体外验证 Spry 缺失对上皮分支的影响
验证 Spry1/2/4 缺失的成纤维细胞是否促进乳腺上皮类器官的分支。
从野生型和 Spry1fl/fl;Spry2fl/fl;Spry4fl/fl 小鼠中分离原代成纤维细胞,经 Ad-Cre-GFP 感染获得对照和 Spry1,2,4-KO 成纤维细胞,并与野生型乳腺类器官在 Matrigel 中共培养;同时使用条件培养基培养类器官。
Sprouty genes regulate activated fibroblasts in mammary epithelial development and breast cancer.
包含体外共培养分支实验、体内基因敲除小鼠模型、单细胞转录组分析、磷酸化蛋白质组学、胶原收缩实验及人类乳腺癌数据库分析等至少两个独立证据层级,并含功能验证与机制验证。
小鼠乳腺上皮类器官与基质成纤维细胞共培养体系 Fsp1-cre; Spry1Δ/fl; Spry2Δ/fl; Spry4Δ/fl (Spry-TKO) 小鼠模型 小鼠乳腺基质成纤维细胞亚群 (MSF-1至MSF-4) 人类乳腺癌样本及4T1小鼠乳腺癌模型
Spry1、Spry2、Spry4 在基质成纤维细胞中的敲除效率(Ad-Cre-GFP 感染后 mRNA 水平) 共培养体系中类器官与成纤维细胞的比例(约1:100)及培养时间(4天) 体内实验中 Fsp1-cre 介导的 Spry 基因敲除及对照基因型(Fsp1-cre; Spry1fl/+; Spry2fl/+; Spry4fl/+) 单细胞 RNA 测序中上皮细胞和成纤维细胞的分离及质量控制标准(基因数200-5900,线粒体基因<7%,核糖体基因<49%) MSF 亚群分选时使用的表面标志物(CD26、CD36、CD142)及流式抗体稀释度(1:100)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证 Spry1/2/4 缺失的成纤维细胞是否促进乳腺上皮类器官的分支。
从野生型和 Spry1fl/fl;Spry2fl/fl;Spry4fl/fl 小鼠中分离原代成纤维细胞,经 Ad-Cre-GFP 感染获得对照和 Spry1,2,4-KO 成纤维细胞,并与野生型乳腺类器官在 Matrigel 中共培养;同时使用条件培养基培养类器官。
验证 Fsp1-cre 介导的 Spry 基因敲除是否加速乳腺导管生长和分支。
使用 Fsp1-cre; Spry1Δ/fl; Spry2Δ/fl; Spry4Δ/fl (Spry-TKO) 小鼠及其对照同窝小鼠,通过 Carmine Red 染色比较 5周、7周和12周时第4对乳腺的导管延伸和分支点。
确定 Spry 缺失对成纤维细胞中 RTK 信号通路的影响。
对对照和 Spry1,2,4-KO 成纤维细胞进行磷酸化蛋白的质谱分析,并比较 ERBB、VEGFR 和 IGFR 家族信号活性。
解析 Spry 缺失引起的上皮细胞和成纤维细胞的转录组变化。
从7周龄对照和 Spry-TKO 小鼠乳腺中分离上皮细胞和成纤维细胞,进行 scRNA-seq分析,包括 GSEA、GO 分析、CellChat 分析和 RNA velocity。
确定成纤维细胞亚群的特性及其在分支促进中的作用。
通过 UMAP 分析识别四个 MSF 亚群,利用 marker 基因和 FACS 分离亚群,验证 marker 表达,并进行共培养分支实验比较各亚群的促分支能力;同时验证亚群对 Erlotinib 的增殖反应。
评估 Spry 基因和 MSF-2 亚群在乳腺癌中的变化。
利用 TCGA 数据库和公开的 scRNA-seq 数据(人类乳腺癌和4T1模型),分析 Spry1/2/4的表达及成纤维细胞亚群的大小。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12 培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Sigma | -- | |
| 胰岛素 | Sigma | -- | |
| 转铁蛋白 | -- | -- | |
| 硒 | -- | -- | |
| 基质胶 | Corning | -- | |
| I型胶原 | Corning | -- | |
| 胶原酶 | Sigma | -- | |
| 胰蛋白酶 | Life Technologies | -- | |
| 脱氧核糖核酸酶 I | -- | -- | |
| 药物处理 | 厄洛替尼 | -- | -- |
| 蛋白检测 | RIPA 裂解液 | Beyotime | P0013J |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Bimake | B15001, | |
| BCA 蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | 23225 | |
| 预制胶 | Meilun | MA0295 | |
| 牛血清白蛋白 | Sigma | WXBC3116V | |
| 显色底物 | Epizyme | SQ101L | |
| ERK1/2 抗体 | CST | 9102 | |
| 磷酸化 ERK1/2 抗体 | CST | 9101 | |
| GAPDH 抗体 | ABclonal | AC033 | |
| HRP 标记的山羊抗兔二抗 | CST | 7074S | |
| HRP 标记的山羊抗小鼠二抗 | CST | 7076S | |
| 流式分析 | 抗 CD31 抗体 | BioLegend | 102417 |
| 抗 Ter119 抗体 | BioLegend | 116221 | |
| 抗 CD45 抗体 | BioLegend | 100432 | |
| 抗 CD140a 抗体 | BioLegend | 135907 | |
| 抗 CD142 抗体 | Sino Biological | 50413-RP01 | |
| 抗 CD26 抗体 | BioLegend | 137804 | |
| 抗 CD36 抗体 | Thermo Fisher | 56-0362-82 | |
| RNA提取 | RNAqueous 试剂盒 | Life Technologies | -- |
| RNeasy Mini 试剂盒 | Qiagen | -- | |
| qPCR | TaqMan 逆转录试剂 | Life Technologies | -- |
| SYBR Green PCR 预混液 | Life Technologies | -- | |
| ABI 7900HT 实时荧光定量 PCR 系统 | Life Technologies | -- | |
| QuantStudio 12K Flex 实时荧光定量 PCR 系统 | Life Technologies | -- | |
| 细胞培养耗材 | 96孔低吸附板 | Corning | 3474 |
| 24孔板 | Thermo Fisher | 174930 | |
| 成像设备 | Leica M205 体视显微镜 | Leica | -- |
| Amersham Imager 680 成像系统 | GE Healthcare | -- | |
| SteREO Lumar V12 体视显微镜 | Zeiss | -- | |
| 流式细胞术 | BD Aria III 流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 动物实验 | 表达 Cre-GFP 的腺病毒 | Genkai Genetics | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外共培养分支实验 | 成纤维细胞与类器官比例(约1:100)、共培养时间(4天)、Matrigel 使用、成纤维细胞基因型(对照 vs Spry1,2,4-KO) 阅读提示:Methods: "Mammary epithelial organoids co-cultured with fibroblasts" |
| 体内乳腺发育分析 | 小鼠基因型(Spry-TKO vs 对照)、小鼠年龄(5、7、12周)、雌鼠发情状态、样本量(≥3只/基因型) 阅读提示:Results: "Loss of Spry1, Spry2, and Spry4 in mammary stromal fibroblasts causes accelerated epithelial branching" 和图1图例 |
| 单细胞 RNA 测序 | 小鼠年龄(7周)、每基因型小鼠数量(2只)、细胞质量控制标准(基因数、线粒体%)、分析流程 阅读提示:Methods: "Single cell RNA sequencing and bioinformatics analysis" |
| MSF 亚群分选与功能分析 | FACS 标志物(CD26、CD36、CD142)、抗体克隆号及稀释度、分选后验证 marker 表达、共培养分支条件 阅读提示:Methods: "FACS" 和 Results: "MSF-2 subgroup consists of activated fibroblasts" |
| Western blotting 验证 RTK 信号 | 血清饥饿时间(24小时)、刺激时间点、抗体稀释度、蛋白上样量 阅读提示:Methods: "Western blotting" |