COL11A1驱动的上皮间质转化和胰腺癌细胞干性通过调控AKT/GSK-3β/Snail通路诱导细胞迁移和侵袭

COL11A1-Driven Epithelial-Mesenchymal Transition and Stemness of Pancreatic Cancer Cells Induce Cell Migration and Invasion by Modulating the AKT/GSK-3β/Snail Pathway.

作者信息Hui Wang, Huichao Zhou, Hong Ni, Xiaohong Shen
PMID35327583
发布时间2022-03
DOI10.3390/biom12030391

实验完整度

包含体外细胞模型,通过过表达和敲低进行功能验证,并利用通路抑制剂和siRNA进行机制验证。

主要模型

PANC-1细胞系 BxPC-3细胞系 Capan-2细胞系

重点核对

细胞系:PANC-1、BxPC-3、Capan-2 COL11A1过表达质粒(pCMV3-COL11A1)和siRNA(siCOL11A1)转染 通路抑制剂:LY294002(50μM,预处理1小时) siRNA敲低GSK-3β和Snail Transwell检测时间:24或48小时

摘要

背景:胶原蛋白XI型α1(COL11A1)与多种人类恶性肿瘤的发生和发展相关。既往报道表明COL11A1可能是胰腺导管腺癌(PDAC)的重要诊断标志物;然而,其在PDAC进展中的生物学作用仍不清楚。在本研究中,我们研究了COL11A1对胰腺癌细胞侵袭和迁移能力的影响,并探讨了其潜在的分子机制。方法:使用转染siCOL11A1和pCNV3-COL11A1质粒的胰腺癌细胞,通过Transwell实验评估细胞迁移和侵袭。通过Western blotting和实时聚合酶链反应(PCR)分析N-钙黏蛋白、E-钙黏蛋白、波形蛋白、分化簇(CD)-24、CD44、丝氨酸-苏氨酸激酶(AKT)、糖原合酶激酶(GSK)-3β、磷酸化(p)-AKTSer473、p-GSK-3βSer9和Snail的蛋白和mRNA表达水平。使用流式细胞术和克隆形成实验检测COL11A1对细胞干性的影响。结果:结果表明COL11A1显著促进了PDAC细胞的侵袭和迁移能力。此外,COL11A1通过上调p-AKTSer473、p-GSK-3βSer9和Snail的表达水平,促进了上皮间质转化(EMT)和细胞干性的发生。结论:本研究提示COL11A1诱导的AKT/GSK-3β/Snail信号通路的激活在PDAC进展中起主要作用。因此,COL11A1可作为PDAC治疗的潜在靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
COL11A1在胰腺癌细胞中如何影响迁移和侵袭,其潜在分子机制是什么?
核心机制
COL11A1通过激活AKT/GSK-3β/Snail信号通路,促进Snail的表达和核定位,进而抑制E-cadherin表达,诱导上皮间质转化和细胞干性。
主要证据
在PANC-1、BxPC-3和Capan-2细胞中,COL11A1过表达增强迁移侵袭,敲低则抑制;Western blot、免疫荧光、Transwell、伤口愈合和ChIP实验证实通路机制。
研究意义
表明COL11A1可能是PDAC转移的潜在治疗靶点,靶向COL11A1或Snail可能抑制肿瘤侵袭。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证COL11A1对迁移和侵袭的影响

确定COL11A1是否调节胰腺癌细胞的迁移和侵袭。

在胰腺癌细胞系中转染pCMV3-COL11A1或siCOL11A1,通过Transwell实验检测迁移和侵袭。

2

检测EMT标志物和MMP-2/9表达

探究COL11A1是否调节上皮间质转化相关标志物和基质金属蛋白酶。

通过Western blotting和免疫荧光检测N-cadherin、E-cadherin、Vimentin和MMP-2/9的表达。

3

验证AKT/GSK-3β/Snail通路激活

确定COL11A1是否通过AKT/GSK-3β/Snail通路发挥作用。

通过Western blotting检测AKT、GSK-3β的磷酸化水平及Snail表达,使用PI3K抑制剂LY294002和siRNA敲低GSK-3β进行验证。

4

确认AKT/GSK-3β/Snail通路介导的EMT

验证COL11A1诱导的EMT依赖于AKT/GSK-3β/Snail通路。

通过Western blotting、ChIP和免疫荧光检测E-cadherin表达及Snail与E-cadherin启动子的结合,并评估细胞粘附能力。

5

评估COL11A1对细胞干性的影响

确定COL11A1是否调节胰腺癌细胞的干性。

通过Western blotting、流式细胞术和克隆形成实验检测CD24/CD44表达及集落形成能力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
DMEM培养基----
胎牛血清BI--
青霉素-链霉素----
脂质体2000Invitrogen--
LY294002Beyotime--
Transwell小室BD Biosciences--
基质胶----
RIPA裂解液Solarbio--
核蛋白提取试剂盒Keygen Biotech--
BCA试剂盒Thermo Scientific--
PVDF膜Millipore--
Chemidoc™ Touch成像系统----
E-cad抗体Cell Signaling Technology14472S
N-cad抗体Cell Signaling Technology13116S
VIM抗体Cell Signaling Technology5741S
Snail抗体Cell Signaling Technology3879S
AKT抗体Proteintech60203-2-Ig
p-AKTSer473抗体Cell Signaling Technology4060S
MMP-2抗体Cell Signaling Technology40994S
MMP-9抗体Cell Signaling Technology13667S
GSK-3β抗体Cell Signaling Technology12456S
p-GSK-3βSer9抗体Cell Signaling Technology5558S
CD24抗体Proteintech18330-1-AP
CD44抗体Proteintech60224-1-Ig
β-actin抗体Sungene BiotechKM9001
抗Snail抗体----
FITC标记的二抗----
DAPI----
总RNA提取试剂盒Promega--
HiFiScript第一链cDNA合成试剂盒CWBIO--
ChamQ™通用SYBR qPCR预混液CWBIO--
Applied Biosystems 7500 Fast Dx实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher Scientific--
抗CD24-PEAbcam--
抗CD44-FITCAbcam--
FACS Calibur流式细胞仪BD Biosciences--
BD FACSAria II细胞分选仪BD Biosciences--
吉姆萨染液Solarbio--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(ATCC),培养基(RPMI-1640或DMEM),血清浓度(10%FBS),抗生素浓度(1%青霉素-链霉素),培养条件(37°C,5% CO2)
阅读提示:2.1 Cell Culture, Transfection, and Treatment
细胞转染
转染试剂(Lipofectamine 2000),质粒和siRNA的浓度(文中未明确说明),转染时间(文中未明确说明)
阅读提示:2.1 Cell Culture, Transfection, and Treatment
迁移和侵袭
Transwell小室孔径(8 μm),基质胶包被与否,细胞数量(文中未明确说明),培养时间(24或48小时),固定和染色方法
阅读提示:2.2 Transwell Assay
蛋白质印迹
蛋白上样量(30 μg),SDS-PAGE浓度(10%),PVDF膜孔径(0.2 μm),封闭液(5%脱脂牛奶),一抗浓度(见表2),二抗浓度(1:10000)
阅读提示:2.3 Western Blotting, Table 2
伤口愈合
细胞数量(文中未明确说明),划痕工具(10 μL枪头),观察时间(0、24、48小时)
阅读提示:2.6 Wound-Healing Assays