发现抑制EGFR的强效变构抗体

Discovery of potent allosteric antibodies inhibiting EGFR.

作者信息Léxane Fournier, Lukas Pekar, Birgitta Leuthner, Harald Kolmar, Lars Toleikis, Stefan Becker
PMID39304998
期刊MAbs
发布时间2024-01
DOI10.1080/19420862.2024.2406548

实验完整度

包含从抗体发现、生化结合分析、细胞功能实验到信号通路验证的多个层级,并进行了体内外模型验证。

主要模型

EGFR表达的三阴性乳腺癌细胞系MDA-MB-468 酵母表面展示VHH文库 报告基因细胞系(SRE Reporter – HEK293)

重点核对

EGF Fc融合蛋白与EGFR的预孵育比例(3:1)及时间(1.5小时于室温) FACS分选策略中的双重门控设置及后续严格门控条件 抗体的EC50和IC50值测定,特别是30555_A2在MAPK/ERK通路中的IC50为38.2 pM 细胞实验中bEGF的浓度(100 nM)及抗体处理的浓度范围

摘要

在这项工作中,我们报道了通过结合骆驼科免疫和荧光激活细胞分选(FACS)发现强效的抗表皮生长因子受体(EGFR)变构重链抗体。在免疫和酵母表面展示文库构建后,通过引入标记的EGF Fc融合蛋白作为FACS的附加标准来获得变构克隆。这种分选方法使得鉴定出11种不与正构配体EGF竞争结合EGFR的重链抗体成为可能。这些抗体以皮摩尔至纳摩尔范围的亲和力结合表达EGFR的三阴性乳腺癌细胞系。这些骆驼科来源的抗体还通过调节EGFR对EGF的亲和力展现出有趣的特性。此外,它们还能够抑制EGF诱导的下游信号通路。特别地,我们鉴定出一个克隆在抑制PI3K/AKT和MAPK/ERK通路方面比已批准的阻断抗体西妥昔单抗更有效。我们的结果表明,变构抗体可能是治疗的新潜在模式。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探索能否通过变构位点靶向EGFR,发现比现有竞争性抗体更有效的单克隆抗体。
核心机制
变构抗体通过结合EGFR的非配体结合位点,负性调节EGF与EGFR的结合,并抑制EGF诱导的下游信号通路(PI3K/AKT和MAPK/ERK)。
主要证据
通过FACS筛选获得的11种抗体,FP和细胞实验显示多数抗体降低EGF结合,其中30555_A2在MAPK/ERK和PI3K/AKT通路抑制上优于西妥昔单抗。
研究意义
研究表明变构抗体可能成为新的治疗模式,尤其在靶向EGFR的癌症治疗中具有更高效力和高选择性优势。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

免疫与酵母展示文库构建

从免疫骆驼中获取靶向EGFR的VHH抗体片段库。

使用重组人可溶性EGFR ECD免疫两只骆驼,提取总RNA并合成cDNA,通过同源重组在S. cerevisiae EBY100细胞中构建酵母表面展示VHH文库。

2

FACS筛选非竞争性结合剂

筛选不与EGF竞争结合EGFR的抗体克隆。

将EGFR与EGF Fc预孵育,通过三色标记(抗HA、抗His、抗Fc)进行FACS分选,选择在存在EGF情况下仍结合EGFR的细胞,并在后续轮次中采用更严格的门控。

3

抗体重格式化与表达

将筛选出的VHH序列转化为可溶性重链抗体。

将VHH序列重格式化为VHH-Fc融合蛋白(IgG1骨架),在Expi293F或ExpiCHO细胞中瞬时转染表达,通过MabSelect纯化,并通过SEC检测纯度和聚集情况。

4

生化结合特性分析

测定抗体对EGFR的亲和力、动力学和特异性。

通过BLI进行亲和力测定(KD、kon、koff),竞争实验确定表位分箱,并检测对HER2、HER3、HER4及鼠/猴EGFR的交叉反应性。

5

荧光偏振(FP)研究

评估抗体对EGFR:EGF复合物平衡的影响。

将Atto-488标记的EGF与EGFR孵育至平衡,加入不同浓度抗体,监测FP值变化以判断正性或负性变构调节。

6

细胞结合与配体竞争实验

验证抗体在细胞水平上的结合能力及对EGF结合的影响。

利用MDA-MB-468细胞测定抗体结合(EC50),并通过生物素化EGF检测抗体对EGF结合的抑制(IC50)。

7

信号通路抑制实验

评估抗体对EGF诱导的MAPK/ERK和PI3K/AKT信号通路的抑制作用。

使用报告基因细胞系检测MAPK/ERK通路抑制(IC50),通过HTRF检测AKT磷酸化水平,比较抗体与西妥昔单抗、matuzumab的抑制效力。

8

结构域映射

确定抗体在EGFR ECD上的结合结构域。

通过酵母表面展示EGFR ECD的六个截短片段,检测抗体结合以定位结合域。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Expi293F细胞----
ExpiCHO细胞----
MabSelect抗体纯化层析树脂GE Healthcare--
ZymoPURE II质粒小提试剂盒Zymo Research--
QIA专家系统Qiagen--
Octet RED®系统Sartorius--
AHC生物传感器Sartorius--
HIS1K生物传感器Sartorius--
重组人EGFR胞外域Merck Healthcare KGaA--
EGF Fc融合蛋白Sino Biological10605-H01H
SureLight® APC抗6X His标签抗体Abcamab72579
R-藻红蛋白亲和纯化山羊抗人IgG,Fc片段特异性Jackson ImmunoResearch109-117-008
抗HA标签Alexa Fluor® 488偶联抗体R&D SystemsIC6875G
MDA-MB-468细胞系ATCC--
iQue3设备Sartorius--
Alexa Fluor® 488抗人FcJackson ImmunoResearch109-547-008
碘化丙啶Invitrogen--
EZ-Link Sulfo-NHS-生物素ThermoFisher Scientific--
链霉亲和素AlexaFluor® 647偶联物ThermoFisher Scientific--
Atto 488蛋白标记试剂盒Sigma Aldrich--
Amicon 10K超滤管Sigma Aldrich--
PHERAstar设备BMG--
SRE报告基因HEK293细胞系BPS Bioscience--
Synergy 4设备Biotek--
Phospho-AKT1/2/3 (Ser473) HTRF试剂盒Revvity64AKSPEG
抗c-myc AlexaFluor® 647偶联抗体Abcamab223895

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
免疫与文库构建
免疫原(rhEGFR ECD 25-618)、动物种类(羊驼)和数量(2只)
阅读提示:Methods: Immunization of camelids and Library construction
FACS筛选
EGFR与EGF Fc的预孵育比例(3:1)和时间(1.5小时),第一轮分选细胞数量(5×10^8)
阅读提示:Methods: Library sorting, Figure 1b
抗体重格式化与表达
表达宿主(Expi293F/ExpiCHO)和表达时间(6/7天),纯化方法(MabSelect)
阅读提示:Methods: Expression and purification
BLI结合分析
抗体加载浓度(5 µg/mL)、EGFR浓度范围(50 nM起2倍稀释)、动力学测定时长
阅读提示:Methods: Octet assays
FP实验
EGF-Atto 488浓度(100 nM)、EGFR浓度(400 nM)、抗体浓度范围(10 µM起2倍稀释)
阅读提示:Methods: Fluorescence polarization, Figure 2 legend
细胞结合实验
MDA-MB-468细胞数量(10^5每孔)、抗体浓度范围(250 nM至0.0596 pM)、bEGF浓度(100 nM)
阅读提示:Methods: Functional assays, Figure 3 legend
信号通路抑制
EGF刺激浓度(EC80,1.31 ng/mL)、抗体处理时间(24小时)、AKT实验中EGF刺激浓度(20 ng/mL)和处理时间(10分钟)
阅读提示:Methods: MAPK/ERK signaling pathway and pAKT signaling pathway, Figure 4 legend
结构域映射
EGFR ECD片段的具体残基范围(1-124, 1-176, 1-294, 273-621, 294-543, 475-621)
阅读提示:Methods: Domain mapping via YSD