胰岛素受体底物1的相分离驱动胰岛素/IGF-1信号体的形成

Phase separation of insulin receptor substrate 1 drives the formation of insulin/IGF-1 signalosomes.

作者信息Xiu Kui Gao, Xi Sheng Rao, Xiao Xia Cong, Zu Kang Sheng, Yu Ting Sun, Shui Bo Xu, Jian Feng Wang, Yong Heng Liang, Lin Rong Lu, Hongwei Ouyang, Huiqing Ge, Jian-Sheng Guo, Hang-Jun Wu, Qi Ming Sun, Hao-Bo Wu, Zhang Bao, Li Ling Zheng, Yi Ting Zhou
PMID35764611
发布时间2022-06-28
DOI10.1038/s41421-022-00426-x

实验完整度

体外纯化蛋白LLPS、细胞模型(C2C12、293T、MCF7)、CRISPR敲除及稳定回补细胞系、免疫共沉淀、FRAP、CL-EM等多层级验证。

主要模型

C2C12成肌细胞及C2C12-IRS-1 KO稳定回补细胞系 HEK293T细胞 体外纯化的重组IRS-1蛋白

重点核对

GFP-mIRS-1表达水平需接近内源水平(通过DOX诱导浓度和时间的优化) FRAP实验中GFP-mIRS-1液滴的激光漂白强度为80%(480 nm) PEG-8000浓度2%(w/v)用于体外LLPS实验 IGF-1刺激浓度为100 ng/mL,胰岛素浓度为100 nM C2C12-IRS-1 KO细胞系通过CRISPR/Cas9靶向IRS-1 N末端序列5'-GCATACTCTTGGGCTTGCGC-3'

摘要

作为胰岛素/IGF信号传导的关键节点,胰岛素受体底物1(IRS-1)对代谢调控至关重要。IRS-1长且无结构的C末端区域招募下游效应分子以促进胰岛素/IGF信号传导。然而,其潜在的分子基础仍不清楚。在这里,我们发现IRS-1的C末端经历液-液相分离(LLPS)。静电和疏水相互作用均驱动IRS-1的LLPS。IRS-1的自结合主要由301–600区域介导,驱动IRS-1的LLPS以形成胰岛素/IGF-1信号体。此外,招募下游效应分子的YXXM基序的酪氨酸残基也有助于IRS-1的自结合和LLPS。IRS-1 LLPS的损伤减弱了其对胰岛素/IGF-1信号的正向作用。代谢疾病相关的G972R突变损害了IRS-1的自结合和LLPS。我们的发现描绘了一种机制,其中IRS-1介导的信号体的LLPS作为胰岛素/IGF-1信号的组织中心,并暗示异常的IRS-1 LLPS在代谢疾病中的作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IRS-1的C末端是否及如何通过相分离形成信号体来调控胰岛素/IGF-1信号传导?
核心机制
IRS-1的C末端通过自结合(主要由301-600区域介导)发生液-液相分离,形成胰岛素/IGF-1信号体,招募下游效应分子p85和Grb2,从而促进信号传导。
主要证据
体外LLPS实验证明IRS-1形成液滴,细胞实验中GFP-mIRS-1形成具有融合和FRAP恢复特性的液滴;SAR缺失或9YA突变减弱液滴形成和信号传导;G972R突变损害自结合和LLPS,减弱p85和Grb2的招募。
研究意义
研究揭示了IRS-1相分离作为胰岛素/IGF信号组织中心的机制,并暗示异常的IRS-1 LLPS在代谢疾病(如2型糖尿病)中的作用,为相关疾病的治疗干预提供了新机会。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证IRS-1在细胞内形成液滴

检测IRS-1在细胞中是否形成球形结构并具有液滴特性。

在C2C12、293T、MCF7细胞中过表达GFP标记的IRS-1,使用共聚焦显微镜观察球形结构;通过FRAP、融合实验和CL-EM分析液滴的液体性质和膜结构。

2

体外验证IRS-1的液-液相分离

确定纯化的IRS-1蛋白是否能够独立发生相分离。

纯化FLAG-mIRS-1蛋白,在不同浓度、PEG、温度和盐浓度条件下观察液滴形成;建立相分离图并测定蛋白浓度。

3

鉴定介导IRS-1相分离的自结合区域

确定IRS-1自结合的关键区域及其在相分离中的作用。

通过截短突变体和共免疫沉淀鉴定SAR区域(301-600),缺失突变体检测液滴形成;体外LLPS验证ΔSAR突变体的相分离能力。

4

探究胰岛素/IGF信号对IRS-1相分离的动态调控

检测胰岛素/IGF刺激是否影响IRS-1相分离及其酪氨酸磷酸化在其中的作用。

观察IGF-1/胰岛素刺激后IRS-1液滴数量的变化;检测Y608磷酸化与液滴的共定位;纯化刺激后蛋白进行LLPS实验;构建9YA突变体评估其相分离能力。

5

验证IRS-1液滴招募下游效应分子以形成信号体

证明IRS-1相分离对于招募p85和Grb2并传导胰岛素/IGF信号是必需的。

在体外和细胞中检测p85和Grb2与IRS-1液滴的共定位和相互作用;评估ΔSAR和9YA突变体对信号传导的影响。

6

评估代谢疾病相关G972R突变对IRS-1相分离的影响

确定G972R突变是否影响IRS-1的相分离和信号传导功能。

纯化hIRS-1和G972R突变体进行体外LLPS;建立稳定细胞系比较液滴形成和信号传导;检测G972R突变对自结合和下游效应分子招募的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM(高糖)Hyclone Laboratories--
RPMI-1640培养基Hyclone Laboratories--
胎牛血清Hyclone Laboratories--
L-谷氨酰胺Hyclone Laboratories--
青霉素Hyclone Laboratories--
链霉素Hyclone Laboratories--
脂质体转染试剂2000Invitrogen--
胰岛素样生长因子-1Sino biological10598-HNAY1
胰岛素SigmaI0305000
蛋白酶抑制剂混合物Selleck ChemicalsB14001
抗FLAG M2凝胶珠BimakeB23102
3x FLAG多肽MCEHY-P0319
Superdex 200增高型凝胶过滤柱GE Healthcare28-9909-44
ND-2000 NanoDrop分光光度计Thermo scientific--
慢病毒CRISPR载体v2----
脂质体转染试剂3000Thermo Fisher ScientificL3000015
嘌呤霉素GPC BiotechnologyAK058
多西环素YEASEN60204ES03
流式荧光分选仪Beckman moflo Astrios EQ--
聚乙二醇8000Sangon biotechA100159
8孔腔室CellvisC8-1.5H-N
1,6-己二醇TCIH0099
核糖核酸酶AAxygenAP-MD-P
脱氧核糖核酸酶Thermo ScientificEN0521
牛血清白蛋白----
酶标仪Thermo Multiskan Sky--
iFluor 488 NHS酯AAT Bioquest1023
Microcon-100-kDa离心过滤器MilliporeUFC810024
蔡司LSM 800共聚焦显微镜Carl Zeiss--
聚焦离子束扫描电镜Helios UC G3--
抗IRS-1抗体Cell Signaling Technology2382
抗pAKT S473抗体Cell Signaling Technology9271
抗p85抗体Cell Signaling Technology4292
抗Grb2抗体Cell Signaling Technology3972
抗FoxO1抗体Cell Signaling Technology2880
抗ERK1/2抗体Cell Signaling Technology9102
抗pERK1/2抗体Cell Signaling Technology4370
抗IGF-1Rβ抗体Cell Signaling Technology9750
抗IRβ抗体Cell Signaling Technology3025
抗pIGF-1Rβ Y1135/1136/pIRβ Y1150/1151抗体Cell Signaling Technology3024
抗pIGF-1Rβ Y1131/pIRβ 1146抗体Cell Signaling Technology3021
抗pIRS-1 Y612抗体Invitrogen44-816G
抗AKT抗体HUABIOET1609-47
抗GFP抗体HUABIOET1607-31
抗肌动蛋白抗体HUABIOM1210-2
抗MHC抗体DSHBMF20
抗FLAG抗体YEASEN30503ES60
抗mCherry抗体ABclonalAE002
HRP偶联的山羊抗小鼠二抗Jackson115-035-003
HRP偶联的山羊抗兔二抗Jackson111-035-003
山羊抗小鼠-Alexa Fluor 546Thermo Fisher ScientificA-11003
山羊抗兔-Alexa Fluor 488Thermo Fisher ScientificA-11008
山羊抗兔-Alexa Fluor 546Thermo Fisher ScientificA-11010
山羊抗兔-Alexa Fluor 633Thermo Fisher ScientificA-21071
Axygen质粒小提试剂盒Axygen--
大肠杆菌DH5-α菌株----
Imaris软件----
Fiji软件----
GraphPad Prism 8.0.2软件GraphPad Software, Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
C2C12细胞使用DMEM(高糖)加15% FBS,MCF7使用DMEM加10% FBS,293T使用RPMI-1640加10% FBS、2 mM L-谷氨酰胺、100 U/mL青霉素和100 mg/mL链霉素。
阅读提示:Materials and methods: Culture and maintenance of cells
细胞转染
293T细胞使用Lipofectamine 2000转染,C2C12细胞未明确说明转染试剂。
阅读提示:Materials and methods: Culture and maintenance of cells
药物处理
IGF-1处理浓度100 ng/mL,胰岛素100 nM,处理时间如前所述(2.5分钟、5分钟、15分钟等)。
阅读提示:Materials and methods: IGF-1/insulin stimulation
蛋白质纯化
FLAG标记蛋白从293T细胞裂解,使用抗FLAG M2凝胶珠纯化,3x FLAG多肽竞争洗脱,凝胶过滤用Superdex 200 increase柱。
阅读提示:Materials and methods: Protein expression and purification
CRISPR敲除
C2C12细胞IRS-1敲除使用lentiCRISPRv2载体,靶向序列为5'-GCATACTCTTGGGCTTGCGC-3',筛选浓度5 μg/mL嘌呤霉素。
阅读提示:Materials and methods: CRISPR/Cas9 knock-out in C2C12 cells
诱导型稳定细胞系
使用tet-on系统,HP216和HP138载体,多西环素诱导浓度500 ng/mL。
阅读提示:Materials and methods: Generation of inducible stable cell line
体外相分离实验
缓冲液组成:50 mM Tris-HCl pH 7.5, 10%甘油, 1 mM DTT, 2% PEG-8000, NaCl浓度根据实验调整。
阅读提示:Materials and methods: In vitro phase separation assays
FRAP
GFP-mIRS-1使用80%激光强度(480 nm),iFluor 488标记蛋白使用100%激光强度。
阅读提示:Materials and methods: Fluorescence recovery after photobleaching (FRAP)
免疫沉淀和Western blot
裂解缓冲液成分,抗FLAG M2珠免疫沉淀,SDS-PAGE和特定抗体检测。
阅读提示:Materials and methods: Immunoprecipitation studies and Western blot analyses
免疫荧光
PBSCM缓冲液,3%多聚甲醛固定,0.1%皂素透化,抗体稀释液含7% FBS和2% BSA。
阅读提示:Materials and methods: Immunofluorescence and direct fluorescence studies
图像分析
球形度、体积和数量使用Imaris软件,3D渲染步长0.12 µm。
阅读提示:Materials and methods: Three-dimensional (3D) rendering, sphericity, volume and number measurement
统计分析
统计检验方法选择基于正态性检验,双尾非配对Student t检验、Mann-Whitney检验或ANOVA。
阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis