验证BTNL2阻断抗体的抗肿瘤效果
评估抗BTNL2单克隆抗体是否能在多个小鼠肿瘤模型中抑制肿瘤生长。
在LLC、CT26、A20皮下移植瘤模型中,腹腔或静脉注射抗BTNL2单克隆抗体(mAb-2),测量肿瘤生长曲线和生存期,并与同型对照抗体比较。
Cancer cell-expressed BTNL2 facilitates tumour immune escape via engagement with IL-17A-producing γδ T cells.
涉及体外细胞实验(γδT17分化、CD8+ T增殖)、多个小鼠肿瘤模型(LLC、CT26、A20)的体内治疗实验、基因敲除小鼠(BTNL2-KO)及人类肿瘤样本分析,包含功能验证和机制验证。
小鼠LLC(Lewis肺癌)皮下移植瘤模型 小鼠CT26(结肠腺癌)皮下移植瘤模型 小鼠A20(B细胞淋巴瘤)皮下及静脉转移模型 人肺腺癌及肝细胞癌临床样本
抗BTNL2单克隆抗体(mAb-2)的给药剂量和途径:200μg/只,腹腔或静脉注射 小鼠肿瘤模型:LLC、CT26、A20细胞皮下注射数量(3×10^5、3×10^5、2×10^6) γδT17细胞鉴定:肿瘤浸润淋巴细胞中CD3+γδTCR+IL-17A+细胞比例 MDSC鉴定:CD11b+Gr-1+细胞比例 人类样本BTNL2表达评分系统:免疫组化评分(0-12分)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估抗BTNL2单克隆抗体是否能在多个小鼠肿瘤模型中抑制肿瘤生长。
在LLC、CT26、A20皮下移植瘤模型中,腹腔或静脉注射抗BTNL2单克隆抗体(mAb-2),测量肿瘤生长曲线和生存期,并与同型对照抗体比较。
确定BTNL2阻断是否改变肿瘤微环境中γδT17细胞、MDSC和CD8+ T细胞的浸润。
通过流式细胞术分析CT26和A20肿瘤中浸润的γδT17细胞(CD3+γδTCR+IL-17A+)比例、血清IL-17A水平、MDSC(CD11b+Gr-1+)比例及CD8+IFN-γ+ T细胞比例,比较处理组与对照组。
确定Vγ1 γδT17细胞是否是BTNL2诱导的IL-17A产生的主要来源,以及其对抗肿瘤效果的必要性。
使用抗Vγ1 TCR抗体(2.11)耗竭Vγ1 γδ T细胞,分析CT26肿瘤生长、IL-17A分泌和γδT17浸润。
确定IL-17A是否为BTNL2介导的促肿瘤效应所必需。
通过中和抗体或重组IL-17A-Fc蛋白处理,观察对BTNL2阻断抗肿瘤效果的影响。
确定MDSC是否为BTNL2-γδT17通路的下游效应细胞,以及其对CD8+ T细胞功能的抑制。
使用抗CD11b抗体耗竭MDSC,分析CT26肿瘤生长、CD8+IFN-γ+ T细胞浸润,并进行体外共培养实验评估MDSC对CD8+ T细胞增殖的抑制。
确定肿瘤细胞自身表达的BTNL2是否对肿瘤免疫逃逸起主要作用。
将野生型(WT)和BTNL2基因敲除(KO)的LLC细胞植入WT或BTNL2-KO小鼠,比较肿瘤生长、浸润免疫细胞和体外增殖。
评估BTNL2在多种人类癌症中的表达水平及其与患者生存期的关系。
使用免疫组化(IHC)和Western blot分析肺腺癌、结肠腺癌、肝细胞癌等肿瘤样本中BTNL2表达,结合临床数据用Kaplan-Meier曲线分析生存期相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | C57BL/6小鼠 | 北京维通利华实验动物技术有限公司 | -- |
| BALB/c小鼠 | 北京维通利华实验动物技术有限公司 | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 蛋白表达 | FreeStyle 293表达培养基 | Thermo Fisher | 12338026 |
| FectoPRO转染试剂 | PolyPlus | 116-040 | |
| pINFUSE-hIgG2-Fc2载体 | Invivogen | pfc2-hgin2 | |
| Western blot | 抗小鼠BTNL2单克隆抗体 | Atagenix | -- |
| 抗α-微管蛋白抗体 | CST | 2125 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Santa Cruz | sc-47778 | |
| 抗HSP90抗体 | Santa Cruz | sc-13119 | |
| 抗人BTNL2多克隆抗体 | Proteintech | 25110-1-AP | |
| 抗人PD-L1抗体 | Proteintech | 66248-1-Ig | |
| 免疫组织化学 | 抗BTNL2多克隆抗体 | Sigma | HPA039844 |
| 抗PD-L1抗体 | CST | 13684 | |
| 抗Napsin A抗体 | Proteintech | 60259-2-Ig | |
| 动物实验 | 抗PD-1单克隆抗体 | BioXcell | BE0146 |
| 抗Vγ1 TCR抗体 | BioXcell | BE0257 | |
| 抗IL-17A抗体 | BioXcell | BE0173 | |
| 抗CD8a抗体 | BioXcell | BE0061 | |
| 抗CD11b抗体 | BioXcell | BE0007 | |
| 大鼠IgG1同型对照抗体 | R&D Systems | MAB005R | |
| 多克隆叙利亚仓鼠IgG | BioXcell | BE0091 | |
| 抗血蓝蛋白抗体 | BioXcell | BE0090 | |
| 流式细胞术 | Zombie Violet可固定活力染料试剂盒 | Biolegend | 423114 |
| 细胞活化混合物(含布雷菲德菌素A) | Biolegend | 423304 | |
| ELISA | 小鼠IL-17A ELISA试剂盒 | Biolegend | 432504 |
| 小鼠IL-2 ELISA试剂盒 | Biolegend | 431004 | |
| 体外细胞实验 | 重组小鼠IL-1β蛋白 | Sino Biological | 50101-MNAE |
| 重组小鼠IL-23蛋白 | Sino Biological | CT028-M08H | |
| 肽N-糖苷酶F | NEB | P0704L | |
| 体外T细胞增殖 | CellTrace CFSE细胞增殖试剂盒 | Invitrogen | C34554 |
| 细胞分离 | CD4+T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-104-454 |
| IV型胶原酶 | Sigma | -- | |
| 脱氧核糖核酸酶I | Biofroxx | -- | |
| 细胞培养 | 70微米细胞筛网 | Biologix group Limited | -- |
| Human tissue chips | 肺腺癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HlugA180Su05 |
| 结肠腺癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HColA180Su09 | |
| 肝癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HLivH090Su01 | |
| 乳腺癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HBreD030CS01 | |
| 食管癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HEsoS030PG02 | |
| 胃癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HStmA030PG02 | |
| 前列腺癌组织芯片 | OUTDO BIOTECH | HPro-Ade045PG-01 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系和来源:C57BL/6和BALB/c小鼠;肿瘤细胞系(LLC、CT26、A20)接种数量和途径 阅读提示:Methods部分:Mice和Subcutaneous tumour model |
| 抗体处理 | 抗BTNL2单克隆抗体的剂量(200μg/只)、给药途径(腹腔或静脉)、时间点(接种后第4、6、8、10天);抗PD-1和抗IL-17A等抗体的剂量和方案 阅读提示:Methods部分:Mice和Reagents |
| 流式细胞术 | 肿瘤浸润细胞制备方法(胶原酶IV和DNase I消化)、刺激条件(Cell Activation Cocktail 4小时)、抗体克隆号及用量 阅读提示:Methods部分:Flow cytometry |
| 体外细胞实验 | γδ T细胞分离和培养条件、BTNL2-Fc和IL-17A-Fc重组蛋白的浓度(10μg/ml)、IL-1β和IL-23浓度(10ng/ml) 阅读提示:Methods部分:γδ T cells isolation and in vitro stimulation |
| 人类样本分析 | 组织来源和伦理审批编号、免疫组化评分系统细节、BTNL2和PD-L1表达评分阈值 阅读提示:Methods部分:Clinical specimens和Immunohistochemistry |