢病毒载体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 免疫荧光染色 | 石蜡切片来源(人RCC肿瘤)、一抗浓度(按推荐稀释)、抗原修复时间(10分钟)、封闭液(20%驴血清/1X DPBS-0.1% Tween-20) 阅读提示:Methods:免疫荧光染色实验 |
| 流式细胞术 | 新鲜肿瘤组织处理(1mm²碎片,1mg/ml胶原酶4型,37°C,30分钟)、细胞染色(抗体推荐浓度,30分钟,室温)、红细胞裂解/固定(40分钟) 阅读提示:Methods:流式细胞术实验 |
| 共培养实验 | RCC细胞系(Caki-1, ACHN, A498, 786O)与T细胞(原代或Jurkat)共培养比例(1:1)、共培养时间(16小时)、Transwell屏障对照 阅读提示:Methods:细胞培养、共培养实验 |
| DNA转移实验 | GFP-H2B T细胞转导效率、EdU标记条件(浓度和时间)、共培养后流式细胞术分析窗口(双色:GFP/EdU和CD45) 阅读提示:Methods:慢病毒转导、共培养实验、Results:DNA转移实验 |