开发HepG4-seq方法检测天然G4
开发一种不依赖抗体的方法,用于在活细胞中特异性标记和检测内源G4。
利用G4-hemin复合物的过氧化物酶活性,在H2O2存在下催化生物素-苯胺(Bio-An)对G4及其邻近DNA的生物素化,然后通过mSA-scFv和Tn5进行CUT&Tag。
Genome-wide mapping of native co-localized G4s and R-loops in living cells.
包含HepG4-seq、HBD-seq、RNA-seq、Dhx9 CUT&Tag等全基因组测序,以及细胞增殖、细胞周期、Western blot、免疫荧光和胚胎体分化等功能验证,形成多层级证据。
HEK293细胞 小鼠胚胎干细胞(mESCs) Dhx9敲除mESCs(dhx9KO) 小鼠胚胎体(EBs)
HepG4-seq标签条件:25 µM hemin、500 µM Bio-An处理2小时,1 mM H2O2激活1分钟 Dhx9敲除mESC系构建及验证(Western blot和免疫荧光) Dhx9 CUT&Tag抗体(ABclonal A4563)及浓度(0.04 µg per 1×10^5 cells) 细胞处理:ML216(25 µM)或NSC617145(3 µM)处理HEK293细胞16小时 生物信息学分析参数:SEACR峰值调用(0.05 non-stringent),差异分析阈值(p<0.05,FC≥1.5)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
开发一种不依赖抗体的方法,用于在活细胞中特异性标记和检测内源G4。
利用G4-hemin复合物的过氧化物酶活性,在H2O2存在下催化生物素-苯胺(Bio-An)对G4及其邻近DNA的生物素化,然后通过mSA-scFv和Tn5进行CUT&Tag。
验证HepG4-seq捕获的是真正的G4结构。
通过免疫荧光验证标记的特异性;通过BG4 CUT&Tag确认hemin处理不显著改变G4水平;通过pqsfinder预测的PQS和HOMER基序分析评估富集。
开发优化的R-loop检测方法,避免GST融合蛋白聚集问题。
表达纯化HBD-V5(EGFP-2xHBD-V5),利用V5抗体进行CUT&Tag。
识别细胞中天然共定位的G4和R-loop区域。
对HEK293和mESC进行HepG4-seq和HBD-seq,通过生物信息学交集分析共定位峰。
了解共定位G4和R-loop在基因组上的位置及其与转录活性的关系。
使用HOMER注释峰分布,进行metagene分析,结合RNA-seq和组蛋白修饰ChIP-seq数据(H3K4me3、H3K27ac等)分析关联。
探究解旋酶Dhx9是否直接调控共定位G4和R-loop的形成和消解。
通过CRISPR/Cas9生成dhx9KO mESC系,进行HepG4-seq和HBD-seq比较WT和KO,并进行Dhx9 CUT&Tag。
验证Dhx9缺失是否影响mESC的自我更新和分化能力。
通过细胞增殖实验(CCK-8)、细胞周期分析(流式)、EB分化实验、qRT-PCR检测多能性标志物。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 活细胞标记 | 氯化血红素 | Sigma | 51280 |
| 生物素-苯胺 | Iris Biotech | LS-3970 | |
| 抗体 | 抗Dhx9(兔单克隆抗体) | ABclonal | A4563 |
| 抗GAPDH(小鼠单克隆抗体) | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 抗Nanog(兔单克隆抗体) | Proteintech | 14295-1-AP | |
| 抗Nanog(小鼠单克隆抗体) | Developmental Studies Hybridoma Bank (DHSB) | PCRP-NANOGP1-2D8 | |
| 抗Oct4(小鼠单克隆抗体) | Santa Cruz | sc-5279 | |
| 抗Lin28a(兔单克隆抗体) | Proteintech | 11724-1-AP | |
| 抗兔IgG(H+L)HRP(山羊多克隆抗体) | Bioss | bs-0295G-HRP | |
| 抗小鼠IgG(H+L)HRP(山羊多克隆抗体) | SinoBiological | SSA007 | |
| 抗小鼠IgG(H+L)Alexa Fluor 488(驴多克隆抗体) | Invitrogen | A-21202 | |
| 重组蛋白 | 链霉亲和素-Alexa647 | Bioss | bs-0437P-AF647 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma | D5671 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099-141 | |
| 非必需氨基酸溶液 | Sigma | M7145 | |
| GlutaMAX补充剂 | Sigma | G8541 | |
| β-巯基乙醇 | Sigma | M3148 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| 小分子处理 | ML216 | Selleck | S0469 |
| NSC 617145 | MCE | HY-110185 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| RT-qPCR | MonScript RTIII All-in-One Mix逆转录试剂盒 | Monad | MR05101M |
| SYBR Green PCR预混液 | -- | -- | |
| 细胞周期分析 | DAPI染色液 | -- | -- |
| RNase A | NEB | T3018-2 | |
| 细胞增殖 | CCK-8细胞增殖-毒性检测试剂盒 | Solarbio | CA1210 |
| 免疫荧光 | Hoechst33342染料 | -- | -- |
| RNA-seq | poly(A) mRNA捕获模块 | ABclonal | RK20340 |
| Fast RNA-seq文库构建试剂盒V2 | ABclonal | RK20306 | |
| NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| HepG4-seq | 伴刀豆球蛋白A包被磁珠 | Epizyme Biotech | YJ012 |
| 过氧化氢 | -- | -- | |
| HBD-seq | RNase H | NEB | M0297S |
| Dhx9 CUT&Tag | 抗V5抗体 | Sino Biological | 100378-T36 |
| 抗兔IgG抗体 | Sino Biological | SSA018 | |
| EB分化 | 抗坏血酸 | Sigma | A4544 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| HepG4-seq | 标记条件:hemin和Bio-An浓度及孵育时间(25 μM hemin、0.5 mM Bio-An孵育2小时),H2O2浓度及反应时间(1 mM,1分钟),细胞数量和磁珠结合条件 阅读提示:Materials and methods 下 'HepG4-seq' 小节 |
| HBD-seq | 重组HBD-V5浓度(3 μg per 1×10^5 cells),anti-V5抗体浓度(2 μg),洗涤条件 阅读提示:Materials and methods 下 'BG4-seq, HBD-seq' 小节 |
| Dhx9 CUT&Tag | Dhx9抗体浓度(0.04 μg per 1×10^5 cells),固定时间(0.1%甲醛2分钟) 阅读提示:Materials and methods 下 'Dhx9 CUT&Tag' 小节 |
| dhx9KO mESC建立 | sgRNA序列(ATCAGAGGTGTCGCTAAGTA和GAAGGGTTACCAGCACCAAT),转染方法(Nucleofector 2b),筛选浓度(G418 400 µg/ml,puromycin 1 µg/mL) 阅读提示:Materials and methods 下 'Generation of Dhx9KO ESCs with CRISPR/Cas9 genome editing' 小节 |
| EB分化 | 分化培养基(EB-Diff培养基无LIF)、细胞密度(10,000 cells/mL)、抗坏血酸浓度(50 µg/mL)、培养时间(5天) 阅读提示:Materials and methods 下 'mESC differentiation into embryoid bodies' 小节 |