刺突蛋白突变体构建与表达检测
构建各变异株刺突蛋白表达质粒,并检测其在细胞中的表达水平。
通过定点重叠延伸PCR生成变异株刺突蛋白基因,构建pcDNA3.1-S质粒;将刺突蛋白与mCherry融合,转染HEK293T细胞,利用流式细胞术检测mCherry/GFP荧光比值。
Altered hACE2 binding affinity and S1/S2 cleavage efficiency of SARS-CoV-2 spike protein mutants affect viral cell entry.
包含体外结合实验(SPR)、假病毒进入实验、蛋白表达与切割分析(Western blot)、跨物种ACE2嗜性分析等多个独立证据层级,并进行了功能验证。
HEK293T细胞及其稳定表达hACE2/TMPRSS2或动物ACE2的衍生细胞系 Caco-2细胞 SARS-CoV-2假病毒(基于HIV-1慢病毒系统)
假病毒加入量以HIV-1 p24含量(5 ng)进行标准化 293T-hACE2-TMPRSS2细胞中TMPRSS2的共表达对Omicron和Mu假病毒进入效率无显著影响 RBD和全长刺突蛋白与hACE2的结合亲和力(KD值)通过SPR测定,使用1:1 Langmuir模型 刺突蛋白S1/S2切割效率通过Western blot检测,并以S1与总刺突蛋白的比率量化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建各变异株刺突蛋白表达质粒,并检测其在细胞中的表达水平。
通过定点重叠延伸PCR生成变异株刺突蛋白基因,构建pcDNA3.1-S质粒;将刺突蛋白与mCherry融合,转染HEK293T细胞,利用流式细胞术检测mCherry/GFP荧光比值。
检测各变异株刺突蛋白在伪病毒颗粒和细胞裂解物中的切割效率。
制备假病毒,并用Western blot分析刺突蛋白条带;同时转染刺突蛋白表达质粒至HEK293T细胞,裂解后检测S1和S0蛋白水平。
通过SPR测量RBD突变体和全长刺突蛋白突变体与hACE2的结合动力学和亲和力。
表达并纯化RBD蛋白,利用Biacore 8K进行SPR分析,hACE2-hFc作为配体,注入不同浓度梯度的分析物,计算ka、kd和KD。
评估各变异株假病毒在不同细胞系中的进入效率。
包装表达变异株刺突蛋白的慢病毒假病毒,以p24 ELISA定量,感染293T-hACE2、293T-hACE2-TMPRSS2、Caco-2细胞,检测荧光素酶活性。
检测各变异株假病毒对表达不同动物ACE2的细胞的进入能力。
用表达不同ACE2直系同源物(人、小鼠、大鼠、恒河猴、白尾鹿)的293T细胞,感染假病毒并测定进入效率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 载体构建 | pcDNA3.1-S-WT | Honorgene | HG-VJH1153 |
| pcDNA3.1 (+) | Addgene | V790-20 | |
| PB513B-1 | Fenghui | -- | |
| psPAX2 | Addgene | 12260 | |
| pMD2.G | Addgene | 12259 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| EMEM培养基 | Sigma-Aldrich | -- | |
| StarFect 293瞬时转染培养基 | Genstar | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 稳定细胞系构建 | PA210PA-1 | Fenghui | -- |
| PB200PA-1 | Fenghui | -- | |
| FACSAria IIIu | BD Biosciences | -- | |
| Lipofectamine 3000 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 假病毒制备 | 0.45 μm滤膜 | Millipore | -- |
| 假病毒定量 | p24 ELISA试剂盒 | Key-Bio Biotech | -- |
| 假病毒进入检测 | 荧光素酶检测系统 | Beyotime | -- |
| RBD蛋白表达 | StarFect高效转染试剂 | Genstar | -- |
| 蛋白纯化 | HisTrap excel层析柱 | Cytiva | -- |
| Amicon超滤装置 | Millipore | 10 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白质定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| SPR | Biacore 8K | GE Healthcare Life Sciences | -- |
| Protein A芯片 | Cytiva | -- | |
| ACE2-hFc | SinoBiological | 10108-H02H | |
| 甘氨酸1.5 | Cytiva | -- | |
| Western blot | 5×上样缓冲液 | Genstar | -- |
| RIPA裂解液 | Beyotime | -- | |
| Amicon Ultra-4离心过滤器 | Millipore | 100 | |
| 小鼠抗SARS-CoV-2刺突蛋白抗体 | Sino Biological | 40592-MM117 | |
| 小鼠抗HIV-1 p24蛋白单克隆抗体 | Sino Biological | 11695-MM15 | |
| 小鼠抗GAPDH抗体 | Abcam | ab8245 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab6789 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab6721 | |
| 统计分析 | GraphPad Prism | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 刺突蛋白表达检测 | mCherry/GFP荧光比值;转染试剂及其用量;转染后检测时间(24小时);细胞系(HEK293T) 阅读提示:见Materials and methods 2.7及图2A图注 |
| S1/S2切割效率分析 | 细胞裂解物和假病毒颗粒中S1/S2条带强度;抗体(抗RBD)和对照抗体;S1与总刺突蛋白比值 阅读提示:见Materials and methods 2.8及图2B-E图注 |
| SPR结合实验 | hACE2-hFc浓度(10 μg/mL);分析物浓度范围(200-0 nmol/L);流速和接触时间;再生条件 阅读提示:见Materials and methods 2.6及图3图注 |
| 假病毒进入实验 | p24添加量(5 ng);细胞密度(20,000 cells/100 μL);转染质粒量(psPAX2 7 μg, pLVX 7 μg, S蛋白6 μg);感染和检测时间 阅读提示:见Materials and methods 2.4及图4图注 |
| 跨物种ACE2嗜性 | 表达ACE2直系同源物的稳定细胞系(293T-mACE2等);是否共表达TMPRSS2;假病毒添加量(5 ng p24) 阅读提示:见Materials and methods 2.3和2.4及图5图注 |
| 统计学分析 | 重复次数(3-4次);t检验或单因素方差分析;P值阈值(0.05) 阅读提示:见Materials and methods 2.9 |